В данной работе описывается, как поляризационно-чувствительная двухфотонная микроскопия может быть применена для характеристики локальной организации в безметочных амилоидных суперструктурах-сферулитах. В нем также описывается, как подготовить и измерить образец, собрать необходимую установку и проанализировать данные для получения информации о локальной организации амилоидных фибрилл.
По сравнению со своим однофотонным аналогом, двухфотонное возбуждение выгодно для экспериментов по биовизуализации из-за его меньшей фототоксичности, более глубокого проникновения в ткани, эффективной работы в плотно упакованных системах и уменьшенной угловой фотоселекции флуорофоров. Таким образом, внедрение поляризационного анализа в двухфотонную флуоресцентную микроскопию (2ПФМ) обеспечивает более точное определение молекулярной организации в образце по сравнению со стандартными методами визуализации, основанными на линейно-оптических процессах. В данной работе мы сосредоточимся на поляризационно-чувствительном 2PFM (ps-2PFM) и его применении при определении молекулярного упорядочения в сложных биоструктурах-амилоидных сферулитах. Нейродегенеративные заболевания, такие как болезнь Альцгеймера или Паркинсона, часто диагностируются путем обнаружения амилоидно-белковых агрегатов, образующихся из-за нарушенного процесса неправильного сворачивания белка. Изучение их структуры приводит к лучшему пониманию пути их создания и, следовательно, к разработке более чувствительных методов диагностики. В данной работе представлен ps-2PFM, адаптированный для определения локального порядка фибрилл внутри сферолитов инсулина крупного рогатого скота и сферических амилоидогенных белковых агрегатов. Более того, мы доказываем, что предложенная методика может разрешить трехмерную организацию фибрилл внутри сферулита.
За последние десятилетия, несмотря на значительное развитие многочисленных методов флуоресцентной микроскопии для биовизуализации белков и их агрегатов1, лишь немногие из них были использованы для разрешения их локального упорядочения в образце 2,3. Методом флуоресцентной пожизненной визуализационной микроскопии4 изучена внутренняя структурная гетерогенность амилоидных суперструктур-сферолитов. Кроме того, количественное определение локального упорядочения внутри сложных и плотно упакованных биоструктур, таких как сферолиты, может быть решено с помощью поляризационно-чувствительных методов3. Однако стандартные методы флуоресценции с проникновением в поверхностные ткани ограничены, поскольку использование длин волн УФ-ВИД для возбуждения флуорофоров in vivo приводит к высокомурассеянию света в тканях. Кроме того, такая визуализация часто требует разработки и привязки специфических флуоресцентных зондов к целевой биомолекуле, тем самым увеличивая стоимость и объем работы, необходимой для выполнения визуализации.
Недавно, для решения этих проблем, наша команда адаптировала поляризационно-чувствительную двухфотонную возбужденную флуоресцентную микроскопию (ps-2PFM) для безметочной визуализации биологических структур 6,7. Ps-2PFM позволяет измерять зависимость интенсивности двухфотонной флуоресценции от направления линейной поляризации пучка возбуждения и анализировать поляризацию излучаемой флуоресценции8. Реализация данной методики требует дополнения стандартного тракта возбуждения многофотонной установки микроскопа (рис. 1) полуволновой пластиной для управления плоскостью поляризации света. Затем из сигналов, собранных двумя лавинными фотодами, создаются полярные графики, изображающие зависимость интенсивности двухфотонной возбужденной флуоресценции от поляризации возбуждающего лазерного пучка, собирая таким образом две, взаимно перпендикулярные составляющие поляризации флуоресценции.
Последним этапом является процесс анализа данных с учетом влияния оптических элементов, таких как дихроичные зеркала или объектив с высокой числовой апертурой, на поляризацию. Из-за природы двухфотонного процесса этот метод обеспечивает как уменьшенный угловой фотоотбор, так и повышенное осевое разрешение, так как двухфотонное возбуждение флуорофоров вне фокальной плоскости вероятностно ограничено. Также было доказано, что аналогичные методы могут быть успешно реализованы для визуализации in vivo зондов ближнего инфракрасного диапазона (NIR) для визуализации глубоких тканей9. Ранее Ps-2PFM применялся для изображения флуорофоров в клеточных мембранах10 и ДНК11,12, а также в качестве нестандартных флуоресцентных маркеров биологических систем, таких как наночастицы золота13. Однако во всех этих примерах информация об организации биомолекул была получена опосредованно и требовала заранее определенной взаимной ориентации между флуорофором и биомолекулой.
В одной из наших недавних работ мы показали, что ps-2PFM может быть успешно применен для определения локальной поляризации автофлуоресценции амилоидных суперструктур и флуоресценции тиофлавина Т, амилоид-специфического красителя, связанного с амилоидными фибриллами в сферулитах6. Кроме того, в другом исследовании мы доказали, что ps-2PFM может быть использован для определения ориентации амилоидных фибрилл внутри амилоидных сферолитов в субмикронном режиме, что было подтверждено путем корреляции с изображениями просвечивающей электронной микроскопии (ПЭМ)7. Достижение этого результата стало возможным благодаря i) собственной автофлуоресценции сферолитов-амилоидов при возбуждении одним или двумя фотонами проявлять собственную автофлуоресценцию с максимумами излучения, расположенными в диапазоне от 450 до 500 нм, и сечениями поглощения двух фотонов, сопоставимыми со стандартными флуоресцентными красителями14, ii) математическими моделями, введенными ранее для описания того, как ps-2PEF красителей, мечущих биологические мембраны и структуры ДНК, могут быть применены для Флуоресценция проявляется сферолитами и связанными с ними красителями 8,11,15. Таким образом, прежде чем приступить к анализу, мы настоятельно рекомендуем ознакомиться с необходимой теорией, описанной как в основном тексте, так и в вспомогательной информации нашей первой статьи поэтой теме6. Здесь мы представляем протокол применения метода ps-2PFM для структурной характеристики амилоида бычьих инсулиновых сферолитов без меток.
Поляризационно-чувствительная двухфотонная микроскопия является ценным инструментом для изучения локального упорядочения фибрилл внутри амилоидных суперструктур, требуя лишь небольших модификаций стандартной многофотонной установки. Поскольку он работает с нелинейно-оптическим?…
The authors have nothing to disclose.
Работа выполнена при поддержке проекта Sonata Bis 9 (2019/34/E/ST5/00276), финансируемого Национальным научным центром Польши.
Sample preparation | |||
Coverslips, 24 x 24 mm | Chemland | 04-298.202.04 | |
DPX mountant for histology | Sigma-Aldrich | 6522 | Slide mountant |
Eppendorf Safe-Lock tubes, 1.5 mL, polypropylene | Chemland | 02-63102 | |
Eppendorf ThermoMixer C | Eppendorf | Used for spherulite incubation | |
HLP 5UV Water purification system | Hydrolab | Source of dionized water used in sample preparation | |
Hydrochloric acid (≥37%, APHA ≤10), | Sigma-Aldrich | 30721-M | |
Insulin powder from the bovine pancreas (≥25 units/mg (HPLC)) | Sigma-Aldrich | I5500 | |
Methanol (HPLC grade) | Sigma-Aldrich | 270474 | |
Microscope slides with a concave, 76 x 26 x 1 mm | Chemland | 04-296.202.09 | |
Olympus BX60 | Olympus | Polarized Optical Microscope used in Figure 2 | |
PTFE thread seal tape, 12 mm x 12 mm x 0.1 mm, 60 gm2 | Chemland | VIT131097 | |
Microscope ps-2PFM setup | |||
Chameleon Ultra II | Coherent | ||
FELH0800 – Ø25.0 mm Longpass Filter | Thorlabs | ||
FESH0700 – Ø25.0 mm Shortpass Filter | Thorlabs | ||
IDQ100 photon-counting avalanche photodiodes | ID Quantique | ||
Multiphoton short-pass emission filter 720 nm | Semrock | ||
Mounted Achromatic Half-Wave Plate, 690-1200 nm | Thorlabs | ||
Nikon Plan Apo Oil Immersion 100x/1.4 NA | Nikon | ||
piezo 3D stage | Piezosystem Jena | ||
Polarizing Beamsplitter | Thorlabs | ||
S130C – Slim Photodiode Power Sensor, Si, 400 – 1100 nm, 500 mW | Thorlabs | ||
Software | |||
LabView 2018 | National Instruments | Version 18.0.1f2 | |
Matplotlib library | Version 3.3.2 | ||
NumPy library | Version 1.19.2 | ||
SciPy library | Version 1.5.2 | ||
Spyder Python 3 IDE | Version 4.1.5 |