Este artigo apresenta a aplicação de um método de detecção de baixa frequência baseado no sequenciamento de Sanger no linfoma angioimunoblástico. Forneça uma base para aplicar este método a outras doenças.
Ao monitorar a doença residual mínima (MRD) após o tratamento do tumor, há requisitos mais altos do limite inferior de detecção do que ao detectar mutações de resistência a medicamentos e mutações de células tumorais circulantes durante a terapia. O sequenciamento Sanger tradicional tem detecção de mutação do tipo selvagem de 5% a 20%, portanto, seu limite de detecção não pode atender aos requisitos correspondentes. As tecnologias de bloqueio do tipo selvagem que foram relatadas para superar isso incluem amplificação de deslocamento do bloqueador (BDA), ácido nucleico bloqueado não extensível (LNA), sondas específicas de pontos quentes (HSSP), etc. Essas tecnologias usam sequências específicas de oligonucleotídeos para bloquear o tipo selvagem ou reconhecer o tipo selvagem e, em seguida, combinam isso com outros métodos para evitar a amplificação do tipo selvagem e amplificar a amplificação mutante, levando a características como alta sensibilidade, flexibilidade e conveniência. Este protocolo usa BDA, uma PCR de bloqueio de tipo selvagem combinada com sequenciamento de Sanger, para otimizar a detecção de mutações somáticas de baixa frequência RHOA G17V, e a sensibilidade de detecção pode chegar a 0,5%, o que pode fornecer uma base para o monitoramento de MRD de linfoma angioimunoblástico de células T.
A doença residual mínima (MRD) é o pequeno número de células cancerígenas que ainda estão presentes no corpo após o tratamento. Devido ao seu pequeno número, eles não levam a nenhum sinal ou sintoma físico. Eles geralmente não são detectados por métodos tradicionais, como visualização microscópica e / ou rastreamento de proteínas séricas anormais no sangue. Um resultado de teste positivo para DRM indica a presença de células doentes residuais. Um resultado negativo significa que as células doentes residuais estão ausentes. Após o tratamento do câncer, as células cancerígenas restantes no corpo podem se tornar ativas e começar a se multiplicar, causando uma recaída da doença. A detecção de DRM é indicativa de que o tratamento não foi completamente eficaz ou que o tratamento foi incompleto. Outra razão para os resultados positivos para MRD após o tratamento pode ser que nem todas as células cancerígenas responderam à terapia ou porque as células cancerígenas se tornaram resistentes aos medicamentos usados1.
O linfoma angioimunoblástico de células T (AITL) é um subtipo de linfoma periférico de células T (PTCL) derivado de células T foliculares auxiliares2; é o tipo mais comum de linfoma de células T, representando cerca de 15% a 20% do PTCL3. É um grupo de malignidades relacionadas que afetam o sistema linfático. A célula de origem é a célula T auxiliar folicular. A classificação da OMS de 2016 o categoriza como Linfoma Angioimunoblástico de Células T4. Em 2022, a OMS o renomeou como linfoma nodal de células auxiliares foliculares T, tipo angioimunoblástico (nTFHL-AI), juntamente com linfoma nodal de células auxiliares foliculares T, tipo folicular (nTFHL-F) e linfoma nodal de células auxiliares foliculares T, sem outra especificação (nTFHL-NOS), coletivamente referido como linfoma de células T auxiliares foliculares nodulares (nTFHL). Isso foi feito para identificar suas importantes características clínicas e imunofenotípicas e assinaturas e mutantes semelhantes de expressão gênica do T folicular helper (TFH). Geneticamente, o nTFHL-AI é caracterizado pela aquisição progressiva de mutações somáticas em células-tronco hematopoiéticas precoces por meio de mutações TET2 e DNMT3A, enquanto mutações RHOA e IDH2 também estão presentes em células tumorais TFH5. Vários estudos mostraram que a mutação RHOA G17V ocorre em 50% a 80% dos pacientes com AITL 6,7,8,9. A proteína RHOA codificada pelo gene RHOA é ativada pela ligação do trifosfato de guanosina (GTP) e inativada pela ligação do difosfato de guanosina (GDP). Quando ativado, ele pode se ligar a uma variedade de proteínas efetoras e regular uma variedade de processos biológicos. Fisiologicamente, o RHOA medeia a migração e a polaridade das células T, desempenha um papel no desenvolvimento dos timócitos e medeia a ativação da sinalização do receptor pré-T (pré-TCR)10. A mutação RHOA G17V é uma mutação de perda de função que desempenha um papel determinante na patogênese do linfoma11. A detecção de sua mutação de baixa frequência é útil para o monitoramento de DRM de AITL.
O sequenciamento de Sanger tem sido usado há mais de 40 anos como padrão-ouro para a detecção de mutações conhecidas e desconhecidas. No entanto, seu limite de detecção é de apenas 5%-20%, o que limita sua aplicação para detecção de mutações de baixa frequência12,13. No sequenciamento de Sanger, a sensibilidade de detecção pode ser reduzida para 0,1% substituindo a PCR tradicional por BDA, uma tecnologia de bloqueio selvagem14. A tecnologia BDA adiciona principalmente um primer incompatível complementar ao tipo mutante ao projetar primers convencionais para competir com o tipo selvagem, de modo a atingir o objetivo de amplificar o tipo mutante. A chave para o design do primer é o primer de incompatibilidade e a modificação do terminal. Ao mesmo tempo, de acordo com o princípio estrutural do DNA, a diferença entre a energia livre de Gibbs dos dois primers está entre 0,8 kcal / mol e 5 kcal / mol. Outro passo fundamental nessa técnica é suprimir a amplificação do tipo selvagem, ajustando a proporção de primers do tipo selvagem e do tipo bloqueador14,15.
Atualmente, as técnicas comuns de detecção de mutação somática de baixa frequência incluem PCR alelo-específico baseado em PCR (reação em cadeia da polimerase alelo-específica, ASPCR), PCR do sistema de mutação refratária à amplificação (amplification-refractory mutation system-PCR, ARMS-PCR) usado para genotipagem de SNP com a ajuda de primers refratários. O design de primers para os alelos mutante e normal permite a amplificação seletiva e a PCR digital (Droplet Digital PCR, ddPCR), um método para realizar PCR digital baseado na tecnologia de gotículas de emulsão água-óleo16. Uma amostra é fracionada em 20.000 gotículas e, para cada gota, uma amplificação por PCR das moléculas modelo é feita com uma sensibilidade de 1 x 10-5; a amplificação de deslocamento do bloqueador (BDA) também é um método de enriquecimento de alelos raros baseado em PCR usado para detecção e quantificação precisas de SNVs e indels até 0,01% VAF em um ambiente altamente multiplexado; A tecnologia de ácido nucleico bloqueado (ácido nucleico bloqueado não extensível, LNA) é uma classe de análogos de RNA de alta afinidade em que o anel de ribose é bloqueado na conformação ideal para a ligação de Watson-Crick; sondas específicas de hotspot (Hot-Spot-Specific Probe, HSSP), sobrepõem-se à sequência de primer alvo, incluem uma única mutação e são modificadas com um espaçador C3 na extremidade C3‘ para evitar amplificação por qPCR 14,16,17,18. Quando existe uma mutação na sequência, o HSSP se liga competitivamente à mutação alvo e impede que o primer se ligue à sequência mutante alvo, o que interrompe a amplificação da sequência; NGS (sequenciamento de próxima geração) – sequenciamento de alto rendimento baseado em imunoglobulina (igHTS) Perfil personalizado de câncer por sequenciamento profundo (CAAP-seq), é um método baseado em sequenciamento de próxima geração usado para quantificar o DNA circulante em células cancerígenas (a sensibilidade é 1 x 10-4); etc. Entre eles, a maioria dos métodos é baseada em PCR e só pode detectar um pequeno número de sítios de mutação, e os métodos baseados em NGS podem detectar múltiplos sítios, mas o custo é alto e o processo é complicado 14,16,17,18. Houve relatos sobre a detecção de mutações de baixa frequência RHOA G17V com base na qPCR, mas o limite de detecção pode chegar a apenas cerca de 2%19. Não há relato sobre a detecção da mutação de baixa frequência RHOA G17V com base no sequenciamento de Sanger. Aqui, demonstramos o aumento da sensibilidade alcançado pelo BDA, um PCR em bloco do tipo selvagem combinado com o sequenciamento de Sanger, para otimizar a detecção de mutações somáticas de baixa frequência RHOA G17V, e a sensibilidade de detecção pode chegar a 0,5%. Dados adicionais para IDH2 e JAK1 também são fornecidos.
Este artigo fornece um protocolo detalhado do esquema de detecção de baixa frequência RHOA G17V por sequenciamento Sanger e fornece uma referência para o desenvolvimento de mais detecção de mutação de baixa frequência com base na plataforma de sequenciamento Sanger. Este método pode ser usado para detectar e monitorar possíveis mutações de resistência a medicamentos e resíduos mínimos em tumores.
O WTB-PCR baseado na tecnologia BDA, descrito neste artigo, introduz um primer incompatível complementar ao tipo mutante ao projetar primers convencionais para competir com o tipo selvagem, suprimir o tipo selvagem e amplificar o produto mutante. Em seguida, os produtos WTB-PCR foram sequenciados para análise de mutação. A utilidade do WTB-PCR / Sanger é sua simplicidade e alta sensibilidade. De acordo com o esquema de detecção estabelecido neste artigo, a maioria dos ensaios base…
The authors have nothing to disclose.
Esta pesquisa foi concluída com o apoio financeiro da Kindstar Global Corporation e a ajuda dos líderes do Laboratório de Biologia Molecular e colegas relacionados. Obrigado à empresa, líderes e colegas relevantes por seu apoio e ajuda. Este artigo é usado apenas para pesquisa científica e não constitui nenhuma atividade comercial.
Automatic DNA extractor | 9001301 | Qiagen | |
DNA nucleic acid detector | Q32854 | Thermo fisher | |
PCR amplification kit | P4600 | merck | |
PCR instrument | C1000 Touch | Biorad | |
proteinase K solution | D3001-2-A | zymo research | |
proteinase K storage buffer | D3001-2-C | zymo research | |
Sequencing amplification enzyme kit | P7670-FIN | Qiagen |
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