Het muismodel Thyroid Hormone Action Indicator is ontwikkeld om weefselspecifieke kwantificering van de lokale werking van schildklierhormoon mogelijk te maken met behulp van de endogene regulerende machinerie. Onlangs is aangetoond dat het model geschikt is voor het karakteriseren van hormoonverstorende chemicaliën die interageren met de schildklierhormooneconomie, zowel door ex vivo als in vivo methodologieën.
Schildklierhormonen (TH) spelen een cruciale rol in het celmetabolisme en de weefselfunctie. De TH-economie is gevoelig voor hormoonontregelende chemicaliën (EDC’s) die de hormoonproductie of -werking kunnen verstoren. Veel milieuverontreinigende stoffen zijn EDC’s en vormen een opkomende bedreiging voor zowel de menselijke gezondheid als de landbouwproductie. Dit heeft geleid tot een grotere vraag naar goede testsystemen om de effecten van potentiële EDC’s te onderzoeken. De huidige methodologieën staan echter voor uitdagingen. De meeste testsystemen maken gebruik van endogene markers die worden gereguleerd door meerdere, vaak complexe regelgevingsprocessen, waardoor het moeilijk is om directe en indirecte effecten te onderscheiden. Bovendien missen in-vitrotestsystemen de fysiologische complexiteit van het EDC-metabolisme en de farmacokinetiek bij zoogdieren. Bovendien omvat blootstelling aan EDC’s in het milieu meestal een mengsel van meerdere verbindingen, waaronder in vivo gegenereerde metabolieten, dus de mogelijkheid van interacties kan niet worden genegeerd. Deze complexiteit maakt EDC-karakterisering moeilijk. De Thyroid Hormone Action Indicator (THAI)-muis is een transgeen model met een TH-responsief luciferase-rapportagesysteem, waardoor weefselspecifieke TH-actie kan worden beoordeeld. Men kan de weefselspecifieke effecten van chemicaliën op lokale TH-actie evalueren door de expressie van luciferase-reporter in weefselmonsters te kwantificeren. Bovendien maakt het TAI-muismodel met in vivo beeldvorming longitudinale studies mogelijk naar de effecten van potentiële EDC’s bij levende dieren. Deze aanpak biedt een krachtig hulpmiddel voor het testen van langdurige blootstelling, complexe behandelingsstructuren of ontwenning, omdat het de beoordeling mogelijk maakt van veranderingen in lokale TH-actie in de loop van de tijd bij hetzelfde dier. Dit rapport beschrijft het proces van in vivo beeldvormingsmetingen op THAI muizen. Het hier besproken protocol richt zich op het ontwikkelen en in beeld brengen van hyper- en hypothyreoïdiemuizen, die als controles kunnen dienen. Onderzoekers kunnen de gepresenteerde behandelingen aanpassen of uitbreiden om aan hun specifieke behoeften te voldoen, wat een fundamentele benadering biedt voor verder onderzoek.
Schildklierhormoon (TH)-signalering is een fundamentele regulator van het cellulaire metabolisme, essentieel voor een normale ontwikkeling en een optimale weefselfunctie opvolwassen leeftijd. In weefsels wordt de TH-werking nauwkeurig gecontroleerd door een complexe moleculaire machinerie, waardoor weefselspecifiek behoud van lokale TH-niveaus mogelijk is. Deze autonomie van verschillende weefsels ten opzichte van circulerende TH-niveaus is van groot belang 2,3,4.
Talrijke chemische stoffen kunnen de endocriene functies verstoren en worden als verontreinigende stoffen in het milieu aangetroffen. Het is een groeiende zorg dat deze moleculen via afvalwater en landbouwproductie in de voedselketen terecht kunnen komen, waardoor de gezondheid van vee en mensen wordt beïnvloed 5,6,7.
Een van de belangrijkste uitdagingen bij het aanpakken van dit probleem is het enorme aantal betrokken verbindingen, waaronder zowel geautoriseerde als reeds verboden, maar nog steeds aanwezig zijnde moleculen. In de afgelopen jaren zijn aanzienlijke inspanningen geleverd om testsystemen te ontwikkelen voor het screenen en identificeren van het verstorend potentieel van verschillende chemische stoffen 8,9,10,11. Hoewel deze methoden uitblinken in high-throughput screening van duizenden verbindingen en het identificeren van potentiële bedreigingen, is een gedetailleerde analyse van specifieke in vivo effecten van deze moleculen essentieel om de gevaren van menselijke blootstelling vast te stellen. Een veelzijdige aanpak is dus noodzakelijk bij het bestuderen en karakteriseren van hormoonontregelende chemicaliën (EDC’s).
In de context van TH-regulering vereist het begrijpen van de weefselspecifieke gevolgen van blootstelling aan EDC het kwantificeren van lokale TH-actie. Hoewel er verschillende in vivo modellen voor dit doel zijn ontwikkeld, vertrouwen de meeste op endogene markers als outputmaatstaf. Ondanks dat ze fysiologisch zijn, zijn deze markers onderhevig aan tal van regulerende mechanismen, zowel direct als indirect, waardoor hun interpretatie uitdagender wordt. Daarom blijft het karakteriseren van EDC-effecten op TH-regulatie op weefselniveau een belangrijke uitdaging12,13.
Om de uitdagingen van het meten van weefselspecifieke TH-signalering aan te pakken, is onlangs het Thyroid Hormone Action Indicator (THAI) muismodel ontwikkeld. Dit model maakt het mogelijk om veranderingen in lokale TH-actie onder endogene omstandigheden specifiek te kwantificeren. Een luciferase-transgen werd geïntroduceerd in het muizengenoom, dat zeer gevoelig is voor regulatie door TH-actie14. Dit model is effectief gebleken bij het beantwoorden van verschillende onderzoeksvragen die het kwantificeren van veranderingen in lokale weefsel-TH-signalering 14,15,16,17,18 vereisen.
Herkenning van een mogelijk gebruik van het THAI model is het karakteriseren van weefselspecifieke effecten van EDC’s op TH-signalering. Het model is onlangs met succes gebruikt om de weefselspecifieke effecten van tetrabroombisfenol A en diclazuril op TH-signalering te onderzoeken15. Hier worden basisprotocollen gepresenteerd voor het gebruik van in vivo beeldvormingstechnieken op het THAI-model als een testsysteem voor het karakteriseren van EDC’s die de TH-functie verstoren. Deze methode maakt gebruik van de bioluminescente aard van de luciferine-luciferase-reactie. In wezen katalyseert het transgeen tot expressie gebrachte luciferase-enzym de oxidatie van toegediende luciferine, waarbij lichtgevend licht wordt gegenereerd dat evenredig is met de hoeveelheid luciferase in het weefsel (Figuur 1). Bijgevolg is de gemeten biologische respons luciferase-activiteit, die is gevalideerd als een geschikte maat voor lokale TH-actie14. Hoewel het THAI-model toepasbaar is voor het kwantificeren van TH-actie in vrijwel alle weefsels, richt in vivo beeldvorming zich voornamelijk op TH-actie in de dunne darm (ventrale beeldvorming) en het interscapulaire bruine vetweefsel (BAT, dorsale beeldvorming)14.
Een belangrijk voordeel van de in vivo beeldvormingstechniek is dat het niet meer nodig is om dieren op te offeren voor metingen. Dit stelt onderzoekers in staat om longitudinale en follow-upexperimenten op te zetten als zelfgecontroleerde studies, waardoor de vooringenomenheid tussen proefpersonen en het aantal gebruikte dieren worden verminderd. Dit aspect is met name cruciaal bij EDC-karakterisering, en de kracht en veelzijdigheid van de methode voor dit doel zijn eerder aangetoond 14,15.
De bedreigingen van hormoonontregelende chemische stoffen (EDC’s) voor de menselijke gezondheid worden algemeen erkend; onderzoek naar EDC’s staat echter voor formidabele uitdagingen. Deze uitdagingen zijn deels een gevolg van de complexiteit van het endocriene systeem. Van veel EDC’s is vastgesteld dat ze tegelijkertijd meerdere endocriene systemen verstoren22. Bovendien bestaat er in de context van de economie van schildklierhormoon (TH) een extra laag van complexiteit als gevolg van weefselspec…
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd ondersteund door projectnr. RRF-2.3.1-21-2022-00011, getiteld National Laboratory of Translational Neuroscience, is uitgevoerd met de steun van de herstel- en veerkrachtfaciliteit van de Europese Unie in het kader van het programma Széchenyi Plan Plus.
3,5,3'-triiodothyronine (T3) | Merck | T2877 | |
Animals, mice | THAI mouse | ||
Eye protection gel | Oculotect | 1000 IU/g | |
Falcon tube | Thermo Fisher Scientific | 50 mL volume | |
Iodine-free chow diet | Research Diets | custom | |
IVIS Lumina II in vivo imaging system | Perkin Elmer | – | |
Ketamine | Vetcentre | E1857 | |
Living Image software 4.5 | Perkin Elmer | – | provided with the instrument |
Measuring cylinder | 250 mL | ||
methimazole | Merck | M8506 | |
Microfuge tubes | Eppendorf | For diluting treatment materials | |
NaClO4 | Merck | 71852 | |
Na-luciferin, substrate | Goldbio | 103404-75-7 | |
NaOH | Merck | 101052833 | |
Phoshphate buffer saline | Chem Cruz | sc-362302 | |
Pipette | Gilson | For diluting treatment materials | |
Pipette tips | Axygen | For diluting treatment materials | |
Shaving cream/epilator/shaver | Personal preference | ||
Syringe | B Braun | 1 mL volume | |
Syringe needle | B Braun | 0.3 x 12 mm | |
Xylazine | Vetcentre | E1852 |