Summary

Fotoluminescenza potenziata degli estratti di Curcuma longa tramite trasferimento di energia mediato dal chitosano per applicazioni di autenticazione tessile

Published: December 22, 2023
doi:

Summary

La fotoluminescenza è uno dei meccanismi di autenticazione più efficaci utilizzati oggi. L’utilizzo e il miglioramento di materiali di origine naturale con proprietà fotoluminescenti intrinseche e la loro incorporazione nei substrati dei tessuti possono portare allo sviluppo di tessuti ecologici, sostenibili e funzionali per applicazioni intelligenti.

Abstract

I coloranti per i marchi di sicurezza svolgono un ruolo fondamentale nella salvaguardia dell’integrità dei prodotti in vari settori, come quello tessile, farmaceutico, alimentare e manifatturiero, tra gli altri. Tuttavia, la maggior parte dei coloranti commerciali utilizzati come marchi di sicurezza sono costosi e possono contenere sostanze tossiche e nocive che rappresentano un rischio per la salute umana. La curcumina, un composto fenolico naturale presente nella curcuma, possiede proprietà fotoluminescenti distinte insieme al suo colore giallo vibrante, che la rendono un potenziale materiale candidato per applicazioni di autenticazione. Questo studio dimostra un approccio economico ed ecologico per sviluppare emissioni fotoluminescenti potenziate dai coloranti alla curcumina per l’autenticazione tessile. La curcumina è stata estratta da C. longa utilizzando il metodo di estrazione con solvente assistito da sonicazione. L’estratto è stato rivestito per immersione e tinto nei substrati tessili. Il chitosano è stato introdotto come agente post-mordenzante per stabilizzare la curcumina e come co-sensibilizzante. La co-sensibilizzazione della curcumina con il chitosano innesca il trasferimento di energia per migliorarne l’intensità luminescente. Il picco di assorbimento UV-visibile a 424 nm è associato al caratteristico assorbimento della curcumina. Le misurazioni della fotoluminescenza hanno mostrato un’ampia emissione con un picco di 545 nm con un significativo miglioramento attribuito al trasferimento di energia indotto dal chitosano, mostrando così un grande potenziale come colorante fotoluminescente di derivazione naturale per applicazioni di autenticazione.

Introduction

La contraffazione è considerata una piaga in settori diffusi in tutto il mondo. La rapida ondata di prodotti contraffatti sul mercato provoca il caos economico, che impedisce il sostentamento dell’inventore principale 1,2,3,4,5,6. Ciò è stato portato alla ribalta nel 20207 sulla continua preoccupazione per i prodotti contraffatti emergenti, come evidenziato dalla tendenza crescente delle pubblicazioni che consistono nella parola chiave anticontraffazione o contraffazione nei loro titoli. Dall’ultima segnalazione del 2019 si osserva un aumento significativo delle pubblicazioni relative alla contraffazione, il che suggerisce che si stanno compiendo sforzi considerevoli per combattere la produzione e la distribuzione di merci fraudolente. D’altra parte, può anche essere piuttosto allarmante, dato che indica la progressione dell’industria della contraffazione, che dovrebbe persistere se non affrontata in modo efficace. L’industria tessile non è esente da questo problema, poiché la presenza di prodotti tessili contraffatti ha avuto un grave impatto sui mezzi di sussistenza di venditori, produttori e tessitori autentici, tra gli altri 3,8. Ad esempio, l’industria tessile dell’Africa occidentale è stata a lungo considerata uno dei principali mercati di esportazione al mondo. Tuttavia, èstato riferito che circa l’85% della quota di mercato è detenuta da prodotti tessili di contrabbando che violano i marchi tessili dell’Africa occidentale. Gli effetti della contraffazione sono stati segnalati anche in altri continenti come l’Asia, l’America e l’Europa, indicando che questa crisi ha raggiunto un livello incontrollabile e rappresenta una minaccia significativa per l’industria tessile già in difficoltà 2,3,4,10,11,12.

Con i rapidi progressi della scienza, della tecnologia e dell’innovazione, i ricercatori hanno assunto il ruolo di sviluppare materiali funzionali ai fini delle applicazioni anticontraffazione. L’uso della tecnologia segreta è uno degli approcci più comuni ed efficaci per contrastare la produzione di beni fraudolenti. Comporta l’utilizzo di materiali fotoluminescenti come coloranti di sicurezza che mostrano un’emissione luminosa specifica quando irradiati da diverse lunghezze d’onda13,14. Tuttavia, alcuni coloranti fotoluminescenti disponibili sul mercato possono imporre tossicità ad alte concentrazioni, rappresentando così una minaccia per la salute umana e l’ambiente15,16.

La curcuma (Curcuma longa) è una pianta essenziale utilizzata in una miriade di applicazioni come vernici, agenti aromatizzanti, medicinali, cosmetici e coloranti per tessuti17. Nei rizomi sono presenti composti chimici fenolici presenti in natura chiamati curcuminoidi. Questi curcuminoidi includono curcumina, demetossicurcumina e bisdemetossicurcumina, tra i quali la curcumina è il principale costituente responsabile della vivace colorazione dal giallo all’arancione e delle proprietà della curcuma18. La curcumina, altrimenti nota come 1,7-bis(4-idrossi-3-metossifenil)-1,6-eptadiene-3,5-dione19,20 con una formula empirica di C21H20O6, ha attirato una notevole attenzione in campo biomedico e farmaceutico grazie alle sue proprietà antisettiche, antinfiammatorie, antibatteriche e antiossidanti 17,18,21,22,23. È interessante notare che la curcumina possiede anche caratteristiche spettrali e fotochimiche. Particolarmente degne di nota sono le sue intense proprietà fotoluminescenti quando sottoposto a eccitazioni ultraviolette (UV) che sono state esplorate solo da pochi studi 19,24,25. Date queste caratteristiche, in tandem con la sua natura idrofobica e le sue proprietà non tossiche, la curcumina emerge come un colorante ideale per i contrassegni di autenticazione.

L’estrazione della curcumina dalla curcuma è stata segnalata per la prima volta all’inizio del 1800. Nel corso degli ultimi secoli, numerose metodologie e tecniche di estrazione sono state ideate e migliorate per ottenere una maggiore resa 26,27,28,29,30,31,32,33. L’estrazione con solvente convenzionale è un approccio ampiamente utilizzato in quanto impiega solventi organici come etanolo, metanolo, acetone ed esano, tra gli altri, per isolare la curcumina dalla curcuma34,35. Questo metodo si è evoluto attraverso modifiche, abbinate a tecniche più avanzate come l’estrazione assistita da microonde (MAE)18,36,37, l’estrazione Soxhlet 38,39, l’estrazione assistita da enzimi (EAE)39,40 e l’estrazione ad ultrasuoni36, tra l’altro per aumentare la resa. Generalmente, il metodo di estrazione con solvente è stato applicato per l’estrazione di coloranti naturali grazie alla sua versatilità, al basso fabbisogno energetico e all’economicità che lo rendono ideale per industrie scalabili come quella tessile.

La curcumina è stata integrata come colorante naturale per i tessuti grazie alla sua distinta tonalità gialla. Tuttavia, lo scarso adsorbimento dei coloranti naturali sulle fibre tessili rappresenta una sfida che ne ostacola la redditività commerciale41. I mordenti, come metalli, polisaccaridi e altri composti organici, fungono da leganti comuni per rafforzare l’affinità dei coloranti naturali con il tessuto. Il chitosano, un polisaccaride derivato dai crostacei, è stato ampiamente utilizzato come agente mordenzante alternativo grazie alla sua abbondanza in natura, alla biocompatibilità e alla durata del lavaggio42. Questo studio riporta un approccio semplice e diretto nella preparazione della marcatura di autenticazione basata sulla curcumina. Gli estratti di curcumina grezza sono stati ottenuti tramite il metodo di estrazione con solvente assistito da sonicazione. Le proprietà fotoluminescenti della curcumina estratta sono state studiate in modo completo su substrati tessili e ulteriormente migliorate con l’introduzione del chitosano come agente mordenzante. Ciò dimostra il notevole potenziale come colorante fotoluminescente di derivazione naturale per applicazioni di autenticazione.

Protocol

1. Estrazione della curcumina Pesare 3 g di polvere di C. longa in una provetta da centrifuga da 50 ml.NOTA: Una provetta da centrifuga da 50 mL è stata utilizzata per facilitare il processo di centrifugazione e processare l’estrazione su un unico contenitore. Aggiungere 38 mL di etanolo (AR, 99%) nella provetta da centrifuga. Agitare delicatamente il tubo per garantire un’accurata miscelazione dell’etanolo con la polvere di C. longa . Sonicare il tubo…

Representative Results

Le analisi FTIR delle fibre determinano la struttura chimica di ciascuna fibra rappresentata nei tessuti multi-tester #1. La spettroscopia FTIR è stata utilizzata per caratterizzare i gruppi funzionali presenti in ciascun componente dei tessuti multi-test. Come mostrato nella Figura 1 supplementare, la distinzione si verifica a causa della presenza di gruppi funzionali N-H, che porta a suddividere il tessuto in azotato (Figura 1A supplementare</…

Discussion

Il finissaggio tessile è una pratica comune all’interno del settore al fine di incorporare ulteriori proprietà funzionali sui tessuti, rendendoli più adatti per applicazioni specifiche 45,47,48. In questo studio, la curcumina estratta è stata utilizzata come colorante naturale per fungere da meccanismo di autenticazione per applicazioni tessili. I protocolli pongono l’accento non solo sull’estrazione della curcumina dalla cu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è supportato dal Dipartimento di Scienza e Tecnologia – Istituto di Ricerca Tessile delle Filippine nell’ambito del progetto DOST Grants-in-Aid (DOST-GIA) intitolato Tecnologia Segreta Verso la Sostenibilità e la Protezione dei Settori Tessili delle Filippine nell’ambito della Digitalizzazione del Programma dell’Industria Tessitura a Telaio a Mano delle Filippine.

Materials

(Curcumin) C. longa, spray dried  N/A N/A Naturally Sourced
100 mL Graduated Cylinder n/a
10 mL Serological Pipette n/a
200 mL Beaker n/a
365 nm UV Light AloneFire SV004 LG
50 mL Centeifuge Tube n/a
AATCC Multitester Fabric Testfabrics, Inc. 401002 AATCC Multifiber test fabric # 1 precut pieces of 2 X 2 inches, Heat Sealed
Analytical Balance Satorius BSA 224S-CW
Aspirator n/a
ATR- FTIR Bruker Bruker Tensor II
Centrifuge Hermle Labortechnik GmbH Z 206 A
Chitosan Tokyo Chemical Industries 9012-76-4
Digital  Camera ToupTek XCAM1080PHB
Drying Rack n/a
Ethanol Chem-Supply 64-17-5 Undenatured, 99.9% purity
Glacial Acetic Acid RCI-Labscan 64-19-7 AR Grade, 99.8% purity
Glass Slide n/a
Iron Clamp n/a
Iron Stand n/a
Magnetic Stirrer Corning PC-620D
Pasteur Pipette n/a
Propan-2-ol RCI-Labscan 67-63-0 AR Grade, 99.8% purity
Sonicator Jeio Tech Inc. UCS-20
Spectrofluorometer  Horiba (Jovin Yvon) Horiba Fluoromax Plus
Stirring Bar n/a
UV-Vis Spectrophotometer Agilent Cary UV 100
Wash bottle n/a
Zoom Stereo Microscope Olympus SZ61

References

  1. Eisend, M., Hartmann, P., Apaolaza, V. Who buys counterfeit luxury brands? A meta-analytic synthesis of consumers in developing and developed markets. J Int Market. 25 (4), 89-111 (2017).
  2. Agrawal, T. K., Koehl, L., Campagne, C. Uncertainty modelling in knowledge engineering and decision making. World Scientific Procedings Series. , (2012).
  3. Cakin, M. B., Dincer, A. T. A. . Turkish studies-comparative religious studies. , (2023).
  4. Albarq, A. N. Counterfeit products and the role of the consumer in Saudi Arabia. Am J Indust Busi Manag. 5 (12), 819-827 (2015).
  5. Boamah, F., Ayesu, S. M., Crentsil, T., Pardie, S. P. The effect of academic textiles studies on the Ghana textile industry. Africa J Appl Res. 8 (2), 186-196 (2022).
  6. Bruce-Amarty, E. J., Amissah, E. R. K., Safo-Ankama, K. The decline of Ghana’s textile industry: Its effects on textile education in Ghana. Art Design Studies. 22, 36-44 (2014).
  7. Abdollahi, A., Roghani-Mamaqani, H., Razavi, B., Salami-Kalajahi, M. Photoluminescent and chromic nanomaterials for anticounterfeiting technologies: Recent advances and future challenges. ACS Nano. 14 (11), 14417-14492 (2020).
  8. Norum, P. S., Cuno, A. Analysis of the demand for counterfeit goods. J Fashion Market Manage: An Int J. 15 (1), 27-40 (2011).
  9. Okonkwo, I. E., Abiala, W. Justification of counterfeits a microscopic view from a trademark perspective. Mayne Quart Law Rev. 6 (4), 1-7 (2021).
  10. Quoquab, F., Pahlevan, S., Mohammad, J., Thurasamy, R. Factors affecting consumers’ intention to purchase counterfeit product. Asia Pac J Market Log. 29 (4), 837-853 (2017).
  11. Dalal, H. Challenges: A study of Textile Industry in India. Pramana Res J. 9 (5), 423-429 (2019).
  12. Mushi, H. M., Mohd Noor, N. A. Consumer behaviour and counterfeit purchase in the Tanzanian mainland. Global Bus Manage Rev (GBMR). 8 (1), 49-64 (2022).
  13. Ren, S., et al. Highly bright carbon quantum dots for flexible anti-counterfeiting. J Mat Chem C. 10 (31), 11338-11346 (2022).
  14. Liu, R. S. . Phosphors, Up Conversion Nano Particles, Quantum Dots and Their Applications. , (2017).
  15. Chang, K., et al. Conjugated polymer dots for ultra-stable full-color fluorescence patterning. Small. 10 (21), 4270-4275 (2014).
  16. Fatahi, Z., Esfandiari, N., Ranjbar, Z. A New anti-counterfeiting feature relying on invisible non-toxic fluorescent carbon dots. J Anal Test. 4 (4), 307-315 (2020).
  17. Abd El-Hack, M. E., et al. Curcumin, the active substance of turmeric: its effects on health and ways to improve its bioavailability. J Sci Food Agri. 101 (14), 5747-5762 (2021).
  18. Bener, M., Özyürek, M., Güçlü, K., Apak, R. Optimization of microwave-assisted extraction of curcumin from Curcuma longa L. (Turmeric) and evaluation of antioxidant activity in multi-test systems. Rec. Nat. Prod. 10 (5), 542-554 (2016).
  19. Van Nong, H., et al. Fabrication and vibration characterization of curcumin extracted from turmeric (Curcuma longa) rhizomes of the northern Vietnam. Springerplus. 5 (1), 1147 (2016).
  20. Kolev, T. M., Velcheva, E. A., Stamboliyska, B. A., Spiteller, M. DFT and experimental studies of the structure and vibrational spectra of curcumin. Int J Quantum Chem. 102 (6), 1069-1079 (2005).
  21. Mohajeri, M., Behnam, B., Tasbandi, A., Jamialahmadi, T., Sahebkar, A. . Studies on biomarkers and new targets in aging research in Iran: Focus on turmeric and curcumin. , (2021).
  22. Hay, E., et al. Therapeutic effects of turmeric in several diseases: An overview. Chem Biol Interact. 310, 108729 (2019).
  23. Ahmad, R. S., et al. Biochemistry, safety, pharmacological activities, and clinical applications of turmeric: A mechanistic review. Evid Based Complement Alternat Med. 2020, 7656919 (2020).
  24. Tsaplev, Y. B., Lapina, V. A., Trofimov, A. V. Curcumin in dimethyl sulfoxide: Stability, spectral, luminescent and acid-base properties. Dyes Pigments. 177, 108327 (2020).
  25. Chignell, C. F., et al. Spectral and photochemical properties of curcumin. Photochem Photobiol. 59 (3), 295-302 (1994).
  26. Sun, X., Gao, C., Cao, W., Yang, X., Wang, E. Capillary electrophoresis with amperometric detection of curcumin in Chinese herbal medicine pretreated by solid-phase extraction. J Chromatogr A. 962 (1-2), 117-125 (2002).
  27. Takenaka, M., et al. Effective extraction of curcuminoids by grinding turmeric (Curcuma longa) with medium-chain triacylglycerols. Food Sci Technol Res. 19 (4), 655-659 (2013).
  28. Heffernan, C., Ukrainczyk, M., Gamidi, R. K., Hodnett, B. K., Rasmuson, &. #. 1. 9. 7. ;. C. Extraction and purification of curcuminoids from crude curcumin by a combination of crystallization and chromatography. Org Process Res Dev. 21 (6), 821-826 (2017).
  29. Paramasivam, M., Poi, R., Banerjee, H., Bandyopadhyay, A. High-performance thin layer chromatographic method for quantitative determination of curcuminoids in Curcuma longa germplasm. Food Chem. 113 (2), 640-644 (2009).
  30. Priyadarsini, K. I. The chemistry of curcumin: from extraction to therapeutic agent. Molecules. 19 (12), 20091-20112 (2014).
  31. Nhujak, T., Saisuwan, W., Srisa-art, M., Petsom, A. Microemulsion electrokinetic chromatography for separation and analysis of curcuminoids in turmeric samples. J Sep Sci. 29 (5), 666-676 (2006).
  32. Kim, Y. J., Lee, H. J., Shin, Y. Optimization and validation of high-performance liquid chromatography method for individual curcuminoids in turmeric by heat-refluxed extraction. J Agri Food Chem. 61 (46), 10911-10918 (2013).
  33. Patel, K., Krishna, G., Sokoloski, E., Ito, Y. Preparative separation of curcuminoids from crude curcumin and turemric powder by pH-zone refining countercurrent chromatography. J Liq Chrom Rel Tech. 23 (14), 2209-2218 (2007).
  34. Paulucci, V. P., Couto, R. O., Teixeira, C. C. C., Freitas, L. A. P. Optimization of the extraction of curcumin from Curcuma longa rhizomes. Rev Bras Farmacogn. 23 (1), 94-100 (2013).
  35. Ali, I., Haque, A., Saleem, K. Separation and identification of curcuminoids in turmeric powder by HPLC using phenyl column. Anal. Methods. 6 (8), 2526-2536 (2014).
  36. Li, M., Ngadi, M. O., Ma, Y. Optimisation of pulsed ultrasonic and microwave-assisted extraction for curcuminoids by response surface methodology and kinetic study. Food Chem. 165, 29-34 (2014).
  37. Mandal, V., Mohan, Y., Hemalatha, S. Microwave assisted extraction of curcumin by sample-solvent dual heating mechanism using Taguchi L9 orthogonal design. J Pharm Biomed Anal. 46 (2), 322-327 (2008).
  38. Shankar, M., Palani, S., Nivedha, D. Extraction of Curcumin from Raw Turmeric (Curcuma longa.)-A Comparative Study, Using Soxhlet, Chemical, Chromatographic, and Spectroscopic Methods and Determining its Bioavailability. Int J Mod Dev in Eng Sci. 1 (6), 67-72 (2022).
  39. Kurmudle, N., Kagliwal, L. D., Bankar, S. B., Singhal, R. S. Enzyme-assisted extraction for enhanced yields of turmeric oleoresin and its constituents. Food Biosci. 3, 36-41 (2013).
  40. Chassagnez-Méndez, A. L., Corrêa, N. C. F., França, L. F. d., Machado, N. T. d., Araújo, M. E. A mass transfer model applied to the supercritical extraction with CO2 of curcumins from turmeric rhizomes (Curcuma longa L). Brazil J Chem Eng. 17, 315-322 (2000).
  41. Ghoreishian, S. M., Maleknia, L., Mirzapour, H., Norouzi, M. Antibacterial properties and color fastness of silk fabric dyed with turmeric extract. Fibers Poly. 14 (2), 201-207 (2013).
  42. Safapour, S., Sadeghi-Kiakhani, M., Doustmohammadi, S. Chitosan-cyanuric chloride hybrid as an efficient novel bio-mordant for improvement of cochineal natural dye absorption on wool yarns. J Textile Inst. 110 (1), 81-88 (2018).
  43. Vahur, S., Teearu, A., Peets, P., Joosu, L., Leito, I. ATR-FT-IR spectral collection of conservation materials in the extended region of 4000-80 cm(-)(1). Anal Bioanal Chem. 408 (13), 3373-3379 (2016).
  44. Gunasekaran, S., Natarajan, R., Natarajan, S., Rathikha, R. Structural investigation on curcumin. Asian J Chem. 20 (4), 2903 (2008).
  45. Kim, H. J., et al. Curcumin dye extracted from Curcuma longa L. used as sensitizers for efficient dye-sensitized solar cells. Int J Electrochem Sci. 8 (6), 8320-8328 (2013).
  46. Singh, P. K., Wani, K., Kaul-Ghanekar, R., Prabhune, A., Ogale, S. From micron to nano-curcumin by sophorolipid co-processing: highly enhanced bioavailability, fluorescence, and anti-cancer efficacy. RSC Adv. 4 (104), 60334-60341 (2014).
  47. Holmquist, H., et al. Properties, performance and associated hazards of state-of-the-art durable water repellent (DWR) chemistry for textile finishing. Environ Int. 91, 251-264 (2016).
  48. Berradi, M., et al. Textile finishing dyes and their impact on aquatic environs. Heliyon. 5 (11), e02711 (2019).
  49. Behera, M., Nayak, J., Banerjee, S., Chakrabortty, S., Tripathy, S. K. A review on the treatment of textile industry waste effluents towards the development of efficient mitigation strategy: An integrated system design approach. J Environ Chem Eng. 9 (4), 105277 (2021).
  50. Massella, D., Giraud, S., Guan, J., Ferri, A., Salaün, F. Textiles for health: a review of textile fabrics treated with chitosan microcapsules. Environ Chem Lett. 17 (4), 1787-1800 (2019).
  51. Wang, F., Huang, W., Jiang, L., Tang, B. Quantitative determination of proteins based on strong fluorescence enhancement in curcumin-chitosan-proteins system. J Fluoresc. 22 (2), 615-622 (2012).
  52. Yang, M., Wu, Y., Li, J., Zhou, H., Wang, X. Binding of curcumin with bovine serum albumin in the presence of iota-carrageenan and implications on the stability and antioxidant activity of curcumin. J Agric Food Chem. 61 (29), 7150-7155 (2013).
  53. Sneharani, A. H., Karakkat, J. V., Singh, S. A., Rao, A. G. Interaction of curcumin with beta-lactoglobulin-stability, spectroscopic analysis, and molecular modeling of the complex. J Agric Food Chem. 58 (20), 11130-11139 (2010).

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De Guzman, G. N. A., Magalong, J. R. S., Bantang, J. P. O., Leaño, Jr., J. L. Enhanced Photoluminescence of Curcuma longa Extracts via Chitosan-Mediated Energy Transfer for Textile Authentication Applications. J. Vis. Exp. (202), e66035, doi:10.3791/66035 (2023).

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