В протоколе описан новый метод оценки интегральной цитотоксичности метаболитов триазоловых пестицидов в растениях.
В результате антропогенной деятельности в окружающую среду попадают различные органические загрязнители. Эти загрязнители могут поглощаться сельскохозяйственными культурами, создавая потенциальные угрозы для экосистемы и здоровья человека на всех этапах пищевой цепи. Биотрансформация загрязняющих веществ в растениях приводит к образованию ряда метаболитов, которые могут быть более токсичными, чем их исходные соединения, что означает, что эти метаболиты следует учитывать при оценке токсичности. Тем не менее, метаболиты загрязняющих веществ в растениях чрезвычайно сложны, что затрудняет всестороннее получение токсикологической информации обо всех метаболитах. В этом исследовании была предложена стратегия оценки интегральной цитотоксичности метаболитов загрязнителей в растениях путем обработки их как целого во время токсикологических испытаний. Триазоловые пестициды, класс фунгицидов широкого спектра действия, широко применяются в сельскохозяйственном производстве. Загрязнение сельскохозяйственных угодий их остатками привлекает все большее внимание. Таким образом, в качестве исследуемых загрязнителей были выбраны четыре триазоловых пестицида, включая флусилазол, диниконазол, тебуконазол и пропиконазол. Метаболиты были получены в результате обработки морковной каллуса испытанными триазольными пестицидами. После обработки в течение 72 ч были экстрагированы метаболиты пестицидов в каллусе моркови, после чего были проведены токсикологические испытания с использованием клеточной линии Caco-2. Результаты показали, что метаболиты исследуемых пестицидов в каллусе моркови существенно не ингибировали жизнеспособность клеток Caco-2 (P>0,05), демонстрируя отсутствие цитотоксичности метаболитов пестицидов. Этот предлагаемый метод открывает новые возможности для оценки цитотоксичности метаболитов загрязнителей в растениях, что, как ожидается, предоставит ценные данные для точной оценки токсичности.
Сельскохозяйственные культуры, произрастающие на сельскохозяйственных угодьях, могут подвергаться воздействию различных органических загрязнителей, возникающих в результате антропогенной деятельности 1,2. Загрязняющие вещества могут поглощаться растениями, создавая дальнейшую угрозу для экосистемы и здоровья человека через пищевые цепи 3,4. Ксенобиотики в растениях, вероятно, претерпевают ряд биотрансформаций, таких как метаболизм фазы I иII5, генерируя ряд метаболитов. Согласно концепции зеленой печени у растений, метаболизм растений может снизить токсичность ксенобиотиков 6,7. Тем не менее, было выявлено, что токсичность некоторых метаболитов может быть выше, чем у их родителей. Например, доказано, что дебромированный продукт тетрабромбисфенола А (ТББПА) и О-метилированный продукт бисфенола А (БФА) гораздо более токсичны, чем ихродители8,9, а дебромирование и О-метилирование составляют основные пути метаболизма фазы I в растениях. Таким образом, оценка токсичности исключительно на основе родителей загрязнителей в растениях не является точной, в то время как следует учитывать соответствующие метаболиты.
Метаболиты ксенобиотиков в растениях чрезвычайно сложны10,11, что затрудняет их всестороннюю идентификацию и разделение. Кроме того, можно получить лишь несколько стандартов идентифицированных метаболитов. Следовательно, токсикологические данные по всем метаболитам недоступны, что затрудняет всестороннюю оценку токсичности. В этом исследовании была предложена стратегия оценки интегральной токсичности метаболитов загрязняющих веществ в растениях путем их обработки как единого целого во время токсикологических испытаний, что позволило получить новые данные для точной оценки токсичности загрязняющих веществ в растениях. Наше предыдущее исследование показало, что культура каллуса растений открывает простой и эффективный путь к получению метаболитов ксенобиотиков в растениях12. Соответственно, культура каллуса растений была использована в этом исследовании для получения метаболитов загрязняющих веществ в растениях с последующей химической экстракцией и токсикологическими испытаниями с использованием клеточной линии человека. Кишечный тракт является одним из непосредственных органов-мишеней ксенобиотиков, подвергающихся воздействию животных и человека. Клеточная линия Caco-2 оказалась лучшей моделью для исследования кишечного поведения и токсичности ксенобиотиков in vitro 13,14,15. Таким образом, в данном исследовании была выбрана модель клеток Caco-2.
Триазоловые пестициды, класс фунгицидов широкого спектра действия, широко применяются в сельскохозяйственном производстве16. Загрязнение сельскохозяйственных угодий их остатками привлекает все большее внимание17,18. Здесь в качестве типичных загрязнителей были выбраны четыре широко используемых триазоловых пестицида, включая флусилазол, диниконазол, тебуконазол и пропиконазол. Морковь была выбрана в этом исследовании в качестве репрезентативного растения для свежих, готовых к употреблению овощей. Морковная каллус первоначально подвергалась воздействию испытанных пестицидов в концентрации 100 мг/л. После экспозиции в течение 72 ч метаболиты экстрагировали для оценки цитотоксичности с использованием клеточной линии Caco-2. Этот метод может быть легко расширен для оценки интегральной цитотоксичности метаболитов других типов загрязнителей в растениях.
Данный протокол был разработан для оценки интегральной цитотоксичности метаболитов триазоловых пестицидов в растениях путем объединения моделей каллуса растений и клеток человека. Важнейшими шагами для этого предлагаемого протокола являются культивирование калл…
The authors have nothing to disclose.
Это исследование было поддержано Национальным фондом естественных наук Китая (21976160) и Исследовательским проектом по применению технологий общественного благосостояния провинции Чжэцзян (LGF21B070006).
2,4-dichlorophenoxyacetic acid | WAKO | 1 mg/L | |
20% H2O2 | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 10011218-500ML | |
6-benzylaminopurine | WAKO | 0.5 mg/L | |
75% ethanol | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 1269101-500 mL | |
96-well plate | Thermo Fisher | ||
Acetonitrile | Sigma-Aldrich | ||
Artificial climate incubator | Ningbo DongNan Lab Equipment Co.,Ltd | RDN-1000A-4 | |
Autoclaves | STIK | MJ-Series | |
Caco-2 cells | Nuoyang Biotechnology Co.,Ltd. | ||
CCK8 reagents | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute, China | G021-1-3 | |
Centrifuge | Thermo Fisher | ||
CO2 incubator | Labtrip | HWJ-3-160 | |
Dimethyl sulfoxide | Solarbio Life Sciences | D8371 | |
Diniconazole, 98.7% | J&K Scientific | 83657-24-3 | |
Dulbecco's modified Eagle's medium | Solarbio Life Sciences | 11965-500 mL | |
electronic balance | Shanghai Precision Instrument Co., Ltd | FA1004B | |
Fetal bovine serum | Cellmax | ||
Fluorescence spectrophotometer | Tecan | Infinite M200 | |
Flusilazole, 98.5% | J&K Scientific | 85509-19-9 | |
Freeze dryer | SCIENTZ | ||
High-throughput tissue grinder | SCIENTZ | ||
Inverted microscope | Leica Biosystems | DMi1 | |
Milli-Q system | Millipore | MS1922801-4L | |
Murashige & Skoog medium | HOPEBIO | HB8469-7 | |
Nitrogen blowing concentrator | AOSHENG | MD200-2 | |
PBS | Solarbio Life Sciences | P1022-500 mL | |
Penicillin-Streptomycin Liquid | Solarbio Life Sciences | P1400-100 mL | |
Propiconazole, 100% | J&K Scientific | 60207-90-1 | |
Research plus | Eppendorf | 10-1000 μL | |
Seeds of Little Finger carrot (Daucus carota var. sativus) | Shouguang Seed Industry Co., Ltd | ||
Shaking Incubators | Shanghai bluepard instruments Co.,Ltd. | THZ-98AB | |
Tebuconazole, 100% | J&K Scientific | 107534-96-3 | |
Trypsin-EDTA solution | Solarbio Life Sciences | T1300-100 mL | |
Ultrasound machine | ZKI | UC-6 | |
UV-sterilized super clean bench | AIRTECH | ||
Vortex instrument | Wuxi Laipu Instrument Equipment Co., Ltd | BV-1010 |