Summary

In vivo karakterisering van hormoonverstorende chemische effecten via schildklierhormoon actie-indicator muis

Published: October 06, 2023
doi:

Summary

Het muismodel Thyroid Hormone Action Indicator is ontwikkeld om weefselspecifieke kwantificering van de lokale werking van schildklierhormoon mogelijk te maken met behulp van de endogene regulerende machinerie. Onlangs is aangetoond dat het model geschikt is voor het karakteriseren van hormoonverstorende chemicaliën die interageren met de schildklierhormooneconomie, zowel door ex vivo als in vivo methodologieën.

Abstract

Schildklierhormonen (TH) spelen een cruciale rol in het celmetabolisme en de weefselfunctie. De TH-economie is gevoelig voor hormoonontregelende chemicaliën (EDC’s) die de hormoonproductie of -werking kunnen verstoren. Veel milieuverontreinigende stoffen zijn EDC’s en vormen een opkomende bedreiging voor zowel de menselijke gezondheid als de landbouwproductie. Dit heeft geleid tot een grotere vraag naar goede testsystemen om de effecten van potentiële EDC’s te onderzoeken. De huidige methodologieën staan echter voor uitdagingen. De meeste testsystemen maken gebruik van endogene markers die worden gereguleerd door meerdere, vaak complexe regelgevingsprocessen, waardoor het moeilijk is om directe en indirecte effecten te onderscheiden. Bovendien missen in-vitrotestsystemen de fysiologische complexiteit van het EDC-metabolisme en de farmacokinetiek bij zoogdieren. Bovendien omvat blootstelling aan EDC’s in het milieu meestal een mengsel van meerdere verbindingen, waaronder in vivo gegenereerde metabolieten, dus de mogelijkheid van interacties kan niet worden genegeerd. Deze complexiteit maakt EDC-karakterisering moeilijk. De Thyroid Hormone Action Indicator (THAI)-muis is een transgeen model met een TH-responsief luciferase-rapportagesysteem, waardoor weefselspecifieke TH-actie kan worden beoordeeld. Men kan de weefselspecifieke effecten van chemicaliën op lokale TH-actie evalueren door de expressie van luciferase-reporter in weefselmonsters te kwantificeren. Bovendien maakt het TAI-muismodel met in vivo beeldvorming longitudinale studies mogelijk naar de effecten van potentiële EDC’s bij levende dieren. Deze aanpak biedt een krachtig hulpmiddel voor het testen van langdurige blootstelling, complexe behandelingsstructuren of ontwenning, omdat het de beoordeling mogelijk maakt van veranderingen in lokale TH-actie in de loop van de tijd bij hetzelfde dier. Dit rapport beschrijft het proces van in vivo beeldvormingsmetingen op THAI muizen. Het hier besproken protocol richt zich op het ontwikkelen en in beeld brengen van hyper- en hypothyreoïdiemuizen, die als controles kunnen dienen. Onderzoekers kunnen de gepresenteerde behandelingen aanpassen of uitbreiden om aan hun specifieke behoeften te voldoen, wat een fundamentele benadering biedt voor verder onderzoek.

Introduction

Schildklierhormoon (TH)-signalering is een fundamentele regulator van het cellulaire metabolisme, essentieel voor een normale ontwikkeling en een optimale weefselfunctie opvolwassen leeftijd. In weefsels wordt de TH-werking nauwkeurig gecontroleerd door een complexe moleculaire machinerie, waardoor weefselspecifiek behoud van lokale TH-niveaus mogelijk is. Deze autonomie van verschillende weefsels ten opzichte van circulerende TH-niveaus is van groot belang 2,3,4.

Talrijke chemische stoffen kunnen de endocriene functies verstoren en worden als verontreinigende stoffen in het milieu aangetroffen. Het is een groeiende zorg dat deze moleculen via afvalwater en landbouwproductie in de voedselketen terecht kunnen komen, waardoor de gezondheid van vee en mensen wordt beïnvloed 5,6,7.

Een van de belangrijkste uitdagingen bij het aanpakken van dit probleem is het enorme aantal betrokken verbindingen, waaronder zowel geautoriseerde als reeds verboden, maar nog steeds aanwezig zijnde moleculen. In de afgelopen jaren zijn aanzienlijke inspanningen geleverd om testsystemen te ontwikkelen voor het screenen en identificeren van het verstorend potentieel van verschillende chemische stoffen 8,9,10,11. Hoewel deze methoden uitblinken in high-throughput screening van duizenden verbindingen en het identificeren van potentiële bedreigingen, is een gedetailleerde analyse van specifieke in vivo effecten van deze moleculen essentieel om de gevaren van menselijke blootstelling vast te stellen. Een veelzijdige aanpak is dus noodzakelijk bij het bestuderen en karakteriseren van hormoonontregelende chemicaliën (EDC’s).

In de context van TH-regulering vereist het begrijpen van de weefselspecifieke gevolgen van blootstelling aan EDC het kwantificeren van lokale TH-actie. Hoewel er verschillende in vivo modellen voor dit doel zijn ontwikkeld, vertrouwen de meeste op endogene markers als outputmaatstaf. Ondanks dat ze fysiologisch zijn, zijn deze markers onderhevig aan tal van regulerende mechanismen, zowel direct als indirect, waardoor hun interpretatie uitdagender wordt. Daarom blijft het karakteriseren van EDC-effecten op TH-regulatie op weefselniveau een belangrijke uitdaging12,13.

Om de uitdagingen van het meten van weefselspecifieke TH-signalering aan te pakken, is onlangs het Thyroid Hormone Action Indicator (THAI) muismodel ontwikkeld. Dit model maakt het mogelijk om veranderingen in lokale TH-actie onder endogene omstandigheden specifiek te kwantificeren. Een luciferase-transgen werd geïntroduceerd in het muizengenoom, dat zeer gevoelig is voor regulatie door TH-actie14. Dit model is effectief gebleken bij het beantwoorden van verschillende onderzoeksvragen die het kwantificeren van veranderingen in lokale weefsel-TH-signalering 14,15,16,17,18 vereisen.

Herkenning van een mogelijk gebruik van het THAI model is het karakteriseren van weefselspecifieke effecten van EDC’s op TH-signalering. Het model is onlangs met succes gebruikt om de weefselspecifieke effecten van tetrabroombisfenol A en diclazuril op TH-signalering te onderzoeken15. Hier worden basisprotocollen gepresenteerd voor het gebruik van in vivo beeldvormingstechnieken op het THAI-model als een testsysteem voor het karakteriseren van EDC’s die de TH-functie verstoren. Deze methode maakt gebruik van de bioluminescente aard van de luciferine-luciferase-reactie. In wezen katalyseert het transgeen tot expressie gebrachte luciferase-enzym de oxidatie van toegediende luciferine, waarbij lichtgevend licht wordt gegenereerd dat evenredig is met de hoeveelheid luciferase in het weefsel (Figuur 1). Bijgevolg is de gemeten biologische respons luciferase-activiteit, die is gevalideerd als een geschikte maat voor lokale TH-actie14. Hoewel het THAI-model toepasbaar is voor het kwantificeren van TH-actie in vrijwel alle weefsels, richt in vivo beeldvorming zich voornamelijk op TH-actie in de dunne darm (ventrale beeldvorming) en het interscapulaire bruine vetweefsel (BAT, dorsale beeldvorming)14.

Een belangrijk voordeel van de in vivo beeldvormingstechniek is dat het niet meer nodig is om dieren op te offeren voor metingen. Dit stelt onderzoekers in staat om longitudinale en follow-upexperimenten op te zetten als zelfgecontroleerde studies, waardoor de vooringenomenheid tussen proefpersonen en het aantal gebruikte dieren worden verminderd. Dit aspect is met name cruciaal bij EDC-karakterisering, en de kracht en veelzijdigheid van de methode voor dit doel zijn eerder aangetoond 14,15.

Protocol

Dit protocol is herzien en goedgekeurd door het Comité voor dierenwelzijn van het Instituut voor Experimentele Geneeskunde (PE/EA/1490-7/2017, PE/EA/106-2/2021). De gepresenteerde gegevens zijn afkomstig van FVB/Ant achtergrond14, 3 maanden oude mannelijke TAI-muizen (n = 3-6/groep). FVB/Mierenachtergrond THAISE-dieren hebben de neiging om sterk gepigmenteerde vlekken op hun huid te hebben die de metingen kunnen verstoren. Zoek daarom naar gepigmenteerde vlekken op de huid van het afgebeelde gebi…

Representative Results

Over het algemeen varieert de gemeten stralingssterkte van magnitude 105 tot 1010 p/s/cm2/sr. Exacte waarden kunnen echter variëren tussen dieren binnen dezelfde afbeelding en tussen verschillende afbeeldingen. Daarom kan het vergelijken van ruwe gegevens misleidend zijn. Het is van cruciaal belang om in alle experimenten controle- en achtergrondsignalen vast te stellen, waardoor zelfgestuurde ontwerpen ten zeerste worden aanbevolen. <p class="jove_co…

Discussion

De bedreigingen van hormoonontregelende chemische stoffen (EDC’s) voor de menselijke gezondheid worden algemeen erkend; onderzoek naar EDC’s staat echter voor formidabele uitdagingen. Deze uitdagingen zijn deels een gevolg van de complexiteit van het endocriene systeem. Van veel EDC’s is vastgesteld dat ze tegelijkertijd meerdere endocriene systemen verstoren22. Bovendien bestaat er in de context van de economie van schildklierhormoon (TH) een extra laag van complexiteit als gevolg van weefselspec…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door projectnr. RRF-2.3.1-21-2022-00011, getiteld National Laboratory of Translational Neuroscience, is uitgevoerd met de steun van de herstel- en veerkrachtfaciliteit van de Europese Unie in het kader van het programma Széchenyi Plan Plus.

Materials

3,5,3'-triiodothyronine (T3) Merck T2877
Animals, mice THAI mouse
Eye protection gel Oculotect 1000 IU/g
Falcon tube Thermo Fisher Scientific 50 mL volume
Iodine-free chow diet Research Diets custom
IVIS Lumina II in vivo imaging system Perkin Elmer
Ketamine Vetcentre E1857
Living Image software 4.5 Perkin Elmer provided with the instrument
Measuring cylinder 250 mL
methimazole Merck M8506
Microfuge tubes Eppendorf For diluting treatment materials
NaClO4 Merck 71852
Na-luciferin, substrate Goldbio 103404-75-7
NaOH Merck 101052833
Phoshphate buffer saline Chem Cruz sc-362302
Pipette Gilson For diluting treatment materials
Pipette tips Axygen For diluting treatment materials
Shaving cream/epilator/shaver Personal preference
Syringe B Braun 1 mL volume
Syringe needle B Braun 0.3 x 12 mm
Xylazine Vetcentre E1852

References

  1. Larsen, P. R., Davies, T. F., Hay, I. D., Wilson, J. D., Foster, D. W., Kronenberg, H. M., Larsen, P. R. . Williams Textbook of Endocrinology. , 389-515 (1998).
  2. Gereben, B., et al. Cellular and molecular basis of deiodinase-regulated thyroid hormone signaling. Endocr Rev. 29 (7), 898-938 (2008).
  3. Fekete, C., Lechan, R. M. Central regulation of hypothalamic-pituitary-thyroid axis under physiological and pathophysiological conditions. Endocr Rev. 35 (2), 159-194 (2014).
  4. Bianco, A. C., et al. Paradigms of Dynamic Control of Thyroid Hormone Signaling. Endocr Rev. 40 (4), 1000-1047 (2019).
  5. Zoeller, R. T. Endocrine disrupting chemicals and thyroid hormone action. Adv Pharmacol. 92, 401-417 (2021).
  6. Guarnotta, V., Amodei, R., Frasca, F., Aversa, A., Giordano, C. Impact of chemical endocrine disruptors and hormone modulators on the endocrine system. Int J Mol Sci. 23 (10), 5710 (2022).
  7. La Merrill, M. A., et al. Consensus on the key characteristics of endocrine-disrupting chemicals as a basis for hazard identification. Nat Rev Endocrinol. 16 (1), 45-57 (2020).
  8. Fini, J. B., et al. An in vivo multiwell-based fluorescent screen for monitoring vertebrate thyroid hormone disruption. Environ Sci Technol. 41 (16), 5908-5914 (2007).
  9. Mughal, B. B., Fini, J. B., Demeneix, B. A. Thyroid-disrupting chemicals and brain development: an update. Endocr Connect. 7 (4), 160-186 (2018).
  10. Dong, M., Li, Y., Zhu, M., Li, J., Qin, Z. Tetrabromobisphenol a disturbs brain development in both thyroid hormone-dependent and -independent manners in xenopus laevis. Molecules. 27 (1), 249 (2021).
  11. Beck, K. R., Sommer, T. J., Schuster, D., Odermatt, A. Evaluation of tetrabromobisphenol A effects on human glucocorticoid and androgen receptors: A comparison of results from human- with yeast-based in vitro assays. Toxicology. 370, 70-77 (2016).
  12. Li, J., Li, Y., Zhu, M., Song, S., Qin, Z. A multiwell-based assay for screening thyroid hormone signaling disruptors using thibz expression as a sensitive endpoint in xenopus laevis. Molecules. 27 (3), 798 (2022).
  13. Myosho, T., et al. Preself-feeding medaka fry provides a suitable screening system for in vivo assessment of thyroid hormone-disrupting potential. Environ Sci Technol. 56 (10), 6479-6490 (2022).
  14. Mohacsik, P., et al. A Transgenic mouse model for detection of tissue-specific thyroid hormone action. Endocrinology. 159 (2), 1159-1171 (2018).
  15. Sinko, R., et al. Tetrabromobisphenol A and diclazuril evoke tissue-specific changes of thyroid hormone signaling in male thyroid hormone action indicator Mice. Int J Mol Sci. 23 (23), 14782 (2022).
  16. Sinko, R., et al. Different hypothalamic mechanisms control decreased circulating thyroid hormone levels in infection and fasting-induced non-thyroidal illness syndrome in male thyroid hormone action indicator mice. Thyroid. 33 (1), 109-118 (2023).
  17. Salas-Lucia, F., et al. Axonal T3 uptake and transport can trigger thyroid hormone signaling in the brain. Elife. 12, 82683 (2023).
  18. Liu, S., et al. Triiodothyronine (T3) promotes brown fat hyperplasia via thyroid hormone receptor alpha mediated adipocyte progenitor cell proliferation. Nat Commun. 13 (1), 3394 (2022).
  19. Bianco, A. C., et al. American thyroid association guide to investigating thyroid hormone economy and action in rodent and cell models. Thyroid. 24 (1), 88-168 (2014).
  20. Silva, J. E., Larsen, P. R. Adrenergic activation of triiodothyronine production in brown adipose tissue. Nature. 305 (5936), 712-713 (1983).
  21. Bianco, A. C., Silva, J. E. Intracellular conversion of thyroxine to triiodothyronine is required for the optimal thermogenic function of brown adipose tissue. J Clin Invest. 79 (1), 295-300 (1987).
  22. Caporale, N., et al. From cohorts to molecules: Adverse impacts of endocrine disrupting mixtures. Science. 375 (6582), 8244 (2022).

Play Video

Cite This Article
Sinkó, R., Mohácsik, P., Fekete, C., Gereben, B. In vivo Characterization of Endocrine Disrupting Chemical Effects via Thyroid Hormone Action Indicator Mouse. J. Vis. Exp. (200), e65657, doi:10.3791/65657 (2023).

View Video