Das Protokoll beschreibt, wie Porphyrin-basierte Kompensationsbeads für die Durchflusszytometrie durch die Reaktion von Amin-funktionalisierten Polystyrol-Beads mit dem Porphyrin TCPP und dem Amid-Kupplungsreagenz EDC hergestellt werden. Ein Filtrationsverfahren wird eingesetzt, um die partikulären Nebenprodukte zu reduzieren.
Die Durchflusszytometrie kann verschiedene Zellpopulationen auf der Grundlage von Fluoreszenzmessungen schnell charakterisieren und quantifizieren. Die Zellen werden zunächst mit einem oder mehreren fluoreszierenden Reagenzien gefärbt, die jeweils mit einem anderen fluoreszierenden Molekül (Fluorophor) funktionalisiert werden, das aufgrund ihrer phänotypischen Eigenschaften, wie z. B. der Antigenexpression auf der Zelloberfläche, selektiv an Zellen bindet. Die Intensität der Fluoreszenz von jedem Reagenz, das an Zellen gebunden ist, kann auf dem Durchflusszytometer mit Kanälen gemessen werden, die einen bestimmten Wellenlängenbereich erfassen. Wenn mehrere Fluorophore verwendet werden, schwappt das Licht einzelner Fluorophore oft in unerwünschte Detektionskanäle über, was eine Korrektur der Fluoreszenzintensitätsdaten in einem Prozess erfordert, der als Kompensation bezeichnet wird.
Kompensationskontrollpartikel, in der Regel Polymerkügelchen, die an einen einzelnen Fluorophor gebunden sind, werden für jeden Fluorophor benötigt, der in einem Zellmarkierungsexperiment verwendet wird. Daten von Kompensationspartikeln aus dem Durchflusszytometer werden verwendet, um eine Korrektur der Fluoreszenzintensitätsmessungen vorzunehmen. Dieses Protokoll beschreibt die Herstellung und Aufreinigung von Polystyrol-Kompensationskügelchen, die kovalent mit dem fluoreszierenden Reagenz Meso-Tetra(4-carboxyphenyl)porphin (TCPP) funktionalisiert sind, und deren Anwendung in der Durchflusszytometrie-Kompensation. In dieser Arbeit wurden aminfunktionalisierte Polystyrolkügelchen mit TCPP und dem Amid-Kupplungsreagenz EDC (N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimidhydrochlorid) bei pH 6 und bei Raumtemperatur für 16 h unter Rühren behandelt. Die TCPP-Beads wurden durch Zentrifugation isoliert und zur Lagerung in einem pH-7-Puffer resuspendiert. TCPP-bedingte Partikel wurden als Nebenprodukt beobachtet. Die Anzahl dieser Partikel könnte durch ein optionales Filtrationsprotokoll reduziert werden. Die daraus resultierenden TCPP-Beads wurden erfolgreich auf einem Durchflusszytometer zur Kompensation in Experimenten mit humanen Sputumzellen eingesetzt, die mit mehreren Fluorophoren markiert waren. Die TCPP-Kügelchen erwiesen sich nach 300-tägiger Lagerung im Kühlschrank als stabil.
Porphyrine sind aufgrund ihrer Fluoreszenz- und Tumor-Targeting-Eigenschaften seit vielen Jahren im biomedizinischen Bereich von Interesse 1,2,3. Therapeutische Anwendungen wie die photodynamische Therapie (PDT) und die sonodynamische Therapie (SDT) beinhalten die systemische Verabreichung eines Porphyrins an einen Krebspatienten, die Akkumulation des Medikaments im Tumor und die lokale Exposition des Tumors mit einem Laserlicht einer bestimmten Wellenlänge oder Ultraschall. Die Bestrahlung mit Laserlicht oder Ultraschall führt zur Bildung reaktiver Sauerstoffspezies durch das Porphyrin und in der Folge zum Zelltod 4,5. In der photodynamischen Diagnostik (PDD) wird die Porphyrinfluoreszenz verwendet, um Krebszellen von normalen Zellen zu unterscheiden6. In diesem Zusammenhang wird Protoporphyrin IX, ein natürliches fluoreszierendes Porphyrin, das sich bei systemischer oder lokaler Injektion seiner Vorstufe, der 5-Aminolävulinsäure (5-ALA), in Tumoren anreichert, zur Identifizierung von gastrointestinalen Stromatumoren, Blasenkrebs und Hirntumoren verwendet 7,8. In jüngerer Zeit wurde die 5-ALA-Behandlung als Ansatz zur Erkennung einer minimalen Resterkrankung beim Multiplen Myelomuntersucht 9. Unser Labor verwendet das Tetraarylporphyrin TCPP (5,10,15,20-tetrakis-(4-carboxyphenyl)-21,23 H-porphin) wegen seiner Fähigkeit, selektiv Lungenkrebszellen und krebsassoziierte Zellen in menschlichen Sputumproben zu färben, eine Eigenschaft, die in objektträgerbasierten und durchflusszytometrischen diagnostischen Assays ausgenutzt wurde10.
Einige Porphyrine sind insofern bifunktional, als sie als therapeutische und diagnostische Mittel eingesetzt werden können 2,11. In der biomedizinischen Forschung werden solche bifunktionalen Porphyrine verwendet, um zu bewerten, wie ihre Fähigkeit, Krebszellen selektiv anzugreifen und abzutöten, von ihrer Struktur abhängt und wie sie durch das Vorhandensein anderer Verbindungen beeinflusst wird 12,13,14,15,16. Sowohl die zelluläre Aufnahme von Porphyrinen als auch ihre Zytotoxizität können auf einer durchflusszytometrischen Plattform im Hochdurchsatz gemessen werden. Die Absorptions- und Emissionsspektren von fluoreszierenden Porphyrinen sind komplex, aber die meisten durchflusszytometrischen Plattformen sind in der Lage, sie korrekt zu identifizieren. Das Absorptionsspektrum fluoreszierender Porphyrine zeichnet sich durch eine starke Absorptionsbande im Bereich von 380-500 nm aus, die als Soret-Bande bezeichnet wird. Zwei bis vier schwächere Absorptionsbanden werden im Allgemeinen im Bereich von 500-750 nm (Q-Banden) beobachtet17. Ein blauer 488-nm-Laser, der in den meisten Durchflusszytometern vorhanden ist, oder ein violetter Laser (405 nm) können Licht der entsprechenden Wellenlänge erzeugen, um Porphyrine anzuregen. Die Emissionsspektren von Porphyrinen zeigen typischerweise Spitzen im Bereich von 600-800 nm18, was zu einer sehr geringen spektralen Überlappung mit Fluoresceinisothiocyanat- oder Phycoerythrin (PE)-Fluorophoren, aber zu einer erheblichen Überlappung mit anderen häufig verwendeten Fluorophoren, wie Allophycocyanin (APC), sowie Tandem-Fluorophoren, wie PE-Cy5 und anderen, führt. Daher sind bei der Verwendung von Porphyrinen in mehrfarbigen Durchflusszytometrie-Assays Einzelfluorophorkontrollen unerlässlich, um den Spillover der Fluoreszenz in anderen Kanälen als dem, der für die Messung der Fluoreszenz des Porphyrins vorgesehen ist, angemessen zu korrigieren.
Idealerweise sollten die Einzelfluorophor-Kontrollen, die zur Berechnung der Spillover-Matrix für ein Panel von Fluorophoren verwendet werden (auch “Kompensationskontrollen” genannt), aus denselben Zelltypen wie die Probe bestehen. Die Verwendung der Probe für diesen Zweck ist jedoch nicht optimal, wenn es zunächst nur sehr wenige Proben gibt oder wenn die Zielpopulation innerhalb der Probe sehr klein ist (z. B. wenn man minimale Resterkrankungen oder Krebszellen in frühen Stadien der Krankheit betrachten möchte). Eine nützliche Alternative zu Zellen sind Beads, die mit demselben Fluorophor gekoppelt sind, der zur Analyse der Probe verwendet wird. Viele dieser Perlen sind im Handel erhältlich; Diese Beads sind entweder mit dem gewünschten Fluorophor vormarkiert (vormarkierte Fluorophor-spezifische Beads)19,20, oder es kann ein fluoreszenzmarkierter Antikörper an sie angehängt werden (Antibody Capture Beads)20,21. Während für viele Fluorophore kommerzielle Kompensationskügelchen zur Verfügung stehen, sind solche Beads für Porphyrine trotz ihres zunehmenden Einsatzes in der Grundlagen- und klinischen Forschung nicht verfügbar.
Neben der Probenkonservierung und der angemessenen Größe positiver und negativer Populationen sind die weiteren Vorteile der Verwendung von Beads als Kompensationskontrollen die einfache Präparation, die geringe Hintergrundfluoreszenz und die ausgezeichnete Stabilität über die Zeit22. Der potenzielle Nachteil der Verwendung von Beads als Kompensationskontrolle besteht darin, dass sich das Emissionsspektrum des fluoreszierenden Antikörpers, der auf Beads eingefangen wird, von dem desselben Antikörpers unterscheiden kann, der zur Markierung der Zellen verwendet wird. Dies kann bei Verwendung eines spektralen Durchflusszytometers20 von besonderer Bedeutung sein. Daher muss die Entwicklung von Beads als Kompensationskontrolle auf dem Durchflusszytometer durchgeführt werden, das für den Assay verwendet wird, für den die Beads entwickelt werden. Darüber hinaus muss die Entwicklung der Kügelchen einen Vergleich mit Zellen beinhalten, die mit demselben fluoreszierenden Färbereagenz markiert sind.
In dieser Arbeit beschreiben wir die Herstellung von TCPP-Amin-funktionalisierten Polystyrol-Kompensationsbeads, deren mediane Fluoreszenzintensität im Detektionskanal mit der von TCPP-markierten Zellen im Sputum vergleichbar war, und deren Verwendung als Kompensationskontrollen für die Durchflusszytometrie. Die Autofluoreszenz von äquivalenten, nicht-funktionalisierten Beads war niedrig genug, um sie als negative Fluoreszenzkompensationskontrollen zu verwenden. Darüber hinaus zeigten diese Perlen eine Lagerstabilität von fast 1 Jahr.
Trotz der zahlreichen Anwendungen von Porphyrinen in der Krebsdiagnostik und -therapie2 gibt es nur begrenzte Literatur über ihre potenzielle Verwendung als durchflusszytometrisches Reagenz zur Identifizierung von krebsartigen und nicht-krebsartigen Zellpopulationen in primären menschlichen Geweben24,25,26. Unsere Forschung zur durchflusszytometrischen Analyse von humanem Sputum24,27</…
The authors have nothing to disclose.
Wir bedanken uns bei David Rodriguez für die Unterstützung bei der Präparation der Figur und bei Precision Pathology Services (San Antonio, TX) für den Einsatz des Durchflusszytometers Navios EX.
Amber plastic vials, 2 mL, U- bottom, polypropylene | Research Products International | ZC1028-500 | |
Amine-funtionalized polystyrene divinylbenzene crosslinked (PS/DVB) beads, 10.6 μm diameter, 2.5% w/v aqueous suspension, 3.82 x 107 beads/mL, 7.11 x 1011 amine groups/ bead | Spherotech | APX-100-10 | Diameter spec. 8.0-12.9 um, suspension 2.5% w/v 3.82 x 107 beads/mL, 7.11 x 1011 amine groups/ bead |
Conical tubes, 50 mL, Falcon | Fisher Scientific | 14-432-22 | |
Centrifuge | with appropriate rotor | ||
Disposable polystyrene bottle with cap, 150 mL | Fisher Scientific | 09-761-140 | |
EDC (N- (3- dimethylaminopropyl)- N'- ethylcarbodiimide hydrochloride), ≥98% | Sigma | 03450-1G | CAS No: 25952-53-8 |
FlowJo Single Cell Analysis Software (v10.6.1) | BD | ||
Glass coverslips, 22 x 22 mm | Fisher Scientific | 12-540-BP | |
Glass fiber syringe filters (Finneran, 5 µm, 13 mm diameter) | Thomas Scientific | 1190M60 | |
Glass microscope slides, 275 x 75 x 1 mm | Fisher Scientific | 12-550-143 | |
Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) | Fisher Scientific | 14-175-095 | |
Isopropanol, ACS grade | Fisher Scientific | AC423830010 | |
Mechanical pipette, 1 channel, 100-1000 uL with tips | Eppendorf | 3123000918 | |
MES (22- (N- mopholino)- N'- ethanesulfonic acid, hemisodium salt | Sigma | M0164 | CAS No: 117961-21-4 |
Navios EX flow cytometer | Beckman Coulter | ||
Olympus BX-40 microscope with DP73 camera and 40X objective with cellSens software | Olympus | or similar | |
Pasteur pipettes, glass, 5.75" | Fisher Scientific | 13-678-6B | |
pH meter (UB 10 Ultra Basic) | Denver Instruments | ||
Pipette controller (Drummond) | Pipete.com | DP101 | |
Plastic Syringe, 5 mL | Fisher Scientific | 14955452 | |
Polystyrene Particles (non-functionalized), SPHERO, 2.5% w/v, 8.0-12.9 µm | Spherotech | PP-100-10 | |
Polypropylene tubes, 15mL, conical | Fisher Scientific | 14-959-53A | |
Polystyrene tubes, round bottom | Fisher Scientific | 14-959-2A | |
Rainbow Beads (Spherotech URCP-50-2K) | Fisher Scientific | NC9207381 | |
Serological pipettes, disposable – 10 mL | Fisher Scientific | 07-200-574 | |
Serological pipettes, disposable – 25 mL | Fisher Scientific | 07-200-576 | |
Sodium bicarbonate (NaHCO3) | Sigma | S6014 | CAS No: 144-55-8 |
TCPP (meso-tetra(4-carboxyphenyl)porphine) Frontier Scientific | Fisher Scientific | 50-393-68 | CAS No: 14609-54-2 |
Tecan Spark Plate Reader (or similar) | Tecan Life Sciences | ||
Tube revolver/rotator | Thermo Fisher | 88881001 | |
Vortex mixer | Fisher Scientific | 2215365 |