Dieses Protokoll zielt darauf ab, einen reproduzierbaren venösen Verabreichungsweg zu demonstrieren, der bei Ratten und Mäusen während der gesamten Neugeborenenperiode angewendet werden kann. Dieses Verfahren ist wichtig für präklinische Studien an Nagetieren, die die Verabreichung von Medikamenten auf Neugeborenenstationen in erster Linie durch intravenöse Verabreichung widerspiegeln möchten.
Die intravenöse (i.v.) Injektion ist der am häufigsten verwendete Weg der Arzneimittelverabreichung bei Neugeborenen im klinischen Umfeld. Daher ist die retroorbitale Veneninjektion eine wichtige Methode für die Verabreichung von Wirkstoffen in der Forschung, bei der erfolgreiche Proof-of-Concept-Studien zu dringend benötigten klinischen Studien bei Neugeborenen führen können. Die meisten intravenösen Studien an neonatalen Nagetieren verwenden die oberflächliche Schläfen-/Gesichtsvene. Die retroorbitale Injektion wird jedoch bei neonatalen Nagetieren, die älter als 2 Tage sind, unzuverlässig, nachdem sich die Haut verdunkelt hat und die Vene nicht mehr sichtbar ist. Im vorliegenden Protokoll beschreiben wir die retroorbitale Injektion des venösen Sinus sowohl bei der neonatalen Maus als auch bei der Ratte in einem Alter, in dem die oberflächliche Schläfenvene nicht mehr sichtbar ist, die Augen aber noch nicht geöffnet sind. Die Augenöffnung erleichtert die retroorbitale Injektion, indem sie es dem Forscher ermöglicht, beim Einführen der Nadel deutlich zu sehen, dass er das Auge nicht perforiert. Wir zeigen, dass diese Technik zuverlässig und reproduzierbar ohne nachteilige Auswirkungen durchgeführt werden kann. Darüber hinaus zeigen wir, dass es in vielen Studien eingesetzt werden kann, z. B. bei der Verabreichung von Substanzen zur Untersuchung von Hirnverletzungen bei Neugeborenen.
Tierversuche sind ein wesentlicher Schritt, der zu klinischen Studien führt, und daher ist es wichtig, dass Tierversuche Verfahren und Behandlungen, die im klinischen Umfeld durchgeführt werden, genau nachahmen. Es gibt jedoch mehrere Herausforderungen bei der Übertragung klinischer Praktiken auf neonatale Nagetierstudien. Dazu gehören unter anderem die geringe Größe des neonatalen Nagetieres und die Lücke in der Neugeborenenforschung und im Vergleich zur Erwachsenenforschung 1,2.
Die Verabreichung verschiedener Substanzen wie Medikamente oder Zellen kann auf mehreren Wegen erfolgen, einschließlich intraperitonealer (IP), subkutaner (SC) und intravenöser (IV) Injektionen. Die intravenöse Injektion ist der bevorzugte Verabreichungsweg von Verbindungen bei menschlichen Neugeborenen. Bei Neugeborenen ist der intravenöse Verabreichungsweg im Vergleich zu anderen Verabreichungswegen vorteilhaft, da er die systemische Verteilung von Arzneimitteln maximiert und eine hohe Bioverfügbarkeit aufweist 3,4. Ein gut gepflegter Infusionsschlauch kann für die wiederholte Verabreichung von Medikamenten verwendet werden. Bei Studien an Nagetieren müssen intravenöse Injektionen in den Schwanz, in die Gesichts-/Schläfenvenen oder in den Sinus retroorbitalisdurchgeführt werden 5. Die Schwanzveneninjektion wird routinemäßig bei erwachsenen Nagetieren eingesetzt, da sie zwei seitliche kaudale parallele Venen zurAuswahl bietet. Diese Venen haben jedoch einen kleinen Durchmesser, was ihre Verwendung bei Neugeborenen ausschließt. Die meisten intravenösen Injektionen bei Neugeborenen wurden in der oberflächlichen Gesichts-/Schläfenvene durchgeführt, da sie ab dem postnatalen Tag 0 (P0)-P2 sichtbar ist und eine relativ große Verabreichung ermöglicht5. Dieser Weg wird jedoch um P36 herum unzuverlässig, sobald das Tier eine Hautfärbung annimmt, wodurch die oberflächliche Gesichts-/Schläfenvene mit dem ungestützten Auge schwer zu erkennen ist. Die intravenöse Verabreichung über den Sinus transversum des Neugeborenen wurde in einer Studie beschrieben7; Dazu muss jedoch die Haut oberhalb des Sinus transversum geöffnet und AAV9 mit Hilfe eines Mikroskops an P0-P1 injiziert werden.
Bei der Untersuchung einer möglichen Behandlung oder der Etablierung eines relevanten neonatalen Verletzungsmodells ist es wichtig zu berücksichtigen, dass neonatale Nagetiere im Vergleich zum Menschen einen anderen Zeitpunkt der Organentwicklung haben können. Unser Protokoll basiert auf den Unterschieden in der Entwicklung des neonatalen Zentralnervensystems zwischen Menschen und Nagetieren. Beispielsweise entspricht der Begriff neugeborenes menschliches Gehirn in etwa einer P7-Ratte und einem P10-Mäusegehirn8. Da die Verteilung der retroorbital injizierten Substanzen ähnlich ist wie an den anderen Infusionsstellen, wobei schnell hohe Blutspiegel erreicht werden, halten wir dies für einen geeigneten Weg. Diese Technik wurde von Yardeni und Kollegen gut beschrieben, als sie bei P1-P2-Mäusen Verbindungen in den Sinus ophthalmic venosum injizierten9. Im aktuellen Protokoll zeigen wir eine einfache und praktikable Methode zur Durchführung retroorbitaler Injektionen bei älteren neonatalen Nagetieren, die ihre Augen noch nicht geöffnet haben.
Dieses Protokoll bietet eine klare und präzise Methode für die Injektion von Substanzen in den retroorbitalen Sinus von neugeborenen Mäusen und Ratten. Dies ist wichtig, weil es zeigt, dass retroorbitale Injektionen bei Nagetieren, die älter als P2 sind, bei denen die oberflächliche Schläfen-/Gesichtsvene nicht mehr erkennbar ist, und bei Tieren, die jünger als P12 sind, bei denen sich die Augenlider noch nicht geöffnet haben und der Augapfel nicht freiliegt, zuverlässig und reproduzierbar durchgeführt werden können. Darüber hinaus wird die retroorbitale Injektion bei Neugeborenen sowohl von den Jungtieren als auch von den Müttern gut vertragen, wobei das Risiko von Nebenwirkungen minimal ist, sobald die Technik beherrscht wurde.
IV-Injektionen haben einen Vorteil gegenüber anderen Verabreichungswegen, da sie eine Injektion hoher Konzentrationen sowie eines niedrigen und hohen pH-Werts ermöglichen, vorausgesetzt, dass die Injektionsrate konstant und niedrig gehalten wird, um einen Riss des Gefäßes zu vermeiden. Darüber hinaus ermöglichen intravenöse Injektionen eine schnellere Verteilung von Verbindungen, da sie direkt in den systemischen Kreislauf gelangen, wodurch mögliche Verzögerungen durch schlechte Resorption, die bei anderen Verabreichungswegen beobachtet werden, umgangen werden. Dies ermöglicht einen sofortigen Zugang und eine nahezu 100%ige Bioverfügbarkeit der Verbindungen.
Klinisch IV ist der bevorzugte Verabreichungsweg bei Neugeborenen (< Alter von 28 Tagen). Dies gilt insbesondere für die Intensivpflege von Neugeborenen, da die intravenöse Kanülierung einen einfachen Zugang zur Bereitstellung von Medikamenten/Flüssigkeiten ermöglicht. Injektionen über den sc-Weg wurden bei Neugeborenen in gewisser Weise eingesetzt, insbesondere zur Verabreichung von Erythropoetin15. Es wurden jedoch Bedenken geäußert, wobei eine Studie die intravenöse Infusion als überlegene Alternative vorschlug16. Die orale Verabreichung ist oft keine praktikable Option, wenn sich Neugeborene auf einer Intensivstation im Krankenhaus befinden. Darüber hinaus weisen Neugeborene im Vergleich zu Erwachsenen Unterschiede in ihrem Magen-Darm-Trakt auf, einschließlich einer verzögerten Magenentleerung und einer verminderten Darmmotilität, die die Arzneimittelabsorption beeinträchtigen kann. Intramuskuläre Injektionen sind aufgrund der geringen Muskelmasse von Neugeborenen schwierig zu verabreichen 3,4.
In der Nagetierforschung ist eine der am weitesten verbreiteten Methoden der IV-Injektion die Schwanzveneninjektion. Diese Methode ist jedoch bei der Arbeit mit Neugeborenen nicht praktikabel. Andere Infusionsstellen, wie z.B. die oberflächliche Schläfen-/Gesichtsvene6, werden bei P3 unsichtbar. Der neonatale Sinus transversum wurde in einer Studie beschrieben und bei P0-P1 durchgeführt, wobei mit Hilfe eines Mikroskops die Haut geöffnet und eine Kapillarnadel durch den Schädel in den Sinus transversum vorgeschoben wurde, was Injektionen von 2-4 μl Volumen ermöglichte7. Nur wenige Studien haben die Verwendung der Vena jugularis externa bei P7 bei Ratten17 dokumentiert. Hierbei handelt es sich jedoch um eine invasive Technik, die eine chirurgische Öffnung der Haut und eine Freilegung der Vena jugularis externaerfordert 18. In Studien an erwachsenen Nagetieren hat sich gezeigt, dass die retroorbitale Verabreichung genauso wirksam ist wie die Schwanzveneninjektion5 und damit die Lebensfähigkeit und Relevanz der retroorbitalen Route verstärkt. Die retroorbitale Injektion verursacht minimale Beschwerden und kann, sobald sie gemeistert ist, von einer einzigen Person mit minimaler Ausrüstung durchgeführt werden und ermöglicht mehrere Injektionen (wobei sichergestellt wird, dass die Augen abwechselnd sind). Frühere Studien haben gezeigt, dass die retroorbitale Injektion zur Verabreichung von Adeno-assoziiertem Virus 9 bei Mäusen bei P0-P1 oder bei P14-P2111 oder FITC-Dextran bei P17-19 verwendet wurde, was auf eine zunehmende Akzeptanz dieser Methode hindeutet.
Es gibt einige Einschränkungen im Zusammenhang mit der retroorbitalen Injektion bei Neugeborenen. Wie bei allen intravenösen Injektionen ist das injizierte Volumen begrenzt, und wir empfehlen für dieses Verfahren 5 μl/g. Zusätzlich erfordert die retroorbitale Injektion eine Ganzkörperanästhesie. Um Komplikationen zu minimieren, wird die Verwendung von inhalativen Anästhesiemitteln wie Isofluran empfohlen, da diese bei der Anästhesieeinleitung schneller sind, einen schnellen Stoffwechsel aufweisen und eine schnelle Genesungsrate aufweisen. Es ist eine Schulung erforderlich, vorzugsweise unter Verwendung von farbigem Farbstoff bei terminalanästhesierten Tieren, um eine mögliche Schwellung um die Injektionsstelle herum oder ein Augentrauma aufgrund einer falschen Platzierung der Nadelfase zu vermeiden. Aufgrund der geringen Größe dieser Tiere werden feinere Nadeln mit kleiner Nadelstärke benötigt. Die Injektion von Zellen muss in Einzelzellsuspension erfolgen, um eine Verstopfung der Gefäße zu vermeiden und die Lebensfähigkeit der Zellen zu gewährleisten. Ermutigend ist, dass eine Studie von Amer und Kollegen gezeigt hat, dass die Injektion von Säugetierzellen mit 30-G-Spritzen auch bei einem Auswurf mit hoher Zelldichte immer noch eine zuverlässige Zelllebensfähigkeit bietet20.
Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Etablierung eines zuverlässigen IV-Verabreichungswegs bei Neugeborenen von klinischer Bedeutung ist, da dies der bevorzugte Verabreichungsweg beim Menschen ist. Die retroorbitale Injektion kann leicht gemeistert werden, ist reproduzierbar und bietet eine relevante Alternative zu anderen intravenösen Injektionsstellen, wie z. B. Schwanz und Temporal-/Gesichtsvene, die während der gesamten neonatalen Periode von Nagetieren nicht zuverlässig verwendet werden können. Somit ermöglicht die retroorbitale Injektion bei Neugeborenen die Verabreichung von Medikamenten, Zellen und anderen Verbindungen im entsprechenden neonatalen Alter.
The authors have nothing to disclose.
Die in diesem Protokoll durchgeführten Arbeiten wurden von der Hasselblad Foundation (2020-2021, ERF), der Åke Wibergs Foundation (M19-0660, ERF), dem Swedish Research Council (2019-01320, HH; 2021-01872, CM), dem Public Health Service des Sahlgrenska University Hospital (ALFGBG-965174, HH ; ALFGBG-966107, CM), The Swedish Brain Foundation (FO2022-0110, CM), Åhlen Foundation (223005, CM) und Horizon 2020 Rahmenprogramm der Europäischen Union (Finanzhilfevereinbarung Nr. 87472/PREMSTEM, HH).
BD Micro-Fine Demi 0,3 ml 30G (0,30mm) | BD | 256370 | 1 per animal per injection |
Biotin-dextran (BDA) tracer | ThermoFischer | D1956 | 2.0-2.5 mg per animal |
Fiber optic light source | Euromex | ||
HP 062 Heating Plate | Labotect | ||
Isoflurane | Vetmedic | Vnr 17 05 79 | |
Tryptan blue solution (0.4%) | Sigma | T8154 | 5 μl/ g body weight |