Summary

Модель перипротезной инфекции сустава Candida albicans у мышей

Published: February 02, 2024
doi:

Summary

Перипротезная инфекция суставов (ППИ), вызванная опасными патогенами, часто встречается в клинической ортопедии. Существующие животные модели не могут точно смоделировать реальную ситуацию ППИ. Здесь мы создали модель мыши, ассоциированной с биопленкой Candida albicans , для исследования и разработки новых терапевтических средств для лечения ППИ.

Abstract

Перипротезная инфекция суставов (ППИ) является одной из распространенных инфекций, вызываемых Candida albicans (C. albicans), которая все чаще беспокоит хирургов и ученых. Как правило, в месте инфекции образуются биопленки, которые могут защитить C. albicans от антибиотиков и иммунного клиренса. Хирургическое вмешательство, включающее удаление инфицированного имплантата, санацию, антимикробное лечение и реимплантацию, является золотым стандартом лечения ППИ. Таким образом, создание моделей ППИ на животных имеет большое значение для исследований и разработки новых лекарств или терапевтических средств для лечения ППИ. В этом исследовании гладкая проволока из никель-титанового сплава, широко используемая в ортопедических клиниках, была вставлена в бедренный сустав мыши C57BL/6 до того, как C. albicans были инокулированы в суставную полость вдоль проволоки. Через 14 дней на поверхности имплантатов под сканирующим электронным микроскопом (СЭМ) наблюдались зрелые и толстые биопленки. Значительно сниженная костная трабекула была обнаружена при окрашивании H&E инфицированных образцов суставов. Подводя итог, можно сказать, что была создана мышиная модель PJI, обладающая такими преимуществами, как простота эксплуатации, высокая успешность, высокая повторяемость и высокая клиническая корреляция. Ожидается, что это станет важной моделью для клинических исследований профилактики ППИ, связанной с биопленкой C. albicans.

Introduction

Candida albicans (C. albicans) комменсально обитает во многихчастях тела человека1, который также является наиболее распространенным условно-патогенным патогеном, вызывающим опасные для жизни инвазивные грибковые инфекции, особенно у пациентов с ослабленным иммунитетом 2,3. C. albicans может трансформироваться между дрожжами и мицелием в виде полиморфного гриба. Состояние мицелия характеризуется более высокой вирулентностью, более сильной адгезией и инвазией клеток и тканей 4,5. Кроме того, C. albicans может образовывать биопленки на поверхности биомедицинских материалов, таких как зубные протезы, катетеры и стенты 1,6,7. Плотная трехмерная структура биопленок ограничивает инфильтрацию противогрибковых препаратов, экспрессирует гены, устойчивые к лекарственным препаратам, и подавляет метаболизм грибковых клеток, чтобы противостоять клиренсу иммунной системы 6,7. Таким образом, инфекции, связанные с биопленками, в клиниках являются довольно сложной задачей8.

Золотистый стафилококк, коагулазонегативный стафилококк и энтеробактер являются основными патогенами, вызывающими ППИ9. Несмотря на то, что заболеваемость грибковыми ППИ относительно невелика (около 1%)10, стоимость лечения грибковой ППИвыше11, цикл лечения длиннее11, а вероятность успешности леченияниже10, чем бактериальная ППИ. В последние годы заболеваемость грибковыми ППИ растет из года вгод10. На долю Candida PJI приходится 77%-84% грибковых PJI10,12, а C. albicans является наиболее распространенным при Candida (54%). Поэтому грибковые ППИ нуждаются в изучении.

В настоящее время ППИ лечится с помощью ревизионной хирургии путем (1) удаления инфицированного имплантата, (2) санации, (3) антимикробного лечения и (4) реимплантации. После тщательной санации устанавливают антибиотик, содержащий костный цемент, и пациента систематически лечат антибиотиками в течение более 6 недель для эффективного контроля инфекцииперед установкой нового имплантата. Однако этот метод не может полностью устранить возбудителей в тканях, и рецидивирующие инфекции, леченные длительной антимикробной терапией, с высокой вероятностью развиваются у лекарственно-устойчивых штаммов 14,15,16.

Создание моделей ППИ на животных имеет важное значение для исследований и разработки новых лекарств или терапевтических средств для лечения ППИ. При развитии ППИ вокруг протеза образуются большие мертвые пространства, приводящие к образованию гематом, которые в дальнейшем блокируют кровоснабжение окружающих тканей и ухудшают действие антибиотиков11,15. Из-за сложности имитации окружающей среды протеза традиционные животные модели не могут точно смоделировать реальную ситуацию PJI17,18.

В данной работе была построена модель ППИ, ассоциированная с биопленкой C. albicans у мышей, с использованием широко используемой титано-никелевой проволоки для моделирования суставных имплантатов19,20. Эта модель PJI демонстрирует такие преимущества, как простота эксплуатации, высокий процент успешных операций, высокая повторяемость и высокая клиническая корреляция. Ожидается, что он станет важной моделью для изучения профилактики и лечения ППИ, связанной с биопленкой C. albicans.

Protocol

Животные были приобретены в Сианьском университете Цзяотун. Все процедуры экспериментов на животных были одобрены Институциональным комитетом по этике животных Сианьского университета Цзяотун (номер одобрения: SCXK [Shaanxi] 2021-103). Мышей держали в течение одной недели по 5 мышей в клетке. Им…

Representative Results

Перенос образцов на планшетную среду и подсчет колоний после ночной инкубации обычно используется для оценки локальной патогенной нагрузки вблизи поражения22,23. В нашем исследовании микробная культура образцов печени, почек и селезенки была отрицатель?…

Discussion

Инфекция, вызванная загрязнением хирургических инструментов или операционной среды во время операции, является основной причиной большинства инфекций имплантатов 24,25,26,27. Таким образом, в данном исследовании была п…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарны за финансовую поддержку Фонду естественных наук провинции Шэньси (номер гранта 2021SF-118) и Национальному фонду естественных наук Китая (грант No 81973409, 82204631).

Materials

0.5 Mactutrius turbidibris Shanghai Lujing Technology Co., Ltd 5106063
4 °C refrigerator Electrolux (China) Electric Co., Ltd ESE6539TA
Agar Beijing Aoboxing Bio-tech Co., Ltd 01-023
Analytical balances Shimadzu ATX124
Autoclaves Sterilizer SANYO MLS-3750
Carbenicillin Amresco C0885
Eclipse Ci Nikon upright optical microscope  Nikon Eclipse Ts2-FL
Glucose Macklin  D823520
Inoculation ring Thermo Scientific 251586
Isoflurane RWD 20210103
NaCl Xi'an Jingxi Shuanghe Pharmaceutical Co., Ltd 20180108
Paraformaldehyde Beyotime Biotechnology P0099
Peptone Beijing Aoboxing Bio-tech Co., Ltd 01-001
RWD R550 multi-channel small animal anesthesia machine  RWD R550
SEM Hitachi TM-1000
Temperature incubator Shanghai Zhichu Instrument Co., Ltd ZQTY-50N
Ultrapure water water generator Heal Force NW20VF
Ultrasound machine Do-Chrom DS10260D
Yeast extract Thermo Scientific Oxoid LP0021B

References

  1. Mayer, F. L., Wilson, D., Hube, B. Candida albicans pathogenicity mechanisms. Virulence. 4 (2), 119-128 (2013).
  2. Fan, F., et al. Candida albicans biofilms: antifungal resistance, immune evasion, and emerging therapeutic strategies. International Journal of Antimicrobial Agents. 60 (5-6), 106673 (2022).
  3. Tong, Y., Tang, J. Candida albicans infection and intestinal immunity. Microbiological Research. 198, 27-35 (2017).
  4. Kanaguchi, N., et al. Effects of salivary protein flow and indigenous microorganisms on initial colonization of Candida albicans in an in vivo model. Bmc Oral Health. 12, 36 (2012).
  5. Gulati, M., Nobile, C. J. Candida albicans biofilms: development, regulation, and molecular mechanisms. Microbes and Infection. 18 (5), 310-321 (2016).
  6. Douglas, L. J. Candida biofilms and their role in infection. Trends in Microbiology. 11 (1), 30-36 (2003).
  7. Nobile, C. J., Johnson, A. D. Candida albicans biofilms and human disease. Annual Review of Microbiology. 69, 71-92 (2015).
  8. Mack, D., et al. Biofilm formation in medical device-related infection. The International Journal of Artificial Organs. 29 (4), 343-359 (2006).
  9. Miller, R., et al. Periprosthetic joint infection: A review of antibiotic treatment. JBJS Reviews. 8 (7), e1900224 (2020).
  10. Brown, T. S., et al. Periprosthetic joint infection with fungal pathogens. The Journal of Arthroplasty. 33 (8), 2605-2612 (2018).
  11. Kojic, E. M., Darouiche, R. O. Candida infections of medical devices. Clinical Microbiology Reviews. 17 (2), 255-267 (2004).
  12. Schoof, B., et al. Fungal periprosthetic joint infection of the hip: a systematic review. Orthopedic Reviews (Pavia). 7 (1), 5748 (2015).
  13. Izakovicova, P., Borens, O., Trampuz, A. Periprosthetic joint infection: current concepts and outlook. EFORT Open Reviews. 4 (7), 482-494 (2019).
  14. Tande, A. J., Patel, R. Prosthetic joint infection. Clinical Microbiology Reviews. 27 (2), 302-345 (2014).
  15. Stocks, G., Janssen, H. F. Infection in patients after implantation of an orthopedic device. ASAIO Journal. 46 (6), S41-S46 (2000).
  16. Shahi, A., Tan, T. L., Chen, A. F., Maltenfort, M. G., Parvizi, J. In-hospital mortality in patients with periprosthetic joint infection. The Journal of Arthroplasty. 32 (3), 948-952 (2017).
  17. Carli, A. V., Ross, F. P., Bhimani, S. J., Nodzo, S. R., Bostrom, M. P. Developing a clinically representative model of periprosthetic joint infection. The Journal of Bone and Joint Surgery. American Volume. 98 (19), 1666-1676 (2016).
  18. Stavrakis, A. I., Niska, J. A., Loftin, A. H., Billi, F., Bernthal, N. M. Understanding infection: A primer on animal models of periprosthetic joint infection. The Scientific World Journal. 2013, 925906 (2013).
  19. Qiao, B., Lv, T. Electrochemical investigation of interaction of candida albicans with titanium-nickel implant in human saliva. International Journal of Electrochemical Science. 17 (2), 22028 (2022).
  20. Oh, Y. R., Ku, H. M., Kim, D., Shin, S. J., Jung, I. Y. Efficacy of a Nickel-titanium ultrasonic instrument for biofilm removal in a simulated complex root canal. Materials. 13 (21), 4914 (2020).
  21. Feldman, A. T., Wolfe, D., Christina E, D. a. y. Tissue Processing and Hematoxylin and Eosin Staining. Histopathology: Methods and Protocols. , 31-43 (2014).
  22. Sinclair, K. D., et al. Model development for determining the efficacy of a combination coating for the prevention of perioperative device related infections: A pilot study. Journal of Biomedical Materials Research – Part B Applied Biomaterials. 101 (7), 1143-1153 (2013).
  23. Mo, F., et al. In vitro and in vivo effects of the combination of myricetin and miconazole nitrate incorporated to thermosensitive hydrogels, on C. albicans biofilms. Phytomedicine. 71, 153223 (2020).
  24. Zahar, A., Sarungi, M. Diagnosis and management of the infected total knee replacement: a practical surgical guide. Journal of Experimental Orthopaedics. 8 (1), 14 (2021).
  25. Parvizi, J., Jacovides, C., Zmistowski, B., Jung, K. A. Definition of periprosthetic joint infection: Is there a consensus. Clinical Orthopaedics and Related Research. 469 (11), 3022-3030 (2011).
  26. Karczewski, D., et al. Candida periprosthetic joint infections – risk factors and outcome between albicans and non-albicans strains. International Orthopaedics. 46 (3), 449-456 (2022).
  27. Cobo, F., Rodriguez-Granger, J., Sampedro, A., Aliaga-Martinez, L., Navarro-Mari, J. M. Candida prosthetic joint infection. A review of treatment methods. Journal of Bone and Joint Infection. 2 (2), 114-121 (2017).
  28. Cobrado, L., Silva-Dias, A., Azevedo, M. M., Pina-Vaz, C., Rodrigues, A. G. In vivo antibiofilm effect of cerium, chitosan and hamamelitannin against usual agents of catheter-related bloodstream infections. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 68 (1), 126-130 (2013).
  29. Vila, T., et al. Therapeutic implications of C. albicans-S. aureus mixed biofilm in a murine subcutaneous catheter model of polymicrobial infection. Virulence. 12 (1), 835-851 (2021).
  30. Nishitani, K., et al. Quantifying the natural history of biofilm formation in vivo during the establishment of chronic implant-associated Staphylococcus aureus osteomyelitis in mice to identify critical pathogen and host factors. Journal of Orthopaedic Research. 33 (9), 1311-1319 (2015).
  31. Ormsby, R. T., et al. Evidence for osteocyte-media ted bone-matrix degradation associated with periprosthetic joint infection (PJI). European Cells & Materials. 42, 264-280 (2021).
  32. Garlito-Díaz, H., et al. A new antifungal-loaded sol-gel can prevent candida albicans prosthetic joint infection. Antibiotics (Basel). 10 (6), 711 (2021).
  33. Harro, J. M., et al. Development of a novel and rapid antibody-based diagnostic for chronic staphylococcus aureus infections based on biofilm antigens. Journal of Clinical Microbiology. 58 (5), e01414-e01419 (2020).

Play Video

Cite This Article
Yang, C., Zhang, J., Mo, F., Zhang, P., Li, Q., Zhang, J. A Periprosthetic Joint Candida albicans Infection Model in Mouse. J. Vis. Exp. (204), e65263, doi:10.3791/65263 (2024).

View Video