Summary

植物における典型的なトリアゾール系農薬の代謝産物の細胞毒性の評価

Published: December 22, 2023
doi:

Summary

このプロトコルは、植物中のトリアゾール系農薬の代謝産物の総合的な細胞毒性を評価する新しい方法を説明しています。

Abstract

人為的な活動により、さまざまな有機汚染物質が環境に放出されています。これらの汚染物質は作物に取り込まれ、食物連鎖全体の生態系と人間の健康に潜在的な脅威を引き起こす可能性があります。植物内の汚染物質の生体内変化は、親化合物よりも毒性が高い可能性のある多くの代謝物を生成するため、毒性評価では代謝物を考慮に入れる必要があります。しかし、植物中の汚染物質の代謝物は非常に複雑であり、すべての代謝物の毒性情報を網羅的に取得することは困難です。この研究では、毒物学的試験中に植物全体の汚染物質代謝物を処理することにより、植物中の汚染物質代謝物の総合的な細胞毒性を評価する戦略を提案しました。広域スペクトル殺菌剤の一種であるトリアゾール系農薬は、農業生産に広く適用されています。農地での残留物汚染がますます注目を集めています。したがって、フルシラゾール、ジニコナゾール、テブコナゾール、プロピコナゾールの4つのトリアゾール農薬が試験された汚染物質として選択されました。代謝産物は、試験済みのトリアゾール農薬によるニンジンカルスの処理によって生成されました。.72時間処理した後、ニンジンカルス中の農薬の代謝産物を抽出し、続いてCaco-2細胞株を用いた毒物学的試験を行った。その結果、ニンジンカルス中の試験済み農薬の代謝産物は、Caco-2細胞(P>0.05)の生存率を有意に阻害せず、農薬代謝産物の細胞毒性を示さなかったことが示されました。この提案された方法は、植物中の汚染物質代謝物の細胞毒性を評価するための新しい道を開き、正確な毒性評価のための貴重なデータを提供することが期待されます。

Introduction

農地で生育する作物は、人為的な活動に由来するさまざまな有機汚染物質にさらされる可能性があります1,2。汚染物質は植物に取り込まれ、食物連鎖を通じて生態系と人間の健康にさらに脅威を与える可能性があります3,4。植物の生体異物は、おそらくフェーズIおよびII代謝5などの一連の生体内変化を経験し、多数の代謝産物を生成します。植物の緑の肝臓の概念によれば、植物の代謝は生体異物の毒性を減らすことができます6,7。しかし、一部の代謝産物の毒性は親よりも高い可能性があることが明らかになっています。例えば、テトラブロモビスフェノールAの脱臭素化生成物(TBBPA)とビスフェノールAのO-メチル化生成物(BPA)は、それらの親よりもはるかに毒性が高いことが証明されています8,9、そして脱臭素化とO-メチル化は、植物の主要な第I相代謝経路を構成しています。したがって、植物の汚染物質の親のみに基づく毒性評価は正確ではありませんが、対応する代謝物を考慮に入れる必要があります。

植物中の生体異物の代謝物は非常に複雑であり10,11、それらを包括的に同定して分離することは困難です。さらに、同定された代謝産物のいくつかの基準しか得られません。したがって、すべての代謝産物の毒物学的データは入手できず、包括的な毒性評価が妨げられています。この研究は、毒物学的試験中にそれらを全体として処理することにより、植物中の汚染物質代謝物の総合毒性を評価する戦略を提案し、植物内の汚染物質の正確な毒性評価のための新しいデータを提供しました。私たちの以前の研究では、植物のカルス培養が植物中の生体異物の代謝物を得るためのシンプルで効果的な道を開くことが明らかになりました12。したがって、この研究では、植物カルス培養を使用して植物内の汚染物質の代謝物を生成し、続いてヒト細胞株を使用した化学的抽出と毒物学的試験を行いました。腸管は、動物や人間にさらされる生体異物の直接の標的臓器の1つです。Caco-2細胞株は、in vitro 13,14,15で生体異物の腸内挙動と毒性を調査するための最良のモデルであることが証明されています。したがって、この研究ではCaco-2細胞モデルが選択されました。

広域スペクトル殺菌剤の一種であるトリアゾール系農薬は、農業生産に広く適用されてきた16。農地での彼らの残留汚染は、ますます注目を集めています17,18。ここでは、フルシラゾール、ジニコナゾール、テブコナゾール、プロピコナゾールの4つの一般的に使用されるトリアゾール系農薬を代表的な汚染物質として選択しました。この研究では、ニンジンは新鮮ですぐに食べられる野菜の代表的な植物として選ばれました。ニンジンカルスは、最初に100 mg / Lの濃度で試験された農薬に曝露されました。72時間のばく露後、代謝物を抽出し、Caco-2細胞株を用いて細胞毒性を評価しました。この方法は、植物中の他の種類の汚染物質の代謝産物の総合的な細胞毒性を評価するために容易に拡張できます。

Protocol

1.にんじんカルスの鑑別 注:ニンジンカルスの分化のための詳細なプロトコルは、以前の研究12で説明されています。ここでは、その簡単な説明を示します。 春化した種子の表面を75%エタノールで20分間滅菌し、続いて20%H2O2 で20分間滅菌します。蒸留水で少なくとも3回洗います。 ホル…

Representative Results

図1 は、ニンジンカルス中の農薬代謝産物の生成、抽出、および細胞毒性評価のための提案方法の概略図を示しています。 図2では、試験した農薬の取り込みと代謝の動態曲線から、培養培地中の農薬の濃度が指数関数的に減少したのに対し、ニンジンカルスの農薬の濃度は増加し始め、4時間または8時間でピークに達し、…

Discussion

このプロトコルは、植物のカルスとヒト細胞モデルを組み合わせることにより、植物中のトリアゾール系農薬の代謝産物の不可欠な細胞毒性を評価するために開発されました。この提案されたプロトコルの重要なステップは、植物のカルスとCaco-2細胞の培養です。植物のカルス培養に関する最も難しい部分と相対的なアドバイスは、以前の研究12で?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

本研究は、中国国家自然科学基金会(21976160)と浙江省公共福祉技術応用研究プロジェクト(LGF21B070006)の支援を受けて行われました。

     

Materials

2,4-dichlorophenoxyacetic acid WAKO 1 mg/L
20% H2O2 Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. 10011218-500ML
6-benzylaminopurine WAKO 0.5 mg/L
75% ethanol Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. 1269101-500 mL
96-well plate Thermo Fisher
Acetonitrile Sigma-Aldrich
Artificial climate incubator Ningbo DongNan Lab Equipment Co.,Ltd RDN-1000A-4
Autoclaves STIK MJ-Series
Caco-2 cells Nuoyang Biotechnology Co.,Ltd.
CCK8 reagents Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute, China G021-1-3
Centrifuge Thermo Fisher
CO2 incubator Labtrip HWJ-3-160
Dimethyl sulfoxide Solarbio Life Sciences D8371
Diniconazole, 98.7% J&K Scientific 83657-24-3
Dulbecco's modified Eagle's medium Solarbio Life Sciences 11965-500 mL
electronic balance Shanghai Precision Instrument Co., Ltd FA1004B
Fetal bovine serum Cellmax
Fluorescence spectrophotometer Tecan Infinite M200
Flusilazole, 98.5% J&K Scientific 85509-19-9  
Freeze dryer SCIENTZ
High-throughput tissue grinder SCIENTZ
Inverted microscope Leica Biosystems DMi1
Milli-Q system Millipore MS1922801-4L
Murashige & Skoog medium HOPEBIO HB8469-7
Nitrogen blowing concentrator AOSHENG MD200-2
PBS Solarbio Life Sciences P1022-500 mL
Penicillin-Streptomycin Liquid Solarbio Life Sciences P1400-100 mL
Propiconazole, 100% J&K Scientific 60207-90-1 
Research plus Eppendorf 10-1000 μL
Seeds of Little Finger carrot (Daucus carota var. sativus) Shouguang Seed Industry Co., Ltd
Shaking Incubators Shanghai bluepard instruments Co.,Ltd. THZ-98AB
Tebuconazole, 100% J&K Scientific 107534-96-3
Trypsin-EDTA solution Solarbio Life Sciences T1300-100 mL
Ultrasound machine ZKI UC-6
UV-sterilized super clean bench AIRTECH
Vortex instrument Wuxi Laipu Instrument Equipment Co., Ltd BV-1010

References

  1. Fan, Y., et al. Uptake of halogenated organic compounds (HOCs) into peanut and corn during the whole life cycle grown in an agricultural field. Environ Pollut. 263, 114400 (2020).
  2. Wu, Q., et al. Trace metals in e-waste lead to serious health risk through consumption of rice growing near an abandoned e-waste recycling site: Comparisons with PBDEs and AHFRs. Environ Pollut. 247, 46-54 (2019).
  3. Liu, A. F., et al. Tetrabromobisphenol-A/S and nine novel analogs in biological samples from the Chinese Bohai Sea: Implications for trophic transfer. Environ Sci Technol. 50 (8), 4203-4211 (2016).
  4. Awasthi, A. K., Zeng, X., Li, J. Environmental pollution of electronic waste recycling in India: A critical review. Environ Pollut. 211, 259-270 (2016).
  5. Zhang, Q., et al. Plant accumulation and transformation of brominated and organophosphate flame retardants: A review. Environ Pollut. 288, 117742 (2021).
  6. Sandermann, H. Higher plant metabolism of xenobiotics: the ‘green liver’ concept. Pharmacogenetics. 4, 225-241 (1994).
  7. Zhang, J. J., Yang, H. Metabolism and detoxification of pesticides in plants. Sci Total Environ. 790, 148034 (2021).
  8. Debenest, T., et al. Ecotoxicity of a brominated flame retardant (tetrabromobisphenol A) and its derivatives to aquatic organisms. Comp Biochem Phys C. 152 (4), 407-412 (2010).
  9. McCormick, J. M., Van Es, T., Cooper, K. R., White, L. A., Haggblom, M. M. Microbially mediated O-methylation of bisphenol A results in metabolites with increased toxicity to the developing zebrafish (Danio rerio) embryo. Environ Sci Technol. 45 (15), 6567-6574 (2011).
  10. Zhang, Q., et al. Multiple metabolic pathways of 2,4,6-tribromophenol in rice plants. Environ Sci Technol. 53 (13), 7473-7482 (2019).
  11. Hou, X., et al. Glycosylation of tetrabromobisphenol A in pumpkin. Environ Sci Technol. 53 (15), 8805-8812 (2019).
  12. Wu, J., et al. Elucidating the metabolism of 2,4-Dibromophenol in plants. J Vis Exp. (192), e65089 (2023).
  13. Zucco, F., et al. An Inter-laboratory study to evaluate the effects of medium composition on the differentiation and barrier function of Caco-2 cell lines. Atla-Altern Lab Anim. 33, 603-618 (2005).
  14. Eisenbrand, G., et al. Methods of in vitro toxicology. Food Chem Toxicol. 40, 193-236 (2002).
  15. Sambuy, Y., et al. The Caco-2 cell line as a model of the intestinal barrier: influence of cell and culture-related factors on Caco-2 cell functional characteristics. Cell Biol Toxicol. 21, 1-26 (2005).
  16. Li, H., et al. Uptake, translocation, and subcellular distribution of three triazole pesticides in rice. Environ Sci Pollut Res. 29 (17), 25581-25590 (2022).
  17. Satapute, P., Kamble, M. V., Adhikari, S. S., Jogaiah, S. Influence of triazole pesticides on tillage soil microbial populations and metabolic changes. Sci Total Environ. 651, 2334-2344 (2019).
  18. Xu, Y., et al. A possible but unrecognized risk of acceptable daily intake dose triazole pesticides exposure-bile acid disturbance induced pharmacokinetic changes of oral medication. Chemosphere. 322, 138209 (2023).
  19. Louis, K. S., Siegel, A. C. Cell viability analysis using trypan blue: manual and automated methods. Methods Mol Biol. 740, 7-12 (2011).

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Cite This Article
Zhou, Q., Wang, Q., Wu, J., Zhang, A., Sun, J. Assessing Cytotoxicity of Metabolites of Typical Triazole Pesticides in Plants. J. Vis. Exp. (202), e66048, doi:10.3791/66048 (2023).

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