ここでは、組織相互作用、4Dイメージング、タイムラプス動画(3Dプラス時間)、分子機能のグローバルまたはローカル摂動、およびシステム生物学の特性評価を調べるために使用できる3種類の鳥類胚性皮膚外植片培養のプロトコルについて説明します。
胚発生中の鳥類の皮膚の発達は、組織のパターン形成に関する貴重な洞察を提供できるユニークなモデルです。ここでは、皮膚の発達のさまざまな側面を調べるための皮膚外植片培養の3つのバリエーションについて説明します。まず、 生体外 臓器の培養と操作により、研究者は羽芽の発達を直接観察し研究する機会を得ることができます。皮膚外植片培養は7日間成長するため、この成長期間中、細胞の挙動を直接分析し、間隔を空けて4Dイメージングを行うことができます。これにより、培養条件の物理的および分子的な操作が可能になり、組織の応答を視覚化することもできます。例えば、成長因子でコーティングされたビーズを局所的に適用して、限られた領域での羽毛パターンの変化を誘導することができます。あるいは、ウイルス形質導入を培地でグローバルに導入し、遺伝子発現をアップレギュレーションまたはダウンレギュレーションすることもできます。第二に、皮膚組換えプロトコルにより、研究者は、異なる皮膚領域、異なるライフステージ、または異なる種に由来する表皮と間葉との間の組織相互作用を調査することができます。これにより、上皮が信号に応答する能力を持つ時間枠と、さまざまな間葉系源からの信号に応答してさまざまな皮膚付属器を形成する能力をテストする機会が得られます。第三に、解離した真皮細胞に無傷の上皮を重ねて皮膚を再構成すると、皮膚の発達がリセットされ、周期的なパターン形成の初期過程の研究が可能になります。このアプローチは、再構成された皮膚外植片を作成する前に、解離した細胞間の遺伝子発現を操作する能力も強化します。この論文では、3つの培養プロトコルと、その有用性を実証するための例示的な実験を提供します。
鳥類の胚の皮膚発生は、明確なパターンとマイクロサージェリーおよび操作へのアクセスのしやすさから、形態形成のメカニズムを研究するための優れたモデルです1,2。しかし、無傷の組織における細胞イベントや分子イベントの評価は、外部組織の存在が顕微鏡観察を複雑にする可能性があるため、困難な場合があります。さらに、遺伝子発現を操作して皮膚の形態形成における遺伝子の役割を検証する能力は、必ずしも簡単な作業ではありません。私たちは、レトロウイルス形質導入を使用して遺伝子機能をテストでき、皮膚外植片モデルを使用してより高い成功率でテストできることを発見しました。ここでは、開発された3つのスキンエクスプラントモデルの利点について説明します。
鳥類胚性皮膚培養は、皮膚の羽芽発生中の細胞の挙動、遺伝子調節、および機能を評価するための強力なシステムです3,4,5,6。これにより、培地に配置された成長因子の全球的な添加または成長因子でコーティングされたビーズからの局所的な放出を通じて、羽芽発生の分子メカニズムの評価が可能になります。発生制御遺伝子は、特定の形態形成イベントにおけるそれらの役割を評価する機能研究のために、無傷またはドミナントネガティブ型のウイルス遺伝子導入を使用して操作することもできます7,8。
鳥類の上皮間葉組換え培養 により、研究者は皮膚形態形成の初期段階における各皮膚成分の寄与を判断できます。Rawlesによるこのアプローチの使用により、間葉と上皮との間の相互作用が皮膚付属器の形成に不可欠であることが明らかになった9。間葉は凝縮を形成する可能性があり、上皮は間葉系凝縮形成を誘導および維持するために必要です2。その後、このアプローチは、 スケールレス ニワトリが羽毛を形成できない理由を評価するために使用されました。この欠陥は間葉10にあることが発見されました。Dhouaillyは、異なる種の胚で組織上皮間葉系組換え研究を実施しました。これらの研究は、皮膚の形態形成を促進する上皮間葉系コミュニケーションに関する発生的および進化的洞察を提供しました3。
この研究は、羽毛の成長を制御する要因をよりよく理解するために使用されました。また、この手法は、羽毛の開始、発生、および前後軸に沿った伸長中に起こる皮膚のパターン形成に関与する細胞および分子イベントの可視化を改善します。上皮が間葉から分離され、2つの成分が再結合されると、新しい相互作用が皮膚のパターンを再確立します。このアプローチにより、間葉系誘導シグナルと、表皮が間葉系シグナルに応答することを可能にする上皮能力分子を評価することができる11。また、羽芽の発達やパターン形成に必要なその後の下流の分子発現も調べることができます。これらの研究により、芽の位置は間葉によって制御されていることが確立されました。間葉と組換える前の上皮90° の回転は、羽芽の伸びの方向が上皮によって制御されていることを示しています。この方法は、羽芽の向きを制御する分子機構を研究するために不可欠でした12。
鳥類の皮膚再構成培養は、皮膚間葉を解離させてから高細胞密度でプレーティングし、無傷の上皮で覆うもので、真皮細胞を原始状態にリセットします。その後、外植片は自己組織化して、前の手がかり13から独立した新しい周期パターンを形成する。この皮膚再構成モデルは、羽毛の周期的パターン形成の初期過程を研究するために使用できます。このアプローチを使用して、間葉系細胞と1つの上皮細胞の比率を調節することが、羽芽のサイズまたは数にどのように影響するかを調査しました。芽の数は増加することがわかりましたが、間葉系細胞の比率が増加するにつれて芽のサイズは増加しないことがわかりました。このアプローチのもう一つの利点は、間葉系細胞のウイルス形質導入が他の2つの培養条件よりも高い効率を示し、より明白な表現型を産生できることです。
組織組換えは、上皮と間葉のユニークな寄与を探求するためのアッセイを提供します。ニワトリでは、羽毛は胚の7日目(E7)に発達し始め、鱗はE9から始まります。E9スケール間葉がE7羽毛上皮と再結合されると、再結合された組織は鱗屑を形成し、E7フェザー間葉がE9スケール上皮と再結合されると、羽毛が形成される11。これらの研究は、間葉がパターン形成、間隔、および?…
The authors have nothing to disclose.
この研究は、NIH NIAMS grant R37 AR 060306、R01 AR 047364、および RO1 AR078050 によってサポートされています。この研究は、USCと台湾の中国医科大学との間の共同研究契約によってもサポートされています。USC BISC 480 Developmental Biology 2023 クラスが、いくつかのラボモジュールでこの鳥類皮膚培養プロトコルのテストに成功してくれたことに感謝します。
6-well culture dish | Falcon | REF 353502 | Air-Liquid Interface (ALI) Cultures |
Cell culture inset | Falcon | REF 353090. | 0.4 µm Transparent PET Membrane |
Collagenase Type 1 | Worthington Biochemical | LS004196 | |
Dulbecco’s modified Eagle’s medium | Corning | 10-013-CV | 4.5 g/L glucose |
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate (EDTA) | Sigma-Aldrich | E5134 | |
Fetal bovine serum | ThermoFisher | 16140-071 | |
Glucose | Sigma-Aldrich | G8270 | |
Hanks’s buffered saline solution | Gibco | 14170-112 | No calcium, no magnesium |
Penicillin/streptomycin | Gibco | 15-140-122 | |
Pogassium phosphate monobasic (KH2PO4) | Sigma-Aldrich | P5379 | |
Potassium chloride (KCl) | Sigma-Aldrich | P9333 | |
Sodium bicarbonate (NaHCO3) | Sigma-Aldrich | S6014 | |
Sodium chloride (Nacl) | EMD | CAS 7647-14-5 | |
Sodium phosphate monobasic (NaH2PO4) | Sigma-Aldrich | S0751 | |
Trypsin | Gibco | 27250-042 |