El modelo de ratón Indicador de Acción de la Hormona Tiroidea se desarrolló para permitir la cuantificación específica del tejido de la acción local de la hormona tiroidea utilizando su maquinaria reguladora endógena. Recientemente, se ha demostrado que el modelo es adecuado para caracterizar sustancias químicas disruptoras endocrinas que interactúan con la economía de la hormona tiroidea, tanto mediante metodologías ex vivo como in vivo .
Las hormonas tiroideas (TH) desempeñan un papel fundamental en el metabolismo celular y la función de los tejidos. La economía de TH es susceptible a las sustancias químicas disruptoras endocrinas (EDC, por sus siglas en inglés) que pueden alterar la producción o la acción de las hormonas. Muchos contaminantes ambientales son alteradores endocrinos, lo que representa una amenaza emergente tanto para la salud humana como para la producción agrícola. Esto ha dado lugar a un aumento de la demanda de sistemas de prueba adecuados para examinar los efectos de los posibles EDC. Sin embargo, las metodologías actuales se enfrentan a desafíos. La mayoría de los sistemas de prueba utilizan marcadores endógenos regulados por múltiples procesos reguladores, a menudo complejos, lo que dificulta la distinción de los efectos directos e indirectos. Además, los sistemas de ensayo in vitro carecen de la complejidad fisiológica del metabolismo y la farmacocinética de los EDC en los mamíferos. Además, la exposición a los EDC ambientales suele implicar una mezcla de múltiples compuestos, incluidos los metabolitos generados in vivo , por lo que no se puede ignorar la posibilidad de interacciones. Esta complejidad dificulta la caracterización de los EDC. El ratón Indicador de Acción de la Hormona Tiroidea (THAI) es un modelo transgénico que lleva un sistema reportero de luciferasa sensible a TH, lo que permite evaluar la acción de TH específica de tejido. Se pueden evaluar los efectos específicos de los tejidos de las sustancias químicas sobre la acción local de la TH cuantificando la expresión del indicador de luciferasa en muestras de tejido. Además, con imágenes in vivo , el modelo de ratón THAI permite realizar estudios longitudinales sobre los efectos de posibles EDC en animales vivos. Este enfoque proporciona una poderosa herramienta para probar la exposición a largo plazo, las estructuras de tratamiento complejas o la abstinencia, ya que permite evaluar los cambios en la acción local de la TH a lo largo del tiempo en el mismo animal. Este informe describe el proceso de mediciones de imágenes in vivo en ratones THAI. El protocolo discutido aquí se centra en el desarrollo y la obtención de imágenes de ratones hiper e hipotiroideos, que pueden servir como controles. Los investigadores pueden adaptar o ampliar los tratamientos presentados para satisfacer sus necesidades específicas, ofreciendo un enfoque fundamental para futuras investigaciones.
La señalización de la hormona tiroidea (TH) es un regulador fundamental del metabolismo celular, esencial para el desarrollo normal y el funcionamiento óptimo de los tejidos en la edad adulta1. Dentro de los tejidos, la acción de la TH está finamente controlada por una compleja maquinaria molecular, lo que permite el mantenimiento específico de los niveles locales de TH en cada tejido. Esta autonomía de los diferentes tejidos respecto a los niveles circulantes de TH es de gran importancia 2,3,4.
Numerosas sustancias químicas tienen el potencial de alterar las funciones endocrinas y se encuentran en el medio ambiente como contaminantes. Existe una preocupación creciente de que estas moléculas puedan ingresar a la cadena alimentaria a través de las aguas residuales y la producción agrícola, lo que afecta la salud del ganado y de los seres humanos 5,6,7.
Uno de los desafíos importantes para abordar este problema es la gran cantidad de compuestos involucrados, incluidas las moléculas autorizadas y ya prohibidas, pero aún presentes de manera persistente. En los últimos años, se han realizado esfuerzos sustanciales para desarrollar sistemas de prueba para el cribado y la identificación del potencial disruptivo de diversas sustancias químicas 8,9,10,11. Si bien estos métodos sobresalen en el cribado de alto rendimiento de miles de compuestos y en la identificación de amenazas potenciales, un análisis detallado de los efectos in vivo específicos de estas moléculas es esencial para establecer los peligros de la exposición humana. Por lo tanto, es necesario un enfoque multifacético al estudiar y caracterizar las sustancias químicas que alteran el sistema endocrino (EDC).
En el contexto de la regulación de la TH, la comprensión de las consecuencias específicas de los tejidos de la exposición a los EDC requiere cuantificar la acción local de la TH. Aunque se han desarrollado varios modelos in vivo para este propósito, la mayoría se basan en marcadores endógenos como medida de salida. A pesar de ser fisiológicos, estos marcadores están sujetos a numerosos mecanismos reguladores, tanto directos como indirectos, lo que dificulta su interpretación. Por lo tanto, la caracterización de los efectos de la EDC sobre la regulación de la TH a nivel tisular sigue siendo un reto importante12,13.
Para abordar los desafíos de medir la señalización de TH específica del tejido, recientemente se desarrolló el modelo de ratón Indicador de Acción de la Hormona Tiroidea (THAI). Este modelo permite cuantificar específicamente los cambios en la acción local de la TH en condiciones endógenas. Se introdujo un transgén de luciferasa en el genoma del ratón, que es altamente sensible a la regulación por la acción14 de TH. Este modelo ha demostrado eficacia en la respuesta a diversas preguntas de investigación que requieren cuantificar los cambios en la señalización local de THtisular 14,15,16,17,18.
El reconocimiento de un uso potencial del modelo THAI es la caracterización de los efectos específicos de los tejidos EDC sobre la señalización de TH. El modelo se ha empleado recientemente con éxito para investigar los efectos tisulares específicos del tetrabromobisfenol A y el diclazurilo en la señalización de TH15. Aquí, se presentan los protocolos de referencia para utilizar técnicas de imagen in vivo en el modelo THAI como sistema de prueba para caracterizar los EDC que interrumpen la función de TH. Este método aprovecha la naturaleza bioluminiscente de la reacción luciferina-luciferasa. Esencialmente, la enzima luciferasa expresada transgénicamente cataliza la oxidación de la luciferina administrada, generando luz luminiscente proporcional a la cantidad de luciferasa en el tejido (Figura 1). En consecuencia, la respuesta biológica medida es la actividad luciferasa, que ha sido validada como una medida adecuada de la acción local de TH14. Si bien el modelo THAI es aplicable para cuantificar la acción de la TH en prácticamente todos los tejidos, las imágenes in vivo se centran principalmente en la acción de la TH en el intestino delgado (imágenes ventrales) y el tejido adiposo marrón interescapular (BAT, imágenes dorsales)14.
Una ventaja significativa de la técnica de obtención de imágenes in vivo es que elimina la necesidad de sacrificar animales para realizar mediciones. Esto permite a los investigadores diseñar experimentos longitudinales y de seguimiento como estudios autocontrolados, reduciendo el sesgo entre sujetos y el número de animales utilizados. Este aspecto es particularmente crucial en la caracterización de EDC, y la fuerza y versatilidad del método para este propósito han sido previamente demostradas14,15.
Las amenazas que plantean los alteradores endocrinos (EDC) para la salud humana son bien reconocidas; sin embargo, la investigación sobre los alteradores endocrinos se enfrenta a enormes desafíos. Estos desafíos son en parte consecuencia de la complejidad del sistema endocrino. Se ha identificado que muchos EDC alteran simultáneamente múltiples sistemas endocrinos22. Además, en el contexto de la economía de la hormona tiroidea (TH), existe una capa adicional de complejidad debido a las dife…
The authors have nothing to disclose.
Este trabajo fue apoyado por el Proyecto No. El RRF-2.3.1-21-2022-00011, titulado Laboratorio Nacional de Neurociencia Traslacional, se ha implementado con el apoyo del Fondo de Recuperación y Resiliencia de la Unión Europea en el marco del Programa Széchenyi Plan Plus.
3,5,3'-triiodothyronine (T3) | Merck | T2877 | |
Animals, mice | THAI mouse | ||
Eye protection gel | Oculotect | 1000 IU/g | |
Falcon tube | Thermo Fisher Scientific | 50 mL volume | |
Iodine-free chow diet | Research Diets | custom | |
IVIS Lumina II in vivo imaging system | Perkin Elmer | – | |
Ketamine | Vetcentre | E1857 | |
Living Image software 4.5 | Perkin Elmer | – | provided with the instrument |
Measuring cylinder | 250 mL | ||
methimazole | Merck | M8506 | |
Microfuge tubes | Eppendorf | For diluting treatment materials | |
NaClO4 | Merck | 71852 | |
Na-luciferin, substrate | Goldbio | 103404-75-7 | |
NaOH | Merck | 101052833 | |
Phoshphate buffer saline | Chem Cruz | sc-362302 | |
Pipette | Gilson | For diluting treatment materials | |
Pipette tips | Axygen | For diluting treatment materials | |
Shaving cream/epilator/shaver | Personal preference | ||
Syringe | B Braun | 1 mL volume | |
Syringe needle | B Braun | 0.3 x 12 mm | |
Xylazine | Vetcentre | E1852 |