Summary

Preparazione di campioni alimentari mediante omogeneizzazione e digestione acida umida assistita da microonde per la determinazione di più elementi con ICP-MS

Published: December 22, 2023
doi:

Summary

Il protocollo presentato descrive l’omogeneizzazione del campione con un miscelatore da laboratorio, la digestione acida di campioni alimentari utilizzando una miscela di 68% in peso di HNO3 e 30% in peso di H2O2 tramite digestione acida a umido assistita da microonde e determinazione multielemento eseguita con spettrometria di massa al plasma accoppiato induttivamente.

Abstract

La preparazione del campione è fondamentale per la determinazione elementare e sono disponibili varie tecniche, una delle quali prevede l’omogeneizzazione seguita dalla digestione acida. È necessaria un’attenzione particolare durante la manipolazione del campione nella fase di preparazione per eliminare o ridurre al minimo la potenziale contaminazione e la perdita di analiti. L’omogeneizzazione è un processo che riduce contemporaneamente la dimensione delle particelle e distribuisce uniformemente i componenti del campione. Dopo l’omogeneizzazione, il campione viene sottoposto a digestione acida, in cui viene digerito con acidi e sostanze chimiche ausiliarie a temperature elevate, trasformando i campioni solidi in uno stato liquido. In questo processo, i metalli nel campione originale reagiscono con gli acidi per formare sali solubili in acqua. I campioni preparati attraverso la digestione acida sono adatti per l’analisi elementare utilizzando tecniche come la spettrometria di massa al plasma accoppiato induttivamente, la spettroscopia di emissione ottica al plasma accoppiato induttivamente, la spettroscopia di assorbimento atomico, i metodi elettrochimici e altre tecniche analitiche. Questo lavoro descrive in dettaglio la preparazione di campioni alimentari per la determinazione di più elementi utilizzando la spettrometria di massa al plasma accoppiato induttivamente. La procedura passo-passo prevede il processo di omogeneizzazione utilizzando un miscelatore di dimensioni da laboratorio con lame in ceramica, seguito dalla digestione acida in recipienti chiusi utilizzando la digestione acida umida assistita da microonde. Una miscela di 5,0 mL di HNO3 al 68% in peso e 1,0 mL di H2O2 al 30% in peso funge da reagente ausiliario. Questa guida fornisce una spiegazione dei processi coinvolti in entrambe le fasi.

Introduction

L’analisi elementare è un processo analitico per determinare la composizione elementare di vari campioni. Può essere utilizzato per controllare l’assunzione di metalli nel corpo umano (in particolare metalli pesanti1) poiché le loro alte concentrazioni possono causare problemi di salute indesiderati. I metalli pesanti sono anche uno dei principali contaminanti ambientali, pertanto è necessario controllare la loro presenza nell’ambiente2. Inoltre, l’analisi elementare può essere impiegata per determinare l’origine geografica dei prodotti alimentari3 e per controllare la qualità delle risorse alimentari e idriche4. Inoltre, viene utilizzato per la determinazione di micro e macronutrienti nei suoli5 e per ottenere informazioni sui processi geologici nel corso della storia esaminando la composizione chimica di minerali e sedimenti6. Sono stati inoltre condotti studi per determinare la presenza di metalli rari nei rifiuti elettrici ed elettronici per un’ulteriore rigenerazione dei metalli7, per valutare il successo dei trattamenti farmacologici8 e per verificare la composizione elementare degli impianti metallici9.

La spettrometria di massa al plasma accoppiato induttivamente (ICP-MS) e la spettroscopia di emissione ottica al plasma accoppiato induttivamente (ICP-OES) sono tecniche comunemente utilizzate per l’analisi elementare di vari campioni10. Consentono la determinazione simultanea di più elementi con limiti di rilevazione (LOD) e limiti di quantificazione (LOQ) fino a ng/L. In generale, l’ICP-MS ha valori di LODpiù bassi 11 e un intervallo di concentrazione lineare più ampio rispetto all’ICP-OES12. Altre tecniche per determinare la composizione elementare sono la spettrometria di emissione ottica al plasma indotta da microonde13 e diverse varianti della spettroscopia di assorbimento atomico (AAS), tra cui la spettroscopia di assorbimento atomico a fiamma, la spettroscopia di assorbimento atomicoelettrotermico 2, la spettroscopia di assorbimento atomico a vapore freddo e la spettroscopia di assorbimento atomico di generazione di idruri14. Inoltre, la determinazione elementare con basso LOD e LOQ è possibile con diversi metodi elettroanalitici, in particolare con la voltammetria di stripping anodico15,16. Naturalmente, ci sono altri metodi per determinare la composizione elementare dei campioni, ma non sono così frequentemente impiegati come i metodi sopra menzionati.

La determinazione elementare diretta di campioni solidi è fattibile utilizzando la spettroscopia di rottura indotta dal laser e la fluorescenza a raggi X17. Tuttavia, per la determinazione elementare con ICP-MS, ICP-OES e AAS è necessario convertire i campioni solidi in uno stato liquido. A tale scopo, la digestione acida viene eseguita utilizzando acidi e reagenti ausiliari (nella maggior parte dei casi H2O2 ). La digestione acida viene effettuata a temperatura e pressione elevate, convertendo la parte organica del campione in prodotti gassosi e convertendo gli elementi metallici in sali solubili in acqua, sciogliendoli così nella soluzione18.

Esistono due tipi principali di digestione acida, la digestione a vaso aperto e la digestione a vaso chiuso. La digestione a vaso aperto è economicamente vantaggiosa14 ma presenta limitazioni, come la temperatura massima di digestione, che coincide con la temperatura di ebollizione degli acidi a pressione atmosferica. Il campione può essere riscaldato su piastre riscaldanti, blocchi riscaldanti, bagni d’acqua, bagni di sabbia2 e microonde19. Riscaldando il campione in questo modo, gran parte del calore generato viene disperso nell’ambiente circostante20, il che prolunga il tempo di digestione14. Altri svantaggi della digestione a vaso aperto includono un maggiore consumo di prodotti chimici, la maggiore possibilità di contaminazione dall’ambiente circostante e la possibile perdita di analiti a causa della formazione di componenti volatili e della loro evaporazione dalla miscela di reazione21.

I sistemi a recipiente chiuso sono più convenienti per la digestione di campioni organici e inorganici rispetto ai sistemi a recipiente aperto. I sistemi a recipiente chiuso utilizzano una varietà di fonti di energia per riscaldare i campioni, come il riscaldamento a conduzione e le microonde22. I metodi di digestione che utilizzano le microonde includono la combustione indotta da microonde23, i sistemi a camera singoladi reazione 24 e la digestione acida umida assistita da microonde (MAWD) comunemente usata25,26. MAWD consente la digestione a temperature di esercizio più elevate, comprese tra 220 °C e 260 °C e pressioni massime fino a 200 bar, a seconda delle condizioni di lavoro dello strumento27.

L’efficienza e la velocità di MAWD dipendono da diversi fattori, tra cui la composizione chimica dei campioni, la temperatura massima, il gradiente di temperatura, la pressione nel recipiente di reazione, la quantità di acidi aggiunti e la concentrazione di acidi utilizzati28. Nella MAWD, la digestione acida completa può essere raggiunta in pochi minuti grazie alle elevate condizioni di reazione rispetto alle digestioni più durature nei sistemi a vaso aperto. Nella MAWD sono richiesti volumi e concentrazioni inferiori di acidi, in linea con le attuali linee guida sulla chimica verde29. Nella MAWD, è necessaria una quantità minore di campione rispetto alla digestione a vaso aperto per eseguire la digestione acida, di solito sono sufficienti fino a 500 mg di campione 30,31,32. Possono essere digerite quantità di campione maggiori, ma richiedono una maggiore quantità di sostanze chimiche.

Poiché lo strumento per MAWD controlla automaticamente le condizioni di reazione e la persona non entra in contatto diretto con le sostanze chimiche durante il riscaldamento, MAWD è più sicuro da usare rispetto alle digestioni a vaso aperto. Tuttavia, la persona dovrebbe sempre procedere con cautela quando si aggiungono sostanze chimiche ai vasi di reazione per evitare che entrino in contatto con il corpo e causino danni. Anche i recipienti di reazione devono essere aperti lentamente poiché la pressione si accumula al loro interno durante la digestione acida.

Sebbene la digestione acida sia una tecnica utile per preparare i campioni per la determinazione elementare, la persona che la esegue dovrebbe essere consapevole dei suoi possibili limiti. La digestione acida potrebbe non essere adatta a tutti i campioni, in particolare a quelli con matrici complesse e a quelli altamente reattivi o che potrebbero reagire in modo esplosivo. Pertanto, la composizione del campione deve essere sempre valutata per selezionare le sostanze chimiche e le condizioni di reazione appropriate per una digestione completa che dissolva tutti gli elementi desiderati nella soluzione. Altre preoccupazioni che l’utente deve considerare e affrontare sono le impurità e la perdita di analiti in ogni fase della preparazione del campione. La digestione acida deve essere sempre eseguita secondo regole specifiche o utilizzando protocolli.

Il protocollo descritto di seguito fornisce le istruzioni per l’omogeneizzazione dei campioni alimentari in un miscelatore di dimensioni da laboratorio, una procedura per la pulizia dei componenti del miscelatore, la corretta pesatura del campione, l’aggiunta di sostanze chimiche, l’esecuzione della digestione acida mediante MAWD, la pulizia dei recipienti di reazione al termine della digestione, la preparazione dei campioni per la determinazione elementare e l’esecuzione di una determinazione quantitativa multielemento con ICP-MS. Seguendo le istruzioni riportate di seguito, si dovrebbe essere in grado di preparare un campione adatto alla determinazione elementare ed eseguire le misurazioni dei campioni digeriti.

Protocol

1. Omogeneizzazione del campione Usando un coltello di ceramica pulito, taglia manualmente i campioni di cibo (broccoli, funghi, salsicce e tagliatelle) in pezzi più piccoli per accelerare il processo di essiccazione. Preparare una quantità sufficiente di campioni per un minimo di 6 repliche della digestione acida (assicurarsi che la massa minima dei campioni essiccati sia di 1500 mg).NOTA: L’aumento della superficie del campione espone una porzione maggiore del campione all’aria circosta…

Representative Results

OmogeneizzazioneTutti i campioni sono stati essiccati a massa costante con l’essiccatore da laboratorio per eliminare l’umidità. Il trasferimento del campione in un essiccatore ha permesso di raffreddarlo a temperatura ambiente senza legare l’umidità dall’ambiente circostante. I campioni di cibo sono stati poi omogeneizzati utilizzando il miscelatore di laboratorio per ottenere una polvere fine. Le particelle omogeneizzate risultanti erano di dimensioni uniformi e distribuite uniformemente, assicur…

Discussion

Omogeneizzazione
Per garantire risultati riproducibili nella determinazione elementare, è necessario omogeneizzare i campioni prima della digestione acida a causa della loro struttura e composizione complessa e disomogenea. L’omogeneizzazione mira ad eliminare l’eterogeneità costituzionale e distributiva. La miscelazione del campione riduce al minimo l’eterogeneità distributiva ridistribuendo uniformemente i componenti in tutto il campione. Allo stesso modo, riducendo la dimensione delle particelle…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori riconoscono il sostegno finanziario dell’Agenzia slovena per la ricerca (sovvenzioni n. P2-0414, P2-0118, J1-2470, NK-0001 e J1-4416).

Materials

Ar gas Messer 7440-37-1 Ar 5.0 gas (purity 99.999%).
AS-10 Autosampler system Shimadzu Autosampler connected to the ICP-MS, containing 68 ports for samples.
Automatic pipettes Sartorius 200 µL, 1 mL, and 5 mL automatic pipettes.
Balance XSE104 Mettler Toledo, Columbus, Ohio, USA Analytical balance scale with a maximum weighing mass of 120 g.
Ceramic knife Ceramic knife used for cutting fresh food samples.
Dessicator Glass desiccator with lumps of silica gel.
ETHOS LEAN Milestone, Sorisole, Italy Microwave system for wet acid digestion in closed 100 mL vessels made of TFM-PTFE.
Fume hood Laboratory fume hood with adjustable air flow.
Glass beakers RASOTHERM CarlRoth GmbH + Co.KG 50 mL, 250 mL glass beakers
Glass funnels Small glass funnels fitting into the neck of volumetric flasks.
He gas Messer 7440-59-7 He 5.0 gas (purity 99.999%).
Hydrogen peroxide ThermoFisher Scientific 7722-84-1 Hxdrogen peroxide 100 volumes 30 wt.% solution. Laboratory reagent grade.
ICP multi-element standard solution VIII Supelco 109492 100 mg/L ICP multi-element standard solution containing 24 elements (Al, B, Ba, Be, Bi, Ca, Cd, Co, Cr, Cu, Fe, Ga, K, Li, Mg, Mn, Na, Ni, Pb, Se, Sr, Te, Tl, Zn) in 2 % dilute nitric acid.
ICPMS 2030 Shimadzu Inductively coupled plasma mass spectrometry system for multi-element analysis of digested samples.
ICP-MS Tuning Solution A CarlRoth GmbH + Co.KG 250 mL tuning solution containing 6 elements (Be, Bi, Ce, Co, In, Mn) in 1 % nitric acid.
KIMTECH Purple Nitrile gloves Kimberly-Clark GmbH Disposable Purple Nitrile gloves (S, M or L).
Laboratory coat Any available supplier /
Mixer B-400 BÜCHI Labortechnik AG, Flawil, Switzerland Laboratory mixer with ceramic blades.
Nitric acid ThermoFisher Scientific 7697-37-2 Nitric acid, trace analysis grade, 68 wt%, density 1.42, Primar Plus, For Trace Metal Analysis.
Plastic centrifuge tubes Isolab 50 mL plastic centrifuge tubes with screw caps, single use.
Plastic syringes Injekt B. Braun 2 pice, single use 20 mL syringes.
Plastic tubes for autosampler Shimadzu 046-00147-04 Plastic tubes for autosampler, 15 mL capacity, 16 mm diameter, 100 mm length.
Plastic waste containers Plastic containers for the removal of chemicals after the cleaning procedure of reaction vessels.
Protective googles /
Samples (broccoli, sausage, noodles, zucchini, mushrooms) Fresh samples, which were dried to a constant weight and homogenized during the procedure. The samples were purchased from a local shop.
Spatula Plastic spatula.
Sterilizator Instrumentaria ST 01/02 Instrumentaria Dryer with adjustable temperature.
Syringe filters CHROMAFIL Xtra 729212 Syringe filters with polypropylene housing and polyamide hydrophilic membrane. Membrane diameter 25 mm, membrane pore size 0.2 µm.
Ultrapure water ELGA Labwater, Veolia Water Technologies. Ultrapure water with a resistivity of 18.2 MΩcm, obtained with laboratory water purification system.
Volumetric flasks 25 mL glass volumetric flasks.

References

  1. Catenza, K. F., Donkor, K. K. Determination of heavy metals in cannabinoid-based food products using microwave-assisted digestion and ICP-MS. Food Analytical Methods. 15, 2537-2546 (2022).
  2. Güven, D. E., Akinci, G. Comparison of acid digestion techniques to determine heavy metals in sediment and soil samples. Gazi University Journal of Science. 24, 29-34 (2011).
  3. Soós, &. #. 1. 9. 3. ;., Bódi, &. #. 2. 0. 1. ;., Várallyay, S., Molnár, S., Kovács, B. Microwave-assisted sample preparation of hungarian raw propolis in quartz vessels and element analysis by ICP-OES and ICP-MS for geographical identification. Talanta. 233, 122613 (2021).
  4. De Oliveira, A. F., Da Silva, C. S., Bianchi, S. R., Nogueira, A. R. A. The use of diluted formic acid in sample preparation for macro- and microelements determination in foodstuff samples using ICP-OES. Journal of Food Composition and Analysis. 66, 7-12 (2018).
  5. Moor, C., Lymberopoulou, T., Dietrich, V. J. Determination of heavy metals in soils, sediments and geological materials by ICP-AES and ICP-MS. Microchimica Acta. 136 (3), 123-128 (2001).
  6. Kuznetsova, O. V., Burmii, Z. P., Orlova, T. V., Sevastyanov, V. S., Timerbaev, A. R. Quantification of the diagenesis-designating metals in sediments by ICP-MS: Comparison of different sample preparation methods. Talanta. 200, 468-471 (2019).
  7. Buechler, D. T., et al. Comprehensive elemental analysis of consumer electronic devices: Rare earth, precious, and critical elements. Waste Management. 103, 67-75 (2020).
  8. Riisom, M., Gammelgaard, B., Lambert, I. H., Stürup, S. Development and validation of an ICP-MS method for quantification of total carbon and platinum in cell samples and comparison of open-vessel and microwave-assisted acid digestion methods. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 158, 144-150 (2018).
  9. Stricker, A., et al. Impurities in commercial titanium dental implants – a mass and optical emission spectrometry elemental analysis. Dental Materials. 38 (8), 1395-1403 (2022).
  10. Bressy, F. C., Brito, G. B., Barbosa, I. S., Teixeira, L. S. G., Korn, M. G. A. Determination of trace element concentrations in tomato samples at different stages of maturation by ICP-OES and ICP-MS following microwave-assisted digestion. Microchemical Journal. 109, 145-149 (2013).
  11. Lachas, H., et al. Determination of 17 trace elements in coal and ash reference materials by ICP-MS applied to milligram sample sizes. Analyst. 124 (2), 177-184 (1999).
  12. Meermann, B., Nischwitz, V. ICP-MS for the analysis at the nanoscale-a tutorial review. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 33 (9), 1432-1468 (2018).
  13. Lemos, M. S., Dantas, K. G. F. Evaluation of the use of diluted formic acid in sample preparation for elemental determination in crustacean samples by mip oes. Biological Trace Element Research. 201 (7), 3513-3519 (2022).
  14. Mohammed, E., Mohammed, T., Mohammed, A. Optimization of acid digestion for the determination of hg, as, se, sb, pb and cd in fish muscle tissue. MethodsX. 4, 513-523 (2017).
  15. Sobhanardakani, S., Tayebi, L., Farmany, A., Cheraghi, M. Analysis of trace elements (cu, cd, and zn) in the muscle, gill, and liver tissues of some fish species using anodic stripping voltammetry. Environmental Monitoring and Assessment. 184 (11), 6607-6611 (2012).
  16. Ostapczuk, P., Valenta, P., Rützel, H., Nürnberg, H. Application of differential pulse anodic stripping voltammetry to the determination of heavy metals in environmental samples. Science of The Total Environment. 60, 1-16 (1987).
  17. Gamela, R. R., Costa, V. C., Sperança, M. A., Pereira-Filho, E. R. Laser-induced breakdown spectroscopy (libs) and wavelength dispersive x-ray fluorescence (wdxrf) data fusion to predict the concentration of k, mg and p in bean seed samples. Food Research International. 132, 109037 (2020).
  18. Hu, Z., Qi, L., Holland, H. D., Turekian, K. K. . Treatise on geochemistry (second edition). , 87-109 (2014).
  19. Ojeda, C. B., Rojas, F. S., Worsfold, P., Poole, C., Townshend, A., Miró, M. . Encyclopedia of analytical science (third edition). , 85-97 (2019).
  20. Bizzi, C. A., Nóbrega, J. A., Barin, J. S., Flores, &. #. 2. 0. 1. ;. M. d. M. . Microwave-assisted sample preparation for trace element analysis. , 179-204 (2014).
  21. Twyman, R. M., Worsfold, P., Townshend, A., Poole, C. . Encyclopedia of analytical science (second edition). , 146-153 (2005).
  22. Traversa, L. C., et al. Closed-vessel conductively heated digestion system for the elemental analysis of agricultural materials by high-resolution continuum source flame atomic absorption spectrometry (hr-cs faas). Analytical Letters. 56 (15), 2443-2456 (2023).
  23. Rondan, F. S. Determination of se and te in coal at ultra-trace levels by ICP-MS after microwave-induced combustion. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 34 (5), 998-1004 (2019).
  24. Muller, E. I., et al. Microwave-assisted wet digestion with H2O2 at high temperature and pressure using single reaction chamber for elemental determination in milk powder by ICP-OES and ICP-MS. Talanta. 156 – 157, 232-238 (2016).
  25. Pardinho, R. B., et al. Determination of toxic elements in yerba mate by ICP-MS after diluted acid digestion under O2 pressure. Food Chemistry. 263, 37-41 (2018).
  26. Barela, P. S., et al. Microwave-assisted digestion using diluted nitric acid for further trace elements determination in biodiesel by sf-ICP-MS. Fuel. 204, 85-90 (2017).
  27. Müller, E. I., Mesko, M. F., Moraes, D. P., Korn, M. D. G. A., Flores, &. #. 2. 0. 1. ;. M. M., Flores, &. #. 2. 0. 1. ;. M. d. M. . Microwave-assisted sample preparation for trace element analysis. , 99-142 (2014).
  28. Das, S., Ting, Y. -. P. Evaluation of wet digestion methods for quantification of metal content in electronic scrap material. Resources. 6 (4), 64 (2017).
  29. Nóbrega, J. A., et al. Microwave-assisted digestion of organic samples: How simple can it become. Talanta. 98, 272-276 (2012).
  30. Bizzi, C. A., et al. Evaluation of oxygen pressurized microwave-assisted digestion of botanical materials using diluted nitric acid. Talanta. 83 (5), 1324-1328 (2011).
  31. Da Silva, I. J. S., Lavorante, A. F., Paim, A. P. S., Da Silva, M. J. Microwave-assisted digestion employing diluted nitric acid for mineral determination in rice by ICP-OES. Food Chemistry. 319, 126435 (2020).
  32. Bizzi, C. A., Flores, E. M. M., Barin, J. S., Garcia, E. E., Nóbrega, J. A. Understanding the process of microwave-assisted digestion combining diluted nitric acid and oxygen as auxiliary reagent. Microchemical Journal. 99 (2), 193-196 (2011).
  33. Le Gresley, A., Ampem, G., De Mars, S., Grootveld, M., Naughton, D. P. 34;Real-world" evaluation of lipid oxidation products and trace metals in french fries from two chain fast-food restaurants. Frontiers in Nutrition. 8, 620952 (2021).
  34. Kutscher, D., Cui, J., Cojocariu, C. Key steps to create a sample preparation strategy for inductively coupled plasma (ICP) or ICP-mass spectrometry (ICP-MS) analysis. Spectroscopy. 37 (1), 38-42 (2022).
  35. Mccurdy, E., Proper, W. Improving ICP-MS analysis of samples containing high levels of total dissolved solids. Spectroscopy. 29 (11), 14 (2014).
  36. . Membrane filtration: How to choose the appropriate filter material for every sample Available from: https://www.cytivalifesciences.com/en/us/solutions/lab-filtration/knowledge-center/membrane-filtration-choosing-the-correct-type-of-filter (2023)
  37. May, T. W., Wiedmeyer, R. H. A table of polyatomic interferences in ICP-MS. Atomic Spectroscopy-Norwalk Connecticut. 19, 150-155 (1998).
  38. Taleuzzaman, M. Limit of blank (lob), limit of detection (lod), and limit of quantification (loq). Organic & Medicinal Chemistry International Journal. 7 (5), 127-131 (2018).
  39. Willner, J., et al. A versatile approach for the preparation of matrix-matched standards for la-ICP-MS analysis – standard addition by the spraying of liquid standards. Talanta. 256, 124305 (2023).
  40. Green, J. M. Peer reviewed: A practical guide to analytical method validation. Analytical Chemistry. 68 (9), 305A-309A (1996).
  41. Xu, J., et al. A critical view on spike recovery for accuracy evaluation of analytical method for medicinal herbs. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 62, 210-215 (2012).
  42. Massart, D. L., et al. . Handbook of chemometrics and qualimetrics: Part a. , (1998).
  43. UNOO. . Guidance for the validation of analytical methodology and calibration of equipment used for testing of illicit drugs in seized materials and biological specimens: A commitment to quality and continuous improvement. , (2009).
  44. Berben, G., et al. Guidelines for sample preparation procedures in GMO analysis. Publications Office of the European Union. EUR27021, JRC94042 (2014).
  45. Lacorte, S., Bono-Blay, F., Cortina-Puig, M., Pawliszyn, J. . Comprehensive sampling and sample preparation. , 65-84 (2012).
  46. Kaur, G. J., Orsat, V., Singh, A. An overview of different homogenizers, their working mechanisms and impact on processing of fruits and vegetables. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 63 (14), 2004-2017 (2021).
  47. Baudelaire, E. D., Bhandari, B., Bansal, N., Zhang, M., Schuck, P. . Handbook of food powders. , 132-149 (2013).
  48. Jung, H., Lee, Y. J., Yoon, W. B. Effect of moisture content on the grinding process and powder properties in food: A review. Processes. 6 (6), 69 (2018).
  49. Krejčová, A., Pouzar, M., Černohorský, T., Pešková, K. The cryogenic grinding as the important homogenization step in analysis of inconsistent food samples. Food Chemistry. 109 (4), 848-854 (2008).
  50. Balasubramanian, S., Gupta, M. K., Singh, K. Cryogenics and its application with reference to spice grinding: A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 52, 781-794 (2012).
  51. Potočnik, D., Jagodic Hudobivnik, M., Mazej, D., Ogrinc, N. Optimization of the sample preparation method for determination of multi-elemental composition in fruit samples by ICP-MS analysis. Measurement: Sensors. 18, 100292 (2021).
  52. DINEN ISO. . Theory of sample preparation using acid digestion, pressure digestion and microwave digestion (microwave decomposition). , (1972).
  53. Bizzi, C. A., Barin, J. S., Oliveira, J. S., Cravotto, G., Flores, E. M. Microwave-assisted oxidation of organic matter using diluted hno 3 under o 2 pressure: Rationalization of the temperature gradient effect for acid regeneration. Journal of the Brazilian Chemical Society. 28, 1673-1681 (2017).
  54. Castro, J. T., et al. A critical evaluation of digestion procedures for coffee samples using diluted nitric acid in closed vessels for inductively coupled plasma optical emission spectrometry. Talanta. 78 (4), 1378-1382 (2009).
  55. Ju, T., Han, S., Meng, Y., Song, M., Jiang, J. Occurrences and patterns of major elements in coal fly ash under multi-acid system during microwave digestion processes. Journal of Cleaner Production. 359, 131950 (2022).
  56. Matusiewicz, H. . Comprehensive analytical chemistry. 41, 193-233 (2003).
  57. Sheng, P. P., Etsell, T. H. Recovery of gold from computer circuit board scrap using aqua regia. Waste Management & Research. 25 (4), 380-383 (2007).
  58. Sucharova, J., Suchara, I. Determination of 36 elements in plant reference materials with different si contents by inductively coupled plasma mass spectrometry: Comparison of microwave digestions assisted by three types of digestion mixtures. Analytica Chimica Acta. 576, 163-176 (2006).
  59. Santos, H. M., et al. Microwave-assisted digestion using diluted HNO3 and H2O2 for macro and microelements determination in guarana samples by ICP-OES. Food Chemistry. 273, 159-165 (2019).
  60. Usepa, E. Method 3052: Microwave assisted acid digestion of siliceous and organically based matrices. United States Environmental Protection Agency, Washington, DC USA. , (1996).
  61. Elemental analysis manual, 4.7 inductively coupled plasma-mass spectrometric determination of arsenic, cadmium, chromium, lead, mercury, and other elements in food using microwave assisted digestion. Available from: https://s27415.pcdn.co/wp-content/uploads/2020/01/64ER20-7/Heavy_Metals/1-FDA-EAM-4.7-Inductively-Coupled-Plasma-MS-Determination-of-Arsenic-Cadmium-Chromium-Lead-Mercury-etc.pdf (2015)
  62. Leme, A. B. P., Bianchi, S. R., Carneiro, R. L., Nogueira, A. R. A. Optimization of sample preparation in the determination of minerals and trace elements in honey by ICP-MS. Food Analytical Methods. 7 (5), 1009-1015 (2014).
  63. Vanhoe, H., Goossens, J., Moens, L., Dams, R. Spectral interferences encountered in the analysis of biological materials by inductively coupled plasma mass spectrometry. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 9, 177-185 (1994).
  64. Loula, M., Kaňa, A., Mestek, O. Non-spectral interferences in single-particle ICP-MS analysis: An underestimated phenomenon. Talanta. 202, 565-571 (2019).
  65. Muller, C. C. Feasibility of nut digestion using single reaction chamber for further trace element determination by ICP-OES. Microchemical Journal. 116, 255-260 (2014).
  66. Muller, A. L. H., Oliveira, J. S. S., Mello, P. A., Muller, E. I., Flores, E. M. M. Study and determination of elemental impurities by ICP-MS in active pharmaceutical ingredients using single reaction chamber digestion in compliance with usp requirements. Talanta. 136, 161-169 (2015).
  67. Duarte, F. A., et al. Microwave-induced combustion in disposable vessels: A novel perspective for sample digestion. Analytical Chemistry. 92 (12), 8058-8063 (2020).
  68. Novaes, C. G., et al. A review of multivariate designs applied to the optimization of methods based on inductively coupled plasma optical emission spectrometry (ICP-OES). Microchemical Journal. 128, 331-346 (2016).
  69. Damak, F., Asano, M., Baba, K., Ksibi, M., Tamura, K. Comparison of sample preparation methods for multielements analysis of olive oil by ICP-MS. Methods and Protocols. 2 (3), 72 (2019).
  70. Thomas, R. . Practical guide to ICP-MS: A tutorial for beginners. , (2013).
  71. Yamada, N. Kinetic energy discrimination in collision/reaction cell ICP-MS: Theoretical review of principles and limitations. Spectrochimica Acta Part B: Atomic Spectroscopy. 110, 31-44 (2015).
  72. The 30-minute guide to ICP-MS. Perkin Elmer, Shelton CT Available from: https://resources.perkinelmer.com/corporate/cmsresources/images/44-74849tch_icpmsthirtyminuteguide.pdf (2001)
  73. Gonzálvez, A., Armenta, S., Pastor, A., De La Guardia, M. Searching the most appropriate sample pretreatment for the elemental analysis of wines by inductively coupled plasma-based techniques. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56 (13), 4943-4954 (2008).
  74. Lum, T. -. S., Leung, K. . S. -. Y. Strategies to overcome spectral interference in ICP-MS detection. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. 31 (5), 1078-1088 (2016).
  75. Agatemor, C., Beauchemin, D. Matrix effects in inductively coupled plasma mass spectrometry: A review. Analytica Chimica Acta. 706 (1), 66-83 (2011).
  76. Melaku, S., Dams, R., Moens, L. Determination of trace elements in agricultural soil samples by inductively coupled plasma-mass spectrometry: Microwave acid digestion versus aqua regia extraction. Analytica Chimica Acta. 543 (1), 117-123 (2005).

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Rantaša, M., Majer, D., Finšgar, M. Preparation of Food Samples Using Homogenization and Microwave-Assisted Wet Acid Digestion for Multi-Element Determination with ICP-MS. J. Vis. Exp. (202), e65624, doi:10.3791/65624 (2023).

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