تنتج الزائفة الزنجارية المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي للرامنوليبيد. يكتشف كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة ويحدد نسبة الدهون الأحادية والثنائية التي تنتجها كل سلالة. يتضمن القياس الكمي لإجمالي الرامنوليبيدات تقييم مكافئات الرامنوز الموجودة في هذه المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي المستخرجة من المواد الطافية المستزرعة باستخدام طريقة الأورسينول.
البكتيريا البيئية Pseudomonas aeruginosa هي مسببات الأمراض الانتهازية مع مقاومة عالية للمضادات الحيوية التي تمثل خطرا على الصحة. تنتج هذه البكتيريا مستويات عالية من المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي المعروفة باسم rhamnolipids (RL) ، وهي جزيئات ذات قيمة تقنية حيوية كبيرة ولكنها مرتبطة أيضا بسمات الفوعة. وفي هذا الصدد، قد يكون الكشف عن الرخصة وتحديدها كميا مفيدا لكل من تطبيقات التكنولوجيا الأحيائية ومشاريع البحوث الطبية الحيوية. في هذه المقالة ، نوضح خطوة بخطوة تقنية الكشف عن إنتاج شكلين من RL التي تنتجها P. aeruginosa باستخدام كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة (TLC): أحادي الرامنوليبيد (mRL) ، والجزيئات المكونة من ديمر من الأحماض الدهنية (بشكل رئيسي C10-C10) مرتبطة بجزء واحد من rhamnose ، و di-rhamnolipids (dRL) ، وهي جزيئات تتكون من ثنائي حمض دهني مماثل مرتبط بشقين من rhamnose. بالإضافة إلى ذلك ، نقدم طريقة لقياس الكمية الإجمالية ل RL بناء على التحلل المائي الحمضي لهذه المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي المستخرجة من طاف ثقافة P. aeruginosa والكشف اللاحق عن تركيز الرامنوز الذي يتفاعل مع الأورسينول. يمكن استخدام الجمع بين كلتا التقنيتين لتقدير التركيز التقريبي ل mRL و dRL الناتج عن سلالة معينة ، كما هو موضح هنا مع سلالات النوع PAO1 (مجموعة الفيلوغروب 1) و PA14 (مجموعة الفيلو 2) و PA7 (مجموعة الفيلو 3).
Pseudomonas aeruginosa هي بكتيريا بيئية وممرض انتهازي يثير قلقا كبيرا بسبب إنتاجها للسمات المرتبطة بالفوعة ومقاومتها العاليةللمضادات الحيوية 1,2. المستقلب الثانوي المميز الذي تنتجه هذه البكتيريا هو RL الفاعل بالسطح الحيوي ، والذي يتم إنتاجه بطريقة منسقة مع العديد من السمات المرتبطة بالفوعة مثل فينازين بيوسيانين ، وهو مضاد حيوي له نشاط الأكسدة والاختزال ، والإيلاستاز البروتياز3. تم استغلال خصائص الشد النشط والاستحلاب ل RL في تطبيقات صناعية مختلفة ويتم تسويقها حاليا4.
تنتج معظم سلالات P. aeruginosa ، التي تنتمي إلى المجموعتين 1 و 2 ، نوعين من RL: mRL ، والذي يتكون من جزء واحد من rhamnose مرتبط بحمض دهني ثنائي بشكل أساسي من 10 ذرات كربون ، و dRL ، الذي يحتوي على جزء رامنوز إضافي مرتبط بالرامنوزالأول 4 (انظر الشكل 1). ومع ذلك ، فقد تم الإبلاغ عن أن مجموعتين صغيرتين من P. aeruginosa (المجموعتان 3 و 5) تنتجان فقطmRL 5,6. يحتوي نوعان من RL على خليط من دايمرات الأحماض الدهنية ، والتي ، كما ذكرنا ، هي C10-C10 بشكل أساسي ، ولكن يتم أيضا إنتاج نسب أصغر من الجزيئات التي تحتوي على ثنائيات C12-C10 و C12-C12 و C10-C12: 1. تم الإبلاغ عن توصيف متجانسات RL التي تنتجها سلالات مختلفة باستخدام HPLC MS / MS 7,8. يمكن للطرق الموصوفة في هذا العمل أن تفرق فقط بين mRL و dRL ولكن لا يمكن استخدامها لتوصيف متجانسات RL.
P. aeruginosa وبعض أنواع Burkholderia هي منتجة طبيعية ل RL9 ، لكن البكتيريا السابقة هي المنتج الأكثر كفاءة. ومع ذلك ، يتم إنتاج RL المستخدم تجاريا حاليا في مشتقات Pseudomonas putida KT2440 التي تعبر عن جينات P. aeruginosa لتجنب استخدام هذا العامل الممرض الانتهازي10,11. إن الكشف عن RL التي تنتجها P. aeruginosa وقياسها الكمي لهما أهمية كبيرة لدراسة الآليات الجزيئية المشاركة في التعبير عن السمات المرتبطة بالفوعة12 ، وفي توصيف السلالات التي تنتمي إلى clades 3 أو 513 ، ولبناء مشتقات P. aeruginosa التي تفرط في إنتاج هذه المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي مع تقليل الفوعة14. تم الكشف عن إنتاج المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي بواسطة الكائنات الحية الدقيقة المختلفة بناء على بعض الخصائص العامة لهذه المركبات ، مثل طريقة إسقاط الانهيار أو مؤشر الاستحلاب15 ، ولكن هذه الطرق ليست دقيقة ولا محددة16.
هنا ، نصف بروتوكول الكشف عن mRL و dRL باستخدام الاستخلاص السائل لإجمالي RL من طافات الاستزراع لمختلف سلالات P. aeruginosa وفصل كلا النوعين من RL باستخدام TLC. في هذه الطريقة ، يتم فصل RL المستخرج من طافي الاستزراع عن طريق قابليتها للذوبان التفاضلي في المذيبات المستخدمة في TLC ، مما يتسبب في الهجرة التفاضلية على لوحة هلام السيليكا. وبالتالي ، فإن mRL لها هجرة أسرع من dRL ، ويمكن اكتشافها كبقع منفصلة عندما يتم تجفيف الألواح وتلطيخها ب α-naphthol.
تعتمد الطريقة الموضحة هنا للكشف عن mRL و dRL بواسطة TLC على مقالة منشورة مسبقا17 ، وهي سهلة الأداء ولا تتطلب معدات باهظة الثمن. كانت هذه الطريقة مفيدة للكشف عن RL في مختلف عزلات P. aeruginosa 13 باستخدام الضوابط المناسبة ، مثل طفرة مشتقة من P. aeruginosa غير قادرة على إنتاج RL. ومع ذلك ، فهي ليست الطريقة المفضلة لتوصيف المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي الجديدة التي تنتجها بكتيريا أخرى غير Pseudomonas aeruginosa بسبب افتقارها إلى الخصوصية.
بالإضافة إلى ذلك ، يتم تقديم طريقة لتحديد مكافئات rhamnose لإجمالي RL المستخرج من طاف P. aeruginosa . تحدد هذه الطريقة كمية هذه المواد الخافضة للتوتر السطحي الحيوي بناء على تفاعل الأورسينول مع السكريات المختزلة ، مما ينتج عنه منتج يمكن قياسه طيفيا عند 421 نانومتر ، كما هو موضح سابقا18. نظرا لأن التفاعل مع الأورسينول ليس خاصا بالرامنوز ، فمن المهم إجراء هذه الطريقة باستخدام RL المستخرج من طاف الثقافة الذي لا يحتوي على كميات كبيرة من الجزيئات الأخرى المحتوية على السكر ، مثل عديدات السكاريد الدهنية (LPS). يتم استخدام خليط الكلوروفورم / الميثانول المحمض هنا لاستخراج السائل من RL18 ، ولكن يمكن أيضا استخدام أسيتات الإيثيل ، واستخراج الطور الصلب (SPE) يعطي نتائج جيدة جدا19. لا تتطلب طريقة الأورسينول الموصوفة هنا معدات متطورة ويمكن أن توفر نتائج موثوقة إذا تم إجراؤها بعناية خاصة في إعداد العينات التي تم تحليلها ، كما تمت مناقشته. لضمان التحضير السليم للعينة ، من المهم تضمين طفرة Pseudomonas aeruginosa rhlA غير قادرة على إنتاج RL20 وإجراء ثلاث نسخ بيولوجية وثلاث نسخ تقنية لكل تحديد.
كان هناك جدل كبير في الأدبيات16،21فيما يتعلق بتحديد RL بواسطة طريقة orcinol ، مع بعض الدراسات التي تشير إلى أن إنتاج RL مبالغ فيه وأن الفحص يفتقر إلى خصوصية الرامنوز ، مما قد يكشف عن السكريات الأخرى. ومع ذلك ، فإننا نوضح هنا أن الطرق الموصوفة يمكن أن تكون دقيقة ومحددة في ظل الظروف المناسبة. علاوة على ذلك ، للمقارنة مع الإجراءات الموضحة في هذه المقالة ، نستخدم اكتشاف UPLC-MS / MS لمعيار dRL ونثبت أنه يتم الحصول على نتائج مماثلة باستخدام طريقة orcinol. ويرد البروتوكول المفصل لقياس RL كميا باستخدام هذه الطريقة في الملف التكميلي 1.
يتم تمثيل هذه البروتوكولات باستخدام سلالات النوع PAO1 (مجموعة الفيلوغروب 1) و PA14 (مجموعة الفيلوغروب 2) و PA7 (مجموعة الفيلو 3). تم اختيار هذه السلالات لأنها تتميز بشكل جيد وتنتج ملفات تعريف RL مختلفة.
الطريقة الأكثر دقة للكشف عن RL وقياسه هي HPLC إلى جانب قياس الطيف الكتلي (MS)7،8،27 ؛ ومع ذلك ، فإنه يتطلب معدات متخصصة ومكلفة قد لا تكون في متناول العديد من الباحثين. يمكن إجراء الطرق الموصوفة هنا بشكل روتيني باستخدام المواد والمعدات المختبرية …
The authors have nothing to disclose.
يتم دعم مختبر GSCh جزئيا من خلال منحة IN201222 من برنامج دعم ومشاريع البحث والابتكار التكنولوجي (PAPIIT) ، المديرية العامة ل Asuntos del Personal Académico – UNAM.
1-NAPHTHOL | SIGMA-ALDRICH | 70442 | |
ACETIC ACID | J.T. BAKER | 9508-02 | |
CENTRIFUGE | For centrifuging tubes 1.5 mL and 50 mL | ||
CHLOROFORM | J.T. BAKER | 9180-02 | |
DRYING OVEN | |||
ETHER | J.T. BAKER | 9244-02 | |
GLASS PIPETTE | SIGMA-ALDRICH | CLS706510 | |
HYDROCHLORIC ACID | J.T. BAKER | 5622-02 | |
LB | |||
L-RHAMNOSE MONOHYDRATE | SIGMA-ALDRICH | R-3875 | |
METHANOL | J.T. BAKER | 9049-02 | |
ORCINOL MONOHYDRATE | SIGMA-ALDRICH | O1875 | |
PPGAS Broth | Tris HCL (0.12M), Potassium Chloride ( 0.02M) Ammonium Chloride (0.02M), Peptone (1%), pH 7.4 Autoclaved. Add Glucose (5%) and Magnesium Sulfate (0.0016M) | ||
QUARTZ CELL (CUVETTE) | SIGMA-ALDRICH | Z276669 | |
RECTANGULAR TLC DEVELOPING TANK | FISHER SCIENTIFIC | K4161801020 | |
RHAMNOLIPIDS | SIGMA-ALDRICH | R-90 | |
SPECTROPHOTOMETER | VIS | ||
SPRAYER | SIGMA-ALDRICH | Z529710-1EA | |
SULFURIC ACID | J.T. BAKER | 9681-02 | |
TES TUBES 5mL | CORNING | 352002 | |
TLC SILICA GEL 60 F254 | MERCK | 1.05554.0001 | |
WATER BATH | > 80 °C |