Summary

Geautomatiseerde impactor voor kneuzingsmodel voor dwarslaesie bij muizen

Published: January 19, 2024
doi:

Summary

Hier wordt een nieuw geautomatiseerd apparaat voor kneuzing van ruggenmergletsel voor muizen gepresenteerd, dat nauwkeurig modellen voor dwarslaesie met verschillende gradaties kan produceren.

Abstract

Dwarslaesie (SCI) als gevolg van traumatische verwondingen zoals auto-ongelukken en vallen wordt in verband gebracht met permanente disfunctie van het ruggenmerg. Het maken van kneuzingsmodellen van ruggenmergletsel door het ruggenmerg te beïnvloeden, resulteert in vergelijkbare pathologieën als de meeste ruggenmergletsels in de klinische praktijk. Nauwkeurige, reproduceerbare en handige diermodellen van dwarslaesie zijn essentieel voor het bestuderen van dwarslaesie. We presenteren een nieuw geautomatiseerd apparaat voor kneuzing van ruggenmergletsel voor muizen, het slimme dwarslaesiesysteem van de Guangzhou Jinan University, dat modellen voor dwarslaesie kan produceren met nauwkeurigheid, reproduceerbaarheid en gemak. Het systeem produceert nauwkeurig modellen van verschillende gradaties van dwarslaesie via laserafstandssensoren in combinatie met een geautomatiseerd mobiel platform en geavanceerde software. We gebruikten dit systeem om drie niveaus van muizenmodellen voor ruggenmergletsel te maken, hun Basso-muisschaal (BMS)-scores te bepalen en zowel gedrags- als kleuringstests uit te voeren om de nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid ervan aan te tonen. We tonen elke stap van de ontwikkeling van de letselmodellen met behulp van dit apparaat en vormen een gestandaardiseerde procedure. Deze methode produceert reproduceerbare modellen van dwarslaesie-kneuzingsmuizen en vermindert menselijke manipulatiefactoren via handige hanteringsprocedures. Het ontwikkelde diermodel is betrouwbaar voor het bestuderen van dwarslaesiemechanismen en bijbehorende behandelingsbenaderingen.

Introduction

Dwarslaesie resulteert meestal in permanente disfunctie van het ruggenmerg onder het gewonde segment. Het wordt meestal veroorzaakt door voorwerpen die de wervelkolom raken en hyperextensie van de wervelkolom, zoals verkeersongevallenen valpartijen1. Vanwege de beperkte beschikbaarheid van effectieve behandelingsopties voor dwarslaesie, zal opheldering van de pathogenese van ruggenmergletsels met behulp van diermodellen informatief zijn voor de ontwikkeling van geschikte behandelingsbenaderingen. Het kneuzingsmodel van dwarslaesie veroorzaakt door impact op het ruggenmerg resulteert in de ontwikkeling van diermodellen met vergelijkbare pathologieën als de meesteklinische gevallen van ruggenmergletsel2,3. Daarom is het belangrijk om nauwkeurige, reproduceerbare en handige diermodellen voor kneuzing van ruggenmergletsel te produceren.

Sinds Allen’s uitvinding van het eerste diermodel van dwarslaesie in 1911, is er grote vooruitgang geboekt in de ontwikkeling van instrumenten voor het vaststellen van diermodellen voor dwarslaesie 4,5. Op basis van letselmechanismen worden dwarslaesiemodellen geclassificeerd als kneuzing, compressie, afleiding, ontwrichting, doorsnede of chemischestof 6. Onder hen zijn de kneuzingsmodellen, die externe krachten gebruiken om het ruggenmerg te verplaatsen en te verwonden, het dichtst bij de klinische etiologie van de meeste dwarslaesiepatiënten. Daarom is het kneuzingsmodel door veel onderzoekers gebruikt in onderzoeken naar dwarslaesie 3,7. Verschillende instrumenten worden gebruikt om modellen voor dwarslaesie te ontwikkelen. De impactor van de New York University (NYU) met multicenter dwarslaesie bij dieren (MASCIS) veroorzaakt kneuzingen van ruggenmergletsels door middel van een apparaat met gewichtdruppel8. Na verschillende bijgewerkte versies wordt de MASCIS-impactor veel gebruikt om diermodellen met dwarslaesie te ontwikkelen9. Wanneer de impactstaaf van MASCIS echter valt en het ruggenmerg raakt, kunnen er meerdere verwondingen optreden, wat van invloed is op de mate van letsel in dwarslaesiemodellen. Bovendien is het ook een uitdaging om mechanische precisie te bereiken om de nauwkeurigheid van het instrument en de herhaalbaarheid van het productiemodel te garanderen. De impactoren met oneindige horizon veroorzaken kneuzingen door de kracht die op het ruggenmerg wordt uitgeoefend te beheersen in plaats van zware druppels10. Het maakt gebruik van een computer die is aangesloten op een sensor om de impactkracht tussen de impactor en het ruggenmerg direct te meten. Wanneer de drempel is bereikt, wordt het botslichaam onmiddellijk ingetrokken, waardoor gewichtsterugkaatsing wordt voorkomen en de nauwkeurigheid wordt verbeterd10,11. Het gebruik van deze fijne motoriek om schade toe te brengen kan echter leiden tot inconsistente schade en functionele tekorten6. Het apparaat van de Ohio State University (OSU) comprimeert het dorsale oppervlak van het ruggenmerg met een voorbijgaande snelheid door een elektromagnetische driver 12,13. Dit apparaat is vergelijkbaar met de oneindige horizon-impactoren, omdat het compressies over korte afstand gebruikt om ruggenmergletsels te veroorzaken. Het heeft echter verschillende beperkingen in die zin dat de eerste bepaling van het nulpunt fouten zal veroorzaken als gevolg van de aanwezigheid van het hersenvocht 6,14. Samenvattend zijn er veel instrumenten die kunnen worden gebruikt om diermodellen voor dwarslaesie te ontwikkelen, maar ze hebben allemaal enkele beperkingen die leiden tot onvoldoende nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid van diermodellen. Om nauwkeuriger, handiger en reproduceerbaarder muiskneuzingsmodellen van ruggenmergletsel te maken, is daarom een geautomatiseerde en intelligente dwarslaesie-impactor nodig.

We presenteren een nieuwe impactor voor dwarslaesie, Guangzhou Jinan University smart spinal cord injury system (G smart SCI system; Figuur 1), voor het maken van modellen voor dwarslaesiekneuzingen. Het apparaat maakt gebruik van een laserafstandsmeter als positioneringsapparaat, gecombineerd met een geautomatiseerd mobiel platform om aanvallen te automatiseren volgens ingestelde slagparameters, waaronder slagsnelheid, slagdiepte en verblijftijd. Geautomatiseerde bediening vermindert menselijke factoren en verbetert de nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid van diermodellen.

Protocol

De studies met dieren werden beoordeeld en goedgekeurd door de ethische commissie van de Jinan University. 1. Verdoving van dieren en T10 spinale laminectomie Gebruik voor dit onderzoek vrouwelijke jongvolwassen C57/6J-muizen van 8 weken oud. Verdoof de muizen door intraperitoneale injectie van ketamine (100 mg/kg) en diazepam (5 mg/kg). Controleer op succesvolle anesthesie aangegeven door verlies van pijnreflex. Breng dierenartszalf aan op de ogen om uitdroging onde…

Representative Results

Laminectomie werd uitgevoerd op 24 vrouwelijke muizen (8 weken oud) zoals hierboven beschreven. Muizen in de schijngroep (n=6) werden niet onderworpen aan ruggenmergletsel, terwijl de rest van de muizen, inclusief de 0,5 mm-groep (n=6), de 0,8 mm-groep (n=6) en de 1,1 mm-groep (n=6) werden blootgesteld aan verschillende diepten van ruggenmergimpingement. De BMS-scores werden regelmatig geregistreerd tot 1 maand postoperatief (figuur 4). Er waren significante verschillen in postoperatieve BMS…

Discussion

Dwarslaesie kan leiden tot sensorische en motorische stoornissen, wat kan leiden tot ernstige lichamelijke en geestelijke beperkingen. In China varieert het aantal gevallen van ruggenmergletsels in verschillende provincies van 14,6 tot 60,6 per miljoen18. De toename van de prevalentie van dwarslaesie zal de druk op de gezondheidszorg vergroten. Momenteel zijn er beperkte effectieve behandelingsopties voor dwarslaesie, verwondingen omdat de pathomechanismen en herstelprocessen nog niet volledig wor…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China, nrs. 82102314 (naar ZSJ) en 32170977 (naar HSL) en Natural Science Foundation van de provincie Guangdong, nrs. 2022A1515010438 (naar ZSJ) en 2022A1515012306 (naar HSL). Deze studie werd ondersteund door het Clinical Frontier Technology Program van het First Affiliated Hospital van Jinan University, China, nrs. JNU1AF- CFTP- 2022- a01206 (naar HSL). Deze studie werd ondersteund door Guangzhou Science and Technology Plan Project, nrs. 202201020018 (naar HSL), 2023A04J1284 (naar ZSJ) en 2023A03J1024 (naar HSL).

Materials

0.01M PBS (powder, pH7.2-7.4) Solarbio Life Sciences P1010
2,2,2-Tribromoethanol Macklin 75-80-9
4% paraformaldehyde tissue fixative Biosharp life science BL539A
Biomicroscope Leica LCC50 HD
CatWalk  Noldus Information Technology CatWalk XT 9.1
Cover glass CITOTEST Scientific 10212432C
Embedding machine Changzhou Zhongwei Electronic Instrument BMJ-A
Ethanol absolute DAMAO 64-17-5
FootFaultScan Clever Sys Inc.
Glass slide CITOTEST Scientific 80302-2104
Hematoxylin and Eosin Staining Kit Beyotime Biotechnology C0105S
micro-grinding drill  FEIYUBIO 19-7010
Mouse spinal fixator RWD Life Science 68094
Paraffin microtome Thermo shandon finesse 325
RotaRod for Mice Ugo Basile 47600
Stereomicroscope KUY NICE SZM-7045
Tert-Amyl alcohol Macklin 75-85-4
Xylene China National Pharmaceutical #10023418

References

  1. Venkatesh, K., Ghosh, S. K., Mullick, M., Manivasagam, G., Sen, D. Spinal cord injury: pathophysiology, treatment strategies, associated challenges, and future implications. Cell and Tissue Research. 377 (2), 125-151 (2019).
  2. Chiu, C. W., Cheng, H., Hsieh, S. L. Contusion Spinal Cord Injury Rat Model. Bio Protocol. 7 (12), e2337 (2017).
  3. Thygesen, M. M., Guldbæk-Svensson, F., Rasmussen, M. M., Lauridsen, H. Contusion Spinal Cord Injury via a Microsurgical Laminectomy in the Regenerative Axolotl. Journal of Visualized Experiments. (152), 60337 (2019).
  4. Anderson, T. E. A controlled pneumatic technique for experimental spinal cord contusion. Journal of Neuroscience Methods. 6 (4), 327-333 (1982).
  5. Allen, A. R. SURGERY OF EXPERIMENTAL LESION OF SPINAL CORD EQUIVALENT TO CRUSH INJURY OF FRACTURE DISLOCATION OF SPINAL COLUMN: A PRELIMINARY REPORT. Journal of the American Medical Association. LVII (11), 878-880 (1911).
  6. Cheriyan, T., et al. Spinal cord injury models: a review. Spinal Cord. 52 (8), 588-595 (2014).
  7. Yan, R., et al. A modified impactor for establishing a graded contusion spinal cord injury model in rats. Annals of Translational Medicine. 10 (8), 436 (2022).
  8. Gruner, J. A. A monitored contusion model of spinal cord injury in the rat. Journal of Neurotrauma. 9 (2), 123-126 (1992).
  9. Ghnenis, A. B., et al. Evaluation of the Cardiometabolic Disorders after Spinal Cord Injury in Mice. Biology (Basel). 11 (4), 495 (2022).
  10. Scheff, S. W., Rabchevsky, A. G., Fugaccia, I., Main, J. A., Lumpp, J. E. Experimental modeling of spinal cord injury: characterization of a force-defined injury device. Journal of Neurotrauma. 20 (2), 179-193 (2003).
  11. Hong, Y. R., et al. Ultrasound stimulation improves inflammatory resolution, neuroprotection, and functional recovery after spinal cord injury. Scientific Reports. 12 (1), 3636 (2022).
  12. Noyes, D. H. Electromechanical impactor for producing experimental spinal cord injury in animals. Medical & Biological Engineering & Computing. 25 (3), 335-340 (1987).
  13. Stokes, B. T., Noyes, D. H., Behrmann, D. L. An electromechanical spinal injury technique with dynamic sensitivity. Journal of Neurotrauma. 9 (3), 187-195 (1992).
  14. Pearse, D. D., et al. Histopathological and behavioral characterization of a novel cervical spinal cord displacement contusion injury in the rat. Journal of Neurotrauma. 22 (6), 680-702 (2005).
  15. Wu, X., et al. A Tissue Displacement-based Contusive Spinal Cord Injury Model in Mice. Journal of Visualized Experiments. (124), 54988 (2017).
  16. Forgione, N., Chamankhah, M., Fehlings, M. G. A Mouse Model of Bilateral Cervical Contusion-Compression Spinal Cord Injury. Journal of Neurotrauma. 34 (6), 1227-1239 (2017).
  17. Ji, Z. S., et al. Highly bioactive iridium metal-complex alleviates spinal cord injury via ROS scavenging and inflammation reduction. Biomaterials. 284, 121481 (2022).
  18. Chen, C., Qiao, X., Liu, W., Fekete, C., Reinhardt, J. D. Epidemiology of spinal cord injury in China: A systematic review of the chinese and english literature. Spinal Cord. 60 (12), 1050-1061 (2022).
  19. Flack, J. A., Sharma, K. D., Xie, J. Y. Delving into the recent advancements of spinal cord injury treatment: a review of recent progress. Neural Regeneration Research. 17 (2), 283-291 (2022).
  20. Khuyagbaatar, B., Kim, K., Kim, Y. H. Conversion Equation between the Drop Height in the New York University Impactor and the Impact Force in the Infinite Horizon Impactor in the Contusion Spinal Cord Injury Model. Journal of Neurotrauma. 32 (24), 1987-1993 (2015).
  21. Alizadeh, A., Dyck, S. M., Karimi-Abdolrezaee, S. Traumatic Spinal Cord Injury: An Overview of Pathophysiology, Models and Acute Injury Mechanisms. Frontiers in Neurology. 10, 282 (2019).
  22. Bilgen, M. A new device for experimental modeling of central nervous system injuries. Neurorehabilitation and Neural Repair. 19 (3), 219-226 (2005).
  23. Khan, M., et al. GSNOR and ALDH2 alleviate traumatic spinal cord injury. Brain Research. 1758, 147335 (2021).

Play Video

Cite This Article
Wu, M., Luo, J., Gao, Y., Peng, C., Chen, T., Zhang, G., Yang, H., Lin, H., Ji, Z. Automated Impactor for Contusive Spinal Cord Injury Model in Mice. J. Vis. Exp. (203), e65656, doi:10.3791/65656 (2024).

View Video