Waterstofperoxide (H2O2) is zowel een bron van oxidatieve schade als een signaalmolecuul. Dit protocol beschrijft hoe mitochondriale H 2 O2kan worden gemeten met behulp van mitochondriën-gerichte HyPer7 (mtHyPer7), een genetisch gecodeerde ratiometrische biosensor, in levende gist. Het beschrijft hoe beeldvormingsomstandigheden kunnen worden geoptimaliseerd en kwantitatieve cellulaire en subcellulaire analyses kunnen worden uitgevoerd met behulp van vrij beschikbare software.
Mitochondriale disfunctie, of functionele verandering, wordt aangetroffen bij veel ziekten en aandoeningen, waaronder neurodegeneratieve en musculoskeletale aandoeningen, kanker en normale veroudering. Hier wordt een benadering beschreven om de mitochondriale functie in levende gistcellen te beoordelen bij cellulaire en subcellulaire resoluties met behulp van een genetisch gecodeerde, minimaal invasieve, ratiometrische biosensor. De biosensor, mitochondriëngericht HyPer7 (mtHyPer7), detecteert waterstofperoxide (H 2 O2) in mitochondriën. Het bestaat uit een mitochondriale signaalsequentie die is gefuseerd met een circulair gepermuteerd fluorescerend eiwit en het H2O2-responsieve domein van een bacterieel OxyR-eiwit. De biosensor wordt gegenereerd en geïntegreerd in het gistgenoom met behulp van een CRISPR-Cas9-markervrij systeem, voor een consistentere expressie in vergelijking met door plasmiden overgedragen constructies.
mtHyPer7 is kwantitatief gericht op mitochondriën, heeft geen detecteerbaar effect op de groeisnelheid van gist of mitochondriale morfologie, en biedt een kwantitatieve uitlezing voor mitochondriaal H 2 O2 onder normale groeiomstandigheden en bij blootstelling aan oxidatieve stress. Dit protocol legt uit hoe de beeldvormingsomstandigheden kunnen worden geoptimaliseerd met behulp van een confocaal microscoopsysteem met draaiende schijf en hoe kwantitatieve analyses kunnen worden uitgevoerd met behulp van vrij beschikbare software. Deze tools maken het mogelijk om rijke spatiotemporele informatie over mitochondriën te verzamelen, zowel binnen cellen als tussen cellen in een populatie. Bovendien kan de hier beschreven workflow worden gebruikt om andere biosensoren te valideren.
Mitochondriën zijn essentiële eukaryote cellulaire organellen die bekend staan om hun functie bij het produceren van ATP door oxidatieve fosforylering en elektronentransport. Bovendien zijn mitochondriën plaatsen voor calciumopslag, de synthese van lipiden, aminozuren, vetzuren en ijzer-zwavelclusters en signaaltransductie 2,3. Binnen cellen vormen mitochondriën een dynamisch netwerk met karakteristieke morfologie en distributie, die varieert afhankelijk van het celtype en de metabolische toestand. Bovendien, hoewel mitochondriën kunnen samensmelten en delen, zijn niet alle mitochondriën in een cel gelijkwaardig. Talrijke studies hebben de functionele heterogeniteit van mitochondriën binnen individuele cellen gedocumenteerd in attributen zoals membraanpotentiaal en oxidatieve toestand 4,5,6. Deze variatie in mitochondriale functie is gedeeltelijk te wijten aan schade aan het organel door mtDNA-mutaties (die sneller optreden dan in nucleair DNA) en aan oxidatieve schade door reactieve zuurstofsoorten (ROS) die zowel binnen als buiten het organel worden gegenereerd 7,8,9. Schade aan het organel wordt beperkt door mitochondriale kwaliteitscontrolemechanismen die de schade herstellen of mitochondriën elimineren die onherstelbaar beschadigd zijn10.
Waterstofperoxide (H 2O2) is een reactieve zuurstofsoort die een bron is van oxidatieve schade aan cellulaire eiwitten, nucleïnezuren en lipiden. H2O2 dient echter ook als een signaalmolecuul dat cellulaire activiteiten reguleert door de omkeerbare oxidatie van thiolen in doeleiwitten11,12. H 2 O2wordt geproduceerd uit elektronen die lekken uit de mitochondriale elektronentransportketen en door specifieke enzymen, zoals NADPH-oxidase en monoamine-oxidasen 13,14,15,16,17,18,19,20. Het wordt ook geïnactiveerd door antioxidantsystemen, waaronder die op basis van thioredoxine en glutathion21,22,23. Analyse van mitochondrialeH2O 2-spiegels is dus van cruciaal belang voor het begrijpen van de rol van deze metaboliet in de normale mitochondriale en cellulaire functie en onder omstandigheden van oxidatieve stress.
Het algemene doel van dit protocol is om mitochondriaal H 2 O 2 te detecteren met behulp van een genetisch gecodeerde ratiometrische H 2 O2 biosensor, HyPer7, die gericht is op het organel (mtHyPer7). mtHyPer7 is een chimaera die bestaat uit de mitochondriale signaalsequentie van ATP9 (de Su9-presequentie), een circulair gepermuteerde vorm van groen fluorescerend eiwit (GFP), en het H 2 O2-bindendedomein van het OxyR-eiwit van Neisseria meningitidis24 (Figuur 1). In circulair gepermuteerd GFP worden de N- en C-termini van native GFP gefuseerd en worden nieuwe termini gevormd in de buurt van de chromofoor, die een grotere mobiliteit aan het eiwit en een grotere labiliteit van zijn spectrale kenmerken geven in vergelijking met native GFP25. De interactie van het OxyR-domein van mtHyPer7 met H 2 O 2 is zeer affiniteit, H 2 O2-selectief en leidt tot omkeerbare oxidatie van de geconserveerde cysteïneresiduen en de vorming van disulfidebruggen. Conformatieveranderingen geassocieerd met de oxidatie van OxyR worden overgebracht naar het circulair gepermuteerde GFP in mtHyPer7, wat resulteert in een spectrale verschuiving in het excitatiemaximum van de mtHyPer7-chromofoor van 405 nm in gereduceerde toestand tot 488 nm in de H 2 O2-geoxideerde toestand26. De verhouding tussen fluorescentie van mtHyPer7 als reactie op excitatie bij 488 nm versus 405 nm weerspiegelt dus de oxidatie van de sonde door H 2 O2.
Idealiter zou een biosensor een real-time, absolute, kwantitatieve uitlezing van zijn doelmolecuul moeten geven. Helaas is dit echter niet altijd mogelijk in metingen in de praktijk. In het geval van oxidatiesensoren, zoals mtHyPer7, wordt de real-time uitlezing beïnvloed door de reductiesnelheid van de disulfidebrug. De reductiesystemen die door ROS-biosensoren worden gebruikt, verschillen, en deze kunnen de dynamiek van de sonderespons drastisch veranderen, zoals blijkt uit de vergelijking van HyPer7, gereduceerd door het thioredoxinesysteem, en roGFP2-Tsa2ΔCR, gereduceerd door glutathion-in gistcytosol27. Om een conclusie te trekken over de relatieve H2O2-concentratieuit mtHyPer7-verhoudingen, moet men dus aannemen dat het reductiesysteem tijdens het experiment een constante capaciteit handhaaft. Niettegenstaande deze overwegingen zijn HyPer7 en verwante sondes in verschillende contexten gebruikt om informatie te verkrijgen over H 2 O2in levende cellen25,28,29.
Figuur 1: Ontwerp, moleculair mechanisme en excitatie/emissiespectra vande H 2 O2 biosensor mtHyPer7. (A) De mtHyPer7-sonde wordt afgeleid door circulair gepermuteerd GFP in het OxyR-RD-domein in te brengen van Neisseria meningitidis. Het bevat de mitochondriale targetingsequentie van subeenheid 9 van de ATP-synthase van Neurospora crassa (Su9). (B) Illustratie van het H 2 O2-detectiemechanismevan mtHyPer7. Oxidatie van cysteïnen in het RD-domein verhoogt de fluorescentie-emissie bij excitatie bij 488 nm en vermindert de emissie geproduceerd door excitatie bij 405 nm. (C) Excitatie- en emissiespectra van HyPer7 in geoxideerde en gereduceerde vorm. Deze figuur is overgenomen met toestemming van Pak et al.24. Afkortingen: GFP = groen fluorescerend eiwit; cpGFP = circulair gepermuteerd GFP. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Deze ratiometrische beeldvorming van mtHyPer7 biedt belangrijke voordelen voor mitochondrialeH2O2 kwantificering24,27; Het biedt een interne controle voor de sondeconcentratie. Bovendien is de verschuiving van de excitatiepiek die wordt veroorzaaktdoor blootstelling aan H2 O2 niet volledig, zelfs niet bij verzadigingsconcentraties van H2O2. Ratio-beeldvorming kan dus de gevoeligheid verhogen door twee spectrale punten in de analyse op te nemen.
De mtHyPer7-sonde die hier wordt gebruikt, heeft een zeer hoge affiniteit voor H 2 O2en een relatief lage gevoeligheid voor pH24, en is met succes gericht op Caenorhabditis elegans mitochondriën30. Dit eiwit is ook gebruikt in gist27,31. Eerdere studies waren echter gebaseerd op plasmide-gedragen expressie van mtHyPer7, wat resulteert in cel-tot-cel variabiliteit in sonde-expressie27. Bovendien werd het construct dat in dit protocol wordt beschreven, geïntegreerd in een geconserveerd, genvrij gebied op chromosoom X32 met behulp van een op CRISPR gebaseerde benadering voor markervrije integratie. De expressie van het geïntegreerde biosensorgen wordt ook gecontroleerd door de sterke constitutieve TEF1-promotor (Figuur 2). Als gevolg hiervan is er een stabielere, consistentere expressie van de biosensor in gistcelpopulaties in vergelijking met die waargenomen met behulp van plasmide-gedragen biosensorexpressie, en kunnen cellen met de biosensor worden vermeerderd zonder dat selectieve media nodig zijn.
Figuur 2: Generatie van mtHyPer7-expressieve cellen door CRISPR. Het Cas9- en sgRNA-bevattende plasmide (YN2_1_LT58_X2site) en PCR-geamplificeerde mtHyPer7-bevattende biosensorconstruct worden in ontluikende gistcellen geïntroduceerd door transformatie van lithiumacetaat. De genvrije insertieplaats op chromosoom X (X2) wordt herkend en geknipt door Cas9-eiwit met het sgRNA, en de biosensor wordt geïntegreerd in het genoom door homologe recombinatie. Na identificatie van de succesvolle transformanten door microscopische screening, kolonie-PCR en sequencing, wordt het Cas9-plasmide verwijderd (genezen) door groei in niet-selectieve media. Afkortingen: sgRNA = single guide RNA; TEF = transcriptieversterker. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.
Tot slot biedt mtHyPer7 voordelen ten opzichte van andere ROS-biosensoren. Organische kleurstoffen die worden gebruikt om ROS te detecteren (bijv. dihydroethidium [DHE]2 en MitoSOX3) kunnen bijvoorbeeld ongelijkmatige of niet-specifieke kleuring veroorzaken en worden vaak geleverd in oplosmiddelen zoals ethanol of dimethylsulfoxide, waarvoor aanvullende controles op oplosmiddeleffecten nodig zijn. Een andere klasse van ROS-biosensoren zijn biosensoren op basis van fluorescentieresonantie-energieoverdracht (FRET) (bijv. Redoxfluor voor cellulaire redoxtoestand4 en de peroxidesensoren HSP-FRET5, OxyFRET 6 en PerFRET6). Deze sondes zijn genetisch gecodeerd en in principe zeer gevoelig en kunnen kwantitatief worden gericht op mitochondriën met behulp van goed gekarakteriseerde mitochondriale signaalsequenties. Er zijn echter uitdagingen bij het gebruik van FRET-gebaseerde sondes, waaronder achtergrond als gevolg van cross-excitatie en bleed-through, en strenge eisen voor de nabijheid en oriëntatie van de fluoroforen om FRET te laten optreden33,34. Bovendien bestaan FRET-sondes uit twee fluorescerende eiwitten die grotere constructen nodig hebben voor expressie in cellen van belang in vergelijking met spectra-verschuivende sondes. Het hier beschreven protocol is ontwikkeld om te profiteren van de sterke punten van de op HyPer7 gebaseerde biosensor en om deze compacte, ratiometrische, genetisch gecodeerde sonde met hoge affiniteit te gebruiken voor kwantitatieve beeldvorming van peroxide in mitochondriën in levende gist.
In dit protocol wordt een methode beschreven voor het gebruik van mtHyPer7 als biosensor om mitochondriale H 2 O2in levende ontluikende gistcellen te beoordelen. De biosensor wordt geconstrueerd met behulp van een op CRISPR gebaseerde methode en geïntroduceerd in een geconserveerd genvrij gebied in het gistgenoom zonder het gebruik van selecteerbare markers. Vergeleken met door plasmiden overgedragen biosensoren, worden geïntegreerde biosensoren in alle cellen en op consistente niveaus tot expressie gebracht, wat betrouwbaardere kwantificeringsresultaten oplevert. Er worden geen selecteerbare markers gebruikt om mtHyPer7-expressieve cellen te genereren, wat het gebruik van een breder scala aan stamachtergronden mogelijk maakt en de genetische modificatie van cellen met biosensorexpressie vergemakkelijkt. Het mtHyPer7-eiwit is correct gericht op mitochondriën zonder merkbare effecten op de mitochondriale morfologie, functie, distributie of cellulaire groeisnelheid. mtHyPer7 vertoont een dosisafhankelijke respons op extern toegevoegde H 2 O2. Bovendien is mtHyPer7 in staat om te rapporteren over de heterogeniteit van mitochondriale kwaliteit met subcellulaire resolutie. Ten slotte veroorzaakt het gebruik van een confocale microscoop met draaiende schijf in tegenstelling tot breedveldmicroscopie voor het afbeelden van mitochondriale biosensoren minder fotobleken tot fluoroforen en genereert het beelden met een hoge resolutie voor het analyseren van subcellulaire verschillen.
Beperkingen en alternatieve benaderingen
Deze methode is niet geschikt om cellen langer dan 10 minuten af te beelden, omdat de cellen onder het dekglaasje uitdrogen. Voor beeldvorming op langere termijn is het beter om de agarpadmethode46 te gebruiken of om cellen te immobiliseren in een kweekschaal met glazen bodem gevuld met SC-medium.
Bij de keuze van de biosensor moet rekening worden gehouden met de concentratie van het doelwit onder experimentele omstandigheden. Als de gevoeligheid van HyPer7 te hoog is, is een andere HyPer-versie aan te bevelen, zoals HyPer3 of HyPerRed47,48. Er moet echter worden opgemerkt dat andere HyPer-sondes pH-gevoeliger zijn. Voor een hogere gevoeligheid kan de op peroxiredoxine gebaseerde roGFP geschikter zijn (roGFP2Tsa2ΔCR)27.
De stabiele oxidatietoestand van de H2O2-sensoris gekoppeld aan zowel oxidatie- als reductiesnelheden. De oxidatiesnelheid van biosensoren wordt voornamelijk veroorzaakt door H 2 O2, maar de reductiesnelheid hangt af van de antioxidantreductiesystemen die actief zijn in de cel en het organel. Het is aangetoond dat HyPer7 voornamelijk wordt gereduceerd door het thioredoxinesysteem in gistcytosol, en dat de reductie ervan sneller is dan die van roGFP2Tsa2ΔCR27. Daarom moet bij het interpreteren van metingen vanH2O 2-biosensoren rekening worden gehouden met de verschillende reductiemechanismen en responsdynamiek van de sonde. In het bijzonder moet worden aangenomen dat het reductiesysteem tijdens het experiment een constante capaciteit handhaaft omH2O2-niveaus af te leiden uit de uitlezing van de biosensor. Als alternatief voor de hier beschreven scripts is een verscheidenheid aan andere software vrij beschikbaar gesteld voor de analyse van redoxsensoren49.
Kritische stappen
Bij elke biosensor is het van cruciaal belang om aan te tonen dat de biosensor zelf geen invloed heeft op het proces dat wordt gemeten. Daarom is het belangrijk om de groei en mitochondriale morfologie van stammen onder elke experimentele omstandigheid te vergelijken. Hier wordt de mitochondriale morfologie beoordeeld met behulp van MitoTracker Red, dat mitochondriën kleurt op een membraanpotentiaalafhankelijke manier. Vergelijking van de mitochondriën in niet-getransformeerde en biosensor-getransformeerde cellen kan echter worden bereikt door kleuring met tetramethylrhodaminemethylester (TMRM), een alternatieve membraanpotentiaalgevoelige mitochondriale vitale kleurstof, of MitoTracker Green, die mitochondriën kleurt onafhankelijk van membraanpotentiaal. Als schadelijke effecten worden vermoed, kan het helpen om het expressieniveau te verlagen of de integratieplaats te wijzigen.
Het valideren van het dosis-responsgedrag van de sonde en de signaal-ruisverhouding van de beeldvormingstechniek zijn ook essentieel voor het verzamelen van robuuste resultaten. Als de variabiliteit binnen een groep groter is dan de variabiliteit tussen groepen, worden verschillen moeilijk te detecteren. Variabiliteit binnen de groep kan het gevolg zijn van echte populatievariatie of van ruis in het detectieproces. De belangrijkste stappen om de signaal:ruisverhouding te verhogen zijn beeldacquisitie (pixelwaardebereik en ruis), achtergrondaftrekking en drempelwaarden.
Geluidseffecten kunnen ook worden verminderd tijdens de berekeningsstappen. De meest eenvoudige benadering is het berekenen van de gewogen gemiddelde intensiteit op basis van de verhoudingsbeeldmetingen (Resultaten.csv), waarbij elke pixel de lokale verhouding tussen de excitatie-efficiëntie vertegenwoordigt. Dit levert een “pixelgewijze” verhouding op. Als de beeldsignaal:ruisverhouding echter laag is, kunnen robuustere resultaten worden verkregen door de gewogen gemiddelde intensiteit voor een ROI in zowel de teller- als de noemerkanalen te berekenen en vervolgens de verhouding tussen deze twee gewogen gemiddelden te berekenen (“regiogewijze” verhouding).
Als u een drempelmethode wilt selecteren, wordt de Fiji-opdracht Image | Aanpassen | Auto Threshold kan worden gebruikt om automatisch alle ingebouwde Fiji-methoden uit te proberen. Om segmentatie (drempelwaarden) te evalueren, wordt een opgeslagen masker omgezet in een selectie door te klikken op Bewerken | Selectie | Selectie maken, toegevoegd aan de ROI Manager (door op T te drukken) en vervolgens geactiveerd op het RAW-afbeeldingsbestand. Als mitochondriën niet adequaat worden gedetecteerd, moet een andere segmentatiemethode worden geprobeerd.
Bij het vergelijken van afbeeldingen is het essentieel om alle afbeeldingen met identieke beeldomstandigheden te verkrijgen en om alle afbeeldingen met identieke contrastverbetering weer te geven.
Bij het optimaliseren van de beeldvormingsomstandigheden moet rekening worden gehouden met mitochondriale beweging. Als de mitochondriën significant bewegen tussen excitatie bij 405 en 488 nm, zal het verhoudingsbeeld niet nauwkeurig zijn. Het wordt aanbevolen om de belichtingstijd <500 ms aan te houden en de excitatie te wijzigen met de snelst beschikbare methode (bijv. een triggerpuls of een akoestisch-optisch afstembaar filter). Bij het vastleggen van een Z-stapel moeten beide excitaties worden uitgevoerd voor elke Z-stap voordat naar de volgende Z-stap wordt gegaan.
Voor de weergave van de resultaten zijn veranderingen in tint (kleur) duidelijker voor het menselijk oog dan veranderingen in intensiteit. Daarom wordt de verhoudingswaarde geconverteerd naar een kleurenschaal voor eenvoudigere visuele interpretatie. Ingekleurde afbeeldingen kunnen ongemoduleerd zijn, waarbij alle mitochondriale pixels met dezelfde helderheid verschijnen, of intensiteitsgemoduleerd, waarbij de pixelintensiteit in de originele afbeelding wordt gebruikt om intensiteiten in de gekleurde afbeelding in te stellen.
Wijziging en probleemoplossing
Als alternatief voor het bevestigen van de mitochondriale functie door provocatie met paraquat, kunnen cellen worden gerepliceerd of geïnoculeerd in fermenteerbare en niet-fermenteerbare koolstofbronnen.
Voor aftrekken op de achtergrond, aftrekken van rollende ballen (door te navigeren naar Verwerken | Achtergrond aftrekken…) kan ook worden gebruikt om niet-uniforme verlichting te verwijderen. Er moet voor worden gezorgd dat de aanwezigheid van cellen de achtergrond die wordt afgetrokken niet verandert (door de optie Achtergrond maken aan te vinken en het resultaat te bekijken).
Samenvattend biedt de mtHyPer7-sonde een consistente, minimaal invasieve methode om de morfologische en functionele status van gistmitochondriën in levende cellen te relateren, en maakt het de studie mogelijk van een belangrijke cellulaire stressor en signaalmolecuul in een genetisch handelbaar, gemakkelijk toegankelijk modelsysteem.
The authors have nothing to disclose.
De auteurs bedanken Katherine Filpo Lopez voor deskundige technische assistentie. Dit werk werd ondersteund door subsidies van de National Institutes of Health (NIH) (GM122589 en AG051047) aan LP.
Deze studies maakten gebruik van de confocale en gespecialiseerde microscopie Shared Resource van het Herbert Irving Comprehensive Cancer Center aan de Columbia University, gedeeltelijk gefinancierd door de NIH/NCI Cancer Center Support Grant P30CA013696.
100x/1.45 Plan Apo Lambda objective lens | Nikon | MRD01905 | |
Adenine sulfate | Sigma-Aldrich | #A9126 | |
Bacto Agar | BD Difco | #DF0145170 | |
Bacto Peptone | BD Difco | #DF0118170 | |
Bacto Tryptone | BD Difco | #DF211705 | |
Bacto Yeast Extract | BD Difco | #DF0127179 | |
BamHI | New England Biolabs | R0136S | |
BglII | New England Biolabs | R0144S | |
Carbenicilin | Sigma-Aldrich | C1389 | |
Carl Zeiss Immersol Immersion Oil | Carl Zeiss | 444960 | |
Dextrose (D-(+)-Glucose) | Sigma-Aldrich | #G8270 | |
E. cloni 10G chemical competent cell | Bioserch Technologies | 60108 | |
FIJI | NIH | Schindelin et al 2012 | |
G418 (Geneticin) | Sigma-Aldrich | A1720 | |
GFP emission filter | Chroma | 525/50 | |
Gibson assembly | New England Biolabs | E2611 | |
Graphpad Prism 7 | GraphPad | https://www.graphpad.com/scientific-software/prism/ | |
H2O2 (stable) | Sigma-Aldrich | H1009 | |
HO-pGPD-mito-roGFP-KanMX6-HO | Pon Lab | JYE057/EP41 | Liao et al 20201 |
Incubator Shaker | New Brunswick Scientific | E24 | |
KAPA HiFi PCR kit | Roche Sequencing and Life Science, Kapa Biosystems, Wilmington, MA | KK1006 | |
L-arginine hydrochloride | Sigma-Aldrich | #A8094 | |
laser | Agilent | 405 and 488 nm | |
L-histidine hydrochloride | Sigma-Aldrich | #H5659 | |
L-leucine | Sigma-Aldrich | #L8912 | |
L-lysine hydrochloride | Sigma-Aldrich | #L8662 | |
L-methionine | Sigma-Aldrich | #M9625 | |
L-phenylalanine | Sigma-Aldrich | #P5482 | |
L-tryptophan | Sigma-Aldrich | #T8941 | |
L-tyrosine | Sigma-Aldrich | #T8566 | |
mHyPer7 plasmid | This study | JYE116 | |
Microscope coverslips | ThermoScientific | 3406 | #1.5 (170 µm thickness) |
Microscope slides | ThermoScientific | 3050 | |
MitoTracker Red CM-H2Xros | ThermoFisherScientific | M7513 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | S9888 | |
NEBuilder HiFi Assembly Master Mix | New England Biolabs | E2621 | |
Nikon Elements | Nikon | Microscope acquisition software | |
Nikon Ti Eclipse inverted microscope | Nikon | ||
Paraquat (Methyl viologen dichloride hydrate) | Sigma-Aldrich | Cat. #856177 | |
RStudio | Posit.co | Free desktop version | |
Spectrophotometer | Beckman | BU530 | |
Stagetop incubator | Tokai Hit | INU | |
Uracil | Sigma-Aldrich | #U1128 | |
Yeast nitrogen base (YNB) containing ammonium sulfate without amino acids | BD Difco | #DF0919073 | |
YN2_1_LT58_X2site | Addgene | 177705 | Pianale et al 2021 |
Zyla 4.2 sCMOS camera | Andor |