Summary

Микрокомпьютерная томография и морфометрический анализ головного мозга новорожденных мышей

Published: May 19, 2023
doi:

Summary

В этом исследовании описаны этапы получения изображений мозга новорожденных мышей с высоким разрешением путем сочетания микрокомпьютерной томографии (микро-КТ) и контрастного вещества в образцах ex vivo . Мы описываем основные морфометрические анализы для количественной оценки размера и формы мозга на этих изображениях.

Abstract

Нейроизображения являются ценным инструментом для изучения морфологии мозга в экспериментах на животных моделях. Магнитно-резонансная томография (МРТ) стала стандартным методом для мягких тканей, хотя ее низкое пространственное разрешение накладывает некоторые ограничения на мелких животных. В данной статье мы описываем протокол получения трехмерной (3D) информации высокого разрешения о мозге и черепе новорожденных мышей с помощью микрокомпьютерной томографии (микро-КТ). Протокол включает в себя шаги, необходимые для препарирования образцов, окрашивания и сканирования мозга, а также получения морфометрических измерений всего органа и областей интереса (ROI). Анализ изображений включает в себя сегментацию структур и оцифровку координат точек. В целом, эта работа показывает, что комбинация микро-КТ и раствора Люголя в качестве контрастного вещества является подходящей альтернативой для визуализации перинатального мозга мелких животных. Этот рабочий процесс визуализации находит применение в биологии развития, биомедицине и других науках, заинтересованных в оценке влияния различных генетических факторов и факторов окружающей среды на развитие мозга.

Introduction

Микрокомпьютерная томография (микро-КТ) является ценным инструментом для различных областей исследований. В биологии он особенно подходит для исследования костей из-за поглощения рентгеновских лучей в минерализованных тканях. Благодаря этой особенности различные вопросы, касающиеся развития костей1, метаболизма2 и эволюции 3,4, а также других тем, были решены с помощью микро-КТ. В 2008 году de Crespigny et al.5 показали, что микро-КТ-изображения мозга взрослых мышей и кроликов могут быть получены с использованием йода в качестве контрастного вещества. Эта работа открыла новое применение для этого метода визуализации, поскольку йод позволил получать изображения из мягких тканей, которые в противном случае были бы нечувствительны к рентгеновским лучам. Таким образом, общей целью совмещения микро-КТ и йодсодержащего контрастного вещества является получение изображений с высоким разрешением, на которых можно различить и идентифицировать мягкие ткани на мезо- или макроанатомическом уровне.

Этот метод обладает значительным потенциалом для исследований, требующих детальной фенотипической характеристики ex vivo небольших образцов, таких как эмбрионы мышей, которые широко используются в экспериментальных схемах6. Йодный контраст в сочетании с микрокомпьютерной томографией был использован для получения объемных количественных оценок органов7 и ориентирных трехмерных (3D) структур 8,9. В последние годы для описания фенотипических особенностей головного мозга грызунов10 применяется микрокомпьютерная томография окрашенных образцов, и были предложены различные усовершенствования методики. Было обнаружено, что для мозга взрослого человека протокол 48-часового погружения в йод с предшествующей стадией перфузии гидрогелем позволяет получать изображения высокого качества11. Gignac et al.12 расширили пределы этого метода, показав, что мозг крыс, окрашенный йодом, может быть обработан для выполнения рутинных гистологических методов. Аналогичным образом, эти процедуры демонстрируют многообещающие результаты для мозга эмбрионов и грызунов до отъема 8,13,14,15.

Несмотря на то, что нейробиология в основном применяет методы, основанные на микроскопе, для оценки различных структурных и функциональных аспектов развития мозга, такие исследования больше подходят для характеристики конкретных клеточных популяций или пространственно ограниченных структур. И наоборот, микро-КТ позволяет описывать целые структуры и получать 3D-модели, которые сохраняют соответствующую пространственную информацию, что является дополнением к микроскопическим методам. Магнитно-резонансная томография (МРТ) также является стандартным методом, применяемым для изучения структурных особенностей мелких животных 16,17,18. Тем не менее, микро-КТ с использованием контрастного вещества имеет два основных преимущества для фиксированных образцов ex vivo: микро-КТ-сканеры в значительной степени дешевле и просты в эксплуатации, а также обеспечивают более высокое пространственное разрешение, чем МРТ12.

Целью данной работы является описание процедуры получения изображений мозга новорожденных мышей с высоким разрешением с помощью микрокомпьютерной томографии после окрашивания раствором Люголя, контрастным веществом на основе йода. Представлен комплексный протокол, который начинается с предварительных этапов, таких как забор образцов и фиксация тканей, и проходит через окрашивание, получение микро-КТ изображений и стандартную обработку. Обработка изображений включает в себя сегментацию 3D-объема всей головы, а также мозга и выбор конкретных анатомических плоскостей для оцифровки координат точек, которые затем могут быть использованы в морфометрическом анализе. Несмотря на то, что основное внимание здесь уделяется мозгу новорожденных мышей, аналогичные стратегии могут быть применены и к другим мягким тканям. Таким образом, представленный здесь протокол является достаточно гибким, чтобы его можно было применять, с незначительными изменениями, к другим типам образцов.

Protocol

Все экспериментальные процедуры проводились в соответствии с рекомендациями Канадского совета по уходу за животными. 1. Отбор и подготовка проб Приготовьте 500 мл 4% параформальдегида (PFA).Под флюсом для экстракции в шкафу добавьте 20 г порошка PFA к 250 мл 1x ф…

Representative Results

Представлен базовый протокол получения изображений мозга новорожденных мышей с высоким разрешением. Головы сканировали после погружения в раствор Люголя. Несмотря на небольшие размеры, можно выделить основные анатомические структуры мозга, такие как обонятельные луковицы, кора, сре?…

Discussion

В данной работе представлен краткий протокол сканирования тканей головного мозга новорожденных мышей с помощью микро-КТ с контрастным веществом. Кроме того, он включает в себя простые процедуры для получения количественных и качественных результатов. На основе этих методов могут быт?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Благодарим Вэй Лю за техническую помощь. Эта работа финансируется ANPCyT PICT 2017-2497 и PICT 2018-4113.

Materials

 µCT 35 Scanco Medical AG Note that Scanco does not offer the  µCT 35 anymore. Their smallest scanner is now the  µCT 45 
Avizo Visualization Sciences Group, VSG
C57BL/6 Mice Bioterio Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad Nacional de La Plata
Conical tubes Daigger CH-CI4610-1856
Flux cabinet Esco AC2-458 
Glass beaker  Glassco GL-229.202.10
Glass bottle Simax CFB017
Glass funnel HDA VI1108
HCl Carlo Erba 403872 Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves)
I2 Cicarelli 804211 When preparing I2KI, manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves)
KI Cicarelli PA131542.1210 When preparing I2KI, manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves)
Magnetic stirring Arcano 4925
NaOH Cicarelli 1580110 Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves)
Orbital shaker Biomint BM021
Paraformaldehyde  Biopack 2000959400 Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves)
Paton spatula Glassco GL-377.303.01
PBS Biopack 2000988800
Plastic Pasteur pipette Daigger 9153
R R Project The package geomorph for R was used in the protocol (https://cran.r-project.org/web/packages/geomorph/index.html)
Scissors  Belmed
Sodium azide Biopack 2000163500
Thermometer Daigger 7650

References

  1. Altman, A. R., et al. Quantification of skeletal growth, modeling, and remodeling by in vivo micro-computed tomography. Bone. 81, 370-379 (2015).
  2. Wehrle, E., et al. Spatio-temporal characterization of fracture healing patterns and assessment of biomaterials by time-lapsed in vivo micro-computed tomography. Scientific Reports. 11 (1), 8660 (2021).
  3. Arístide, L., et al. Brain shape convergence in the adaptive radiation of New World monkeys. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (8), 2158-2163 (2016).
  4. Paluh, D. J., Stanley, E. L., Blackburn, D. C. Evolution of hyperossification expands skull diversity in frogs. Proceedings of the National Academy of Sciences. 117 (15), 8554-8562 (2020).
  5. de Crespigny, A., et al. 3D micro-CT imaging of the postmortem brain. Journal of Neuroscience Methods. 171 (2), 207-213 (2008).
  6. Gignac, P. M., et al. Diffusible iodine-based contrast-enhanced computed tomography (diceCT): an emerging tool for rapid, high-resolution, 3-D imaging of metazoan soft tissues. Journal of Anatomy. 228 (6), 889-909 (2016).
  7. Wong, M. D., Dorr, A. E., Walls, J. R., Lerch, J. P., Henkelman, R. M. A novel 3D mouse embryo atlas based on micro-CT. Development. 139 (17), 3248-3256 (2012).
  8. Gonzalez, P. N., et al. Chronic protein restriction in mice impacts placental function and maternal body weight before fetal growth. PLoS One. 11 (3), 0152227 (2016).
  9. Watanabe, A., et al. Are endocasts good proxies for brain size and shape in archosaurs throughout ontogeny. Journal of Anatomy. 234 (3), 291-305 (2019).
  10. Gignac, P. M., Kley, N. J. The utility of diceCT imaging for high-throughput comparative neuroanatomical studies. Brain, Behavior and Evolution. 91 (3), 180-190 (2018).
  11. Anderson, R., Maga, A. M. A novel procedure for rapid imaging of adult mouse brains with microCT using iodine-based contrast. PLoS One. 10 (11), e0142974 (2015).
  12. Gignac, P. M., O’Brien, H. D., Sanchez, J., Vazquez-Sanroman, D. Multiscale imaging of the rat brain using an integrated diceCT and histology workflow. Brain Structure & Function. 226 (7), 2153-2168 (2021).
  13. Wong, M. D., Spring, S., Henkelman, R. M. Structural stabilization of tissue for embryo phenotyping using micro-CT with iodine staining. PLoS One. 8 (12), e84321 (2013).
  14. Barbeito-Andrés, J., et al. Congenital Zika syndrome is associated with maternal protein malnutrition. Science Advances. 6 (2), (2020).
  15. Handschuh, S., Glösmann, M. Mouse embryo phenotyping using X-ray microCT. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 10, 949184 (2022).
  16. Turnbull, D. H., Mori, S. MRI in mouse developmental biology. NMR in Biomedicine. 20 (3), 265-274 (2007).
  17. Qiu, L. R., et al. Mouse MRI shows brain areas relatively larger in males emerge before those larger in females. Nature Communications. 9, 2615 (2018).
  18. Lerch, J. P., Sled, J. G., Henkelman, R. M. MRI phenotyping of genetically altered mice. Methods in Molecular Biology. 711, 349-361 (2011).
  19. Gonzalez, P. N., Kristensen, E., Morck, D. W., Boyd, S., Hallgrímsson, B. Effects of growth hormone on the ontogenetic allometry of craniofacial bones. Evolution & Development. 15 (2), 133-145 (2016).
  20. Metscher, B. D. MicroCT for developmental biology: a versatile tool for high-contrast 3D imaging at histological resolutions. Developmental Dynamics. 238 (3), 632-640 (2009).
  21. Vickerton, P., Jarvis, J., Jeffery, N. Concentration-dependent specimen shrinkage in iodine-enhanced microCT. Journal of Anatomy. 223 (2), 185-193 (2013).
  22. Dawood, Y., et al. Reducing soft-tissue shrinkage artefacts caused by staining with Lugol’s solution. Scientific Reports. 11, 19781 (2021).

Play Video

Cite This Article
Barbeito-Andrés, J., Andrini, L., Vallejo-Azar, M., Seguel, S., Devine, J., Hallgrímsson, B., Gonzalez, P. Micro-CT Imaging and Morphometric Analysis of Mouse Neonatal Brains. J. Vis. Exp. (195), e65180, doi:10.3791/65180 (2023).

View Video