En este artículo se presenta la aplicación de un método de detección de baja frecuencia basado en la secuenciación de Sanger en el linfoma angioinmunoblástico. Proporcionar una base para aplicar este método a otras enfermedades.
Cuando se monitorea la enfermedad residual mínima (ERM) después del tratamiento tumoral, hay requisitos más altos del límite inferior de detección que cuando se detectan mutaciones de resistencia a los medicamentos y mutaciones de células tumorales circulantes durante el tratamiento. La secuenciación tradicional de Sanger tiene un 5%-20% de detección de mutaciones de tipo salvaje, por lo que su límite de detección no puede cumplir con los requisitos correspondientes. Las tecnologías de bloqueo de tipo salvaje que se ha informado que superan esto incluyen la amplificación de desplazamiento de bloqueadores (BDA), el ácido nucleico bloqueado no extensible (LNA), las sondas específicas de puntos calientes (HSSP), etc. Estas tecnologías utilizan secuencias específicas de oligonucleótidos para bloquear el tipo salvaje o reconocer el tipo salvaje y luego combinarlo con otros métodos para evitar la amplificación del tipo salvaje y amplificar la amplificación de mutantes, lo que da lugar a características como alta sensibilidad, flexibilidad y comodidad. Este protocolo utiliza BDA, una PCR de bloqueo de tipo salvaje combinada con secuenciación de Sanger, para optimizar la detección de mutaciones somáticas de baja frecuencia RHOA G17V, y la sensibilidad de detección puede alcanzar el 0,5%, lo que puede proporcionar una base para el seguimiento de la ERM del linfoma angioinmunoblástico de células T.
La enfermedad residual mínima (ERM) es la pequeña cantidad de células cancerosas que aún están presentes en el cuerpo después del tratamiento. Debido a su pequeño número, no provocan ningún signo o síntoma físico. A menudo pasan desapercibidos por los métodos tradicionales, como la visualización microscópica y/o el seguimiento de proteínas séricas anormales en la sangre. Un resultado positivo de la prueba de ERM indica la presencia de células enfermas residuales. Un resultado negativo significa que las células enfermas residuales están ausentes. Después del tratamiento contra el cáncer, las células cancerosas restantes en el cuerpo pueden activarse y comenzar a multiplicarse, lo que provoca una recaída de la enfermedad. La detección de ERM es indicativa de que el tratamiento no fue completamente eficaz o que el tratamiento fue incompleto. Otra razón para los resultados positivos de ERM después del tratamiento podría ser que no todas las células cancerosas respondieron a la terapia o porque las células cancerosas se volvieron resistentes a los medicamentos utilizados.
El linfoma angioinmunoblástico de células T (AITL) es un subtipo de linfoma periférico de células T (PTCL) derivado de células T foliculares auxiliares2; es el tipo más común de linfoma de células T, que representa alrededor del 15% al 20% de PTCL3. Es un grupo de neoplasias malignas relacionadas que afectan al sistema linfático. La célula de origen es la célula T auxiliar folicular. La clasificación de la OMS de 2016 lo categoriza como linfoma angioinmunoblástico de células T4. En 2022, la OMS lo rebautizó como linfoma nodal de células foliculares auxiliares de tipo angioinmunoblástico (nTFHL-AI), junto con linfoma de células auxiliares foliculares foliculares nodales (nTFHL-F) y linfoma de células auxiliares foliculares T nodales, no especificado de otro modo (nTFHL-NOS), denominados colectivamente linfoma de células T auxiliares foliculares nodulares (nTFHL). Esto se hizo para identificar sus importantes características clínicas e inmunofenotípicas y las firmas y mutantes similares de expresión génica de T folicular helper (TFH). Genéticamente, nTFHL-AI se caracteriza por la adquisición progresiva de mutaciones somáticas en células madre hematopoyéticas tempranas a través de mutaciones TET2 y DNMT3A, mientras que las mutaciones RHOA e IDH2 también están presentes en células tumorales TFH5. Varios estudios han demostrado que la mutación RHOA G17V ocurre en el 50%-80% de los pacientes con AITL 6,7,8,9. La proteína RHOA codificada por el gen RHOA se activa por la unión del trifosfato de guanosina (GTP) y se inactiva por la unión del difosfato de guanosina (GDP). Cuando se activa, puede unirse a una variedad de proteínas efectoras y regular una variedad de procesos biológicos. Fisiológicamente, RHOA media la migración y polaridad de las células T, desempeña un papel en el desarrollo de los timocitos y media la activación de la señalización del receptor de células pre-T (pre-TCR)10. La mutación RHOA G17V es una mutación de pérdida de función que desempeña un papel determinante en la patogénesis del linfoma11. La detección de su mutación de baja frecuencia es útil para la monitorización de la ERM de AITL.
La secuenciación de Sanger se ha utilizado durante más de 40 años como el estándar de oro para la detección de mutaciones conocidas y desconocidas. Sin embargo, su límite de detección es solo del 5%-20%, lo que limita su aplicación para la detección de mutaciones de baja frecuencia12,13. En la secuenciación de Sanger, la sensibilidad de detección puede disminuirse hasta el 0,1% sustituyendo la PCR tradicional por BDA, una tecnología de bloqueo de la naturalezasalvaje 14. La tecnología BDA agrega principalmente un cebador no coincidente complementario al tipo mutante cuando se diseñan cebadores convencionales para competir con el tipo salvaje y lograr el propósito de amplificar el tipo mutante. La clave para el diseño del cebador es el cebador no coincidente y la modificación del terminal. Al mismo tiempo, de acuerdo con el principio estructural del ADN, la diferencia entre la energía libre de Gibbs de los dos cebadores está entre 0,8 kcal/mol y 5 kcal/mol. Otro paso clave en esta técnica es suprimir la amplificación de tipo salvaje ajustando la proporción de cebadores de tipo salvaje y bloqueante14,15.
En la actualidad, las técnicas comunes de detección de mutaciones somáticas de baja frecuencia incluyen PCR específica de alelos basada en PCR (reacción en cadena de la polimerasa específica de alelo, ASPCR), sistema de mutación refractaria a la amplificación PCR (sistema de mutación refractaria a la amplificación-PCR, ARMS-PCR) utilizada para el genotipado de SNP con la ayuda de cebadores refractarios. El diseño de cebadores para los alelos mutantes y normales permite la amplificación selectiva y la PCR digital (Droplet Digital PCR, ddPCR), un método para realizar PCR digital que se basa en la tecnología de gotas de emulsión agua-aceite16. Una muestra se fracciona en 20.000 gotas y, para cada gota, se realiza una amplificación por PCR de las moléculas madre con una sensibilidad de 1 x 10-5; la amplificación por desplazamiento de bloqueadores (BDA) es también un método de enriquecimiento de alelos raros basado en PCR que se utiliza para la detección y cuantificación precisas de SNV e indels de hasta 0,01% de VAF en un entorno altamente multiplexado; La tecnología de ácido nucleico bloqueado (ácido nucleico bloqueado no extensible, LNA), es una clase de análogos de ARN de alta afinidad en los que el anillo de ribosa está bloqueado en la conformación ideal para la unión de Watson-Crick; Las sondas específicas de puntos calientes (Hot-Spot-Specific Probe, HSSP), se superponen a la secuencia de cebadores objetivo, incluyen una sola mutación y se modifican con un espaciador C3 en el extremo C3‘ para evitar la amplificación por qPCR 14,16,17,18. Cuando existe una mutación en la secuencia, el HSSP se adhiere competitivamente a la mutación objetivo y evita que el cebador se una a la secuencia mutante objetivo, lo que detiene la amplificación de la secuencia; NGS (secuenciación de próxima generación) – secuenciación de inmunoglobulinas de alto rendimiento (igHTS) Perfil personalizado del cáncer por secuenciación profunda (CAAP-seq), es un método basado en secuenciación de próxima generación que se utiliza para cuantificar el ADN circulante en las células cancerosas (la sensibilidad es 1 x 10-4); etcetera. Entre ellos, la mayoría de los métodos se basan en PCR y solo pueden detectar un pequeño número de sitios de mutación, y los métodos basados en NGS pueden detectar múltiples sitios, pero el costo es alto y el proceso es complicado 14,16,17,18. Ha habido informes sobre la detección de mutaciones de baja frecuencia en RHOA G17V basadas en la qPCR, pero el límite de detección solo puede alcanzar alrededor del 2%19. No hay informes sobre la detección de la mutación de baja frecuencia RHOA G17V basada en la secuenciación de Sanger. Aquí, demostramos el aumento de la sensibilidad logrado por BDA, una PCR en bloque de tipo salvaje combinada con la secuenciación de Sanger, para optimizar la detección de mutaciones somáticas de baja frecuencia RHOA G17V, y la sensibilidad de detección puede alcanzar el 0,5%. También se proporcionan datos adicionales para IDH2 y JAK1.
Este artículo proporciona un protocolo detallado del esquema de detección de baja frecuencia RHOA G17V mediante secuenciación de Sanger y proporciona una referencia para el desarrollo de más detección de mutaciones de baja frecuencia basada en la plataforma de secuenciación de Sanger. Este método se puede utilizar para detectar y monitorizar posibles mutaciones de resistencia a los fármacos y residuos mínimos en los tumores.
La WTB-PCR basada en la tecnología BDA, descrita en este artículo, introduce un cebador no coincidente complementario al tipo mutante cuando se diseñan cebadores convencionales para competir con el tipo salvaje, suprimir el tipo salvaje y amplificar el producto mutante. A continuación, se secuenciaron los productos WTB-PCR para el análisis de mutaciones. La utilidad de WTB-PCR/Sanger es su simplicidad y alta sensibilidad. De acuerdo con el esquema de detección establecido en este t…
The authors have nothing to disclose.
Esta investigación se completó con el apoyo financiero de Kindstar Global Corporation y la ayuda de los líderes del Laboratorio de Biología Molecular y colegas relacionados. Gracias a la empresa, a los líderes y a los compañeros relevantes por su apoyo y ayuda. Este artículo solo se utiliza para investigación científica y no constituye ninguna actividad comercial.
Automatic DNA extractor | 9001301 | Qiagen | |
DNA nucleic acid detector | Q32854 | Thermo fisher | |
PCR amplification kit | P4600 | merck | |
PCR instrument | C1000 Touch | Biorad | |
proteinase K solution | D3001-2-A | zymo research | |
proteinase K storage buffer | D3001-2-C | zymo research | |
Sequencing amplification enzyme kit | P7670-FIN | Qiagen |
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