O protocolo descreve um novo método para avaliar a citotoxicidade integral de metabólitos de pesticidas triazólicos em plantas.
Vários poluentes orgânicos foram liberados no meio ambiente devido a atividades antrópicas. Esses poluentes podem ser absorvidos pelas plantas cultivadas, causando ameaças potenciais ao ecossistema e à saúde humana em toda a cadeia alimentar. A biotransformação de poluentes em plantas gera uma série de metabólitos que podem ser mais tóxicos do que seus compostos originais, o que implica que os metabólitos devem ser levados em consideração durante a avaliação da toxicidade. No entanto, os metabólitos dos poluentes nas plantas são extremamente complexos, dificultando a obtenção abrangente das informações toxicológicas de todos os metabólitos. Este estudo propôs uma estratégia para avaliar a citotoxicidade integral de metabólitos poluentes em plantas, tratando-os como um todo durante testes toxicológicos. Os pesticidas triazólicos, uma classe de fungicidas de amplo espectro, têm sido amplamente aplicados na produção agrícola. Sua poluição de resíduos em terras agrícolas tem atraído cada vez mais atenção. Assim, quatro pesticidas triazólicos, incluindo flusilazol, diniconazol, tebuconazol e propiconazol, foram selecionados como poluentes testados. Os metabólitos foram gerados pelo tratamento do calo de cenoura com pesticidas triazólicos testados. Após tratamento de 72 h, foram extraídos os metabólitos dos agrotóxicos no calo da cenoura, seguidos de testes toxicológicos utilizando a linhagem celular Caco-2. Os resultados mostraram que os metabólitos dos agrotóxicos testados no calo da cenoura não inibiram significativamente a viabilidade das células Caco-2 (P>0,05), demonstrando não haver citotoxicidade dos metabólitos dos pesticidas. Este método proposto abre um novo caminho para avaliar a citotoxicidade de metabólitos poluentes em plantas, o que deve fornecer dados valiosos para uma avaliação precisa da toxicidade.
As plantas cultivadas que crescem em terras agrícolas podem estar expostas a vários poluentes orgânicos provenientes de atividades antrópicas 1,2. Os poluentes podem ser absorvidos pelas plantas, causando ainda mais ameaças ao ecossistema e à saúde humana por meio das cadeias alimentares 3,4. Os xenobióticos em plantas provavelmente passam por uma série de biotransformações, como os metabolismos das Fases I e II5, gerando uma série de metabólitos. De acordo com o conceito de fígado verde em plantas, o metabolismo vegetal pode reduzir a toxicidade dos xenobióticos 6,7. No entanto, foi revelado que a toxicidade de alguns metabólitos pode ser maior do que a de seus pais. Por exemplo, o produto desbromado do tetrabromobisfenol A (TBBPA) e o produto O-metilado do bisfenol A (BPA) provaram ser muito mais tóxicos do que seus pais 8,9, e a desbromação e a O-metilação compreendem as principais vias metabólicas da Fase I nas plantas. Assim, a avaliação da toxicidade baseada apenas nos progenitores poluentes nas plantas não é precisa, devendo ser tidos em conta os metabolitos correspondentes.
Os metabólitos dos xenobióticos em plantas são extremamente complexos10,11, dificultando sua identificação e separação abrangentes. Além disso, apenas alguns padrões de metabólitos identificados podem ser obtidos. Por conseguinte, não estão disponíveis dados toxicológicos de todos os metabolitos, o que dificulta uma avaliação exaustiva da toxicidade. Este estudo propôs uma estratégia para avaliar a toxicidade integral de metabólitos poluentes em plantas, tratando-os como um todo durante testes toxicológicos, fornecendo novos dados para avaliação precisa da toxicidade de poluentes em plantas. Nosso estudo anterior revelou que a cultura de calos de plantas abre um caminho simples e eficaz para a obtenção de metabólitos de xenobióticos em plantas12. Nesse sentido, a cultura de calos vegetais foi empregada neste estudo para gerar os metabólitos dos poluentes nas plantas, seguida de extração química e testes toxicológicos usando uma linhagem celular humana. O trato intestinal é um dos órgãos-alvo diretos dos xenobióticos expostos a animais e humanos. A linhagem Caco-2 tem se mostrado o melhor modelo para investigar os comportamentos intestinais e a toxicidade de xenobióticos in vitro 13,14,15. Assim, o modelo de célula Caco-2 foi selecionado neste estudo.
Os pesticidas triazólicos, uma classe de fungicidas de amplo espectro, têm sido amplamente aplicados na produção agrícola16. A poluição de resíduos em terras agrícolas tem atraído cada vez mais atenção17,18. Aqui, quatro pesticidas triazólicos comumente usados, incluindo flusilazol, diniconazol, tebuconazol e propiconazol, foram selecionados como poluentes típicos. A cenoura foi selecionada neste estudo como a planta representativa de vegetais frescos e prontos para consumo. O calo de cenoura foi inicialmente exposto aos pesticidas testados na concentração de 100 mg/L. Após exposição de 72 h, os metabólitos foram extraídos para avaliar a citotoxicidade usando a linhagem Caco-2. Este método pode ser facilmente estendido para avaliar a citotoxicidade integral de metabólitos de outros tipos de poluentes em plantas.
Este protocolo foi desenvolvido para avaliar a citotoxicidade integral de metabólitos de pesticidas triazólicos em plantas, combinando calos vegetais e modelos de células humanas. As etapas críticas para este protocolo proposto são o cultivo de calos de plantas e células Caco-2. A parte mais difícil e o conselho relativo para a cultura de calos de plantas foram fornecidos em nosso estudo anterior12. Aqui, deve-se notar que a manutenção celular é a parte …
The authors have nothing to disclose.
Este estudo foi apoiado pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (21976160) e pelo Projeto de Pesquisa de Aplicação de Tecnologia de Bem-Estar Público da Província de Zhejiang (LGF21B070006).
2,4-dichlorophenoxyacetic acid | WAKO | 1 mg/L | |
20% H2O2 | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 10011218-500ML | |
6-benzylaminopurine | WAKO | 0.5 mg/L | |
75% ethanol | Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. | 1269101-500 mL | |
96-well plate | Thermo Fisher | ||
Acetonitrile | Sigma-Aldrich | ||
Artificial climate incubator | Ningbo DongNan Lab Equipment Co.,Ltd | RDN-1000A-4 | |
Autoclaves | STIK | MJ-Series | |
Caco-2 cells | Nuoyang Biotechnology Co.,Ltd. | ||
CCK8 reagents | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute, China | G021-1-3 | |
Centrifuge | Thermo Fisher | ||
CO2 incubator | Labtrip | HWJ-3-160 | |
Dimethyl sulfoxide | Solarbio Life Sciences | D8371 | |
Diniconazole, 98.7% | J&K Scientific | 83657-24-3 | |
Dulbecco's modified Eagle's medium | Solarbio Life Sciences | 11965-500 mL | |
electronic balance | Shanghai Precision Instrument Co., Ltd | FA1004B | |
Fetal bovine serum | Cellmax | ||
Fluorescence spectrophotometer | Tecan | Infinite M200 | |
Flusilazole, 98.5% | J&K Scientific | 85509-19-9 | |
Freeze dryer | SCIENTZ | ||
High-throughput tissue grinder | SCIENTZ | ||
Inverted microscope | Leica Biosystems | DMi1 | |
Milli-Q system | Millipore | MS1922801-4L | |
Murashige & Skoog medium | HOPEBIO | HB8469-7 | |
Nitrogen blowing concentrator | AOSHENG | MD200-2 | |
PBS | Solarbio Life Sciences | P1022-500 mL | |
Penicillin-Streptomycin Liquid | Solarbio Life Sciences | P1400-100 mL | |
Propiconazole, 100% | J&K Scientific | 60207-90-1 | |
Research plus | Eppendorf | 10-1000 μL | |
Seeds of Little Finger carrot (Daucus carota var. sativus) | Shouguang Seed Industry Co., Ltd | ||
Shaking Incubators | Shanghai bluepard instruments Co.,Ltd. | THZ-98AB | |
Tebuconazole, 100% | J&K Scientific | 107534-96-3 | |
Trypsin-EDTA solution | Solarbio Life Sciences | T1300-100 mL | |
Ultrasound machine | ZKI | UC-6 | |
UV-sterilized super clean bench | AIRTECH | ||
Vortex instrument | Wuxi Laipu Instrument Equipment Co., Ltd | BV-1010 |