В этом исследовании описаны этапы получения изображений мозга новорожденных мышей с высоким разрешением путем сочетания микрокомпьютерной томографии (микро-КТ) и контрастного вещества в образцах ex vivo . Мы описываем основные морфометрические анализы для количественной оценки размера и формы мозга на этих изображениях.
Нейроизображения являются ценным инструментом для изучения морфологии мозга в экспериментах на животных моделях. Магнитно-резонансная томография (МРТ) стала стандартным методом для мягких тканей, хотя ее низкое пространственное разрешение накладывает некоторые ограничения на мелких животных. В данной статье мы описываем протокол получения трехмерной (3D) информации высокого разрешения о мозге и черепе новорожденных мышей с помощью микрокомпьютерной томографии (микро-КТ). Протокол включает в себя шаги, необходимые для препарирования образцов, окрашивания и сканирования мозга, а также получения морфометрических измерений всего органа и областей интереса (ROI). Анализ изображений включает в себя сегментацию структур и оцифровку координат точек. В целом, эта работа показывает, что комбинация микро-КТ и раствора Люголя в качестве контрастного вещества является подходящей альтернативой для визуализации перинатального мозга мелких животных. Этот рабочий процесс визуализации находит применение в биологии развития, биомедицине и других науках, заинтересованных в оценке влияния различных генетических факторов и факторов окружающей среды на развитие мозга.
Микрокомпьютерная томография (микро-КТ) является ценным инструментом для различных областей исследований. В биологии он особенно подходит для исследования костей из-за поглощения рентгеновских лучей в минерализованных тканях. Благодаря этой особенности различные вопросы, касающиеся развития костей1, метаболизма2 и эволюции 3,4, а также других тем, были решены с помощью микро-КТ. В 2008 году de Crespigny et al.5 показали, что микро-КТ-изображения мозга взрослых мышей и кроликов могут быть получены с использованием йода в качестве контрастного вещества. Эта работа открыла новое применение для этого метода визуализации, поскольку йод позволил получать изображения из мягких тканей, которые в противном случае были бы нечувствительны к рентгеновским лучам. Таким образом, общей целью совмещения микро-КТ и йодсодержащего контрастного вещества является получение изображений с высоким разрешением, на которых можно различить и идентифицировать мягкие ткани на мезо- или макроанатомическом уровне.
Этот метод обладает значительным потенциалом для исследований, требующих детальной фенотипической характеристики ex vivo небольших образцов, таких как эмбрионы мышей, которые широко используются в экспериментальных схемах6. Йодный контраст в сочетании с микрокомпьютерной томографией был использован для получения объемных количественных оценок органов7 и ориентирных трехмерных (3D) структур 8,9. В последние годы для описания фенотипических особенностей головного мозга грызунов10 применяется микрокомпьютерная томография окрашенных образцов, и были предложены различные усовершенствования методики. Было обнаружено, что для мозга взрослого человека протокол 48-часового погружения в йод с предшествующей стадией перфузии гидрогелем позволяет получать изображения высокого качества11. Gignac et al.12 расширили пределы этого метода, показав, что мозг крыс, окрашенный йодом, может быть обработан для выполнения рутинных гистологических методов. Аналогичным образом, эти процедуры демонстрируют многообещающие результаты для мозга эмбрионов и грызунов до отъема 8,13,14,15.
Несмотря на то, что нейробиология в основном применяет методы, основанные на микроскопе, для оценки различных структурных и функциональных аспектов развития мозга, такие исследования больше подходят для характеристики конкретных клеточных популяций или пространственно ограниченных структур. И наоборот, микро-КТ позволяет описывать целые структуры и получать 3D-модели, которые сохраняют соответствующую пространственную информацию, что является дополнением к микроскопическим методам. Магнитно-резонансная томография (МРТ) также является стандартным методом, применяемым для изучения структурных особенностей мелких животных 16,17,18. Тем не менее, микро-КТ с использованием контрастного вещества имеет два основных преимущества для фиксированных образцов ex vivo: микро-КТ-сканеры в значительной степени дешевле и просты в эксплуатации, а также обеспечивают более высокое пространственное разрешение, чем МРТ12.
Целью данной работы является описание процедуры получения изображений мозга новорожденных мышей с высоким разрешением с помощью микрокомпьютерной томографии после окрашивания раствором Люголя, контрастным веществом на основе йода. Представлен комплексный протокол, который начинается с предварительных этапов, таких как забор образцов и фиксация тканей, и проходит через окрашивание, получение микро-КТ изображений и стандартную обработку. Обработка изображений включает в себя сегментацию 3D-объема всей головы, а также мозга и выбор конкретных анатомических плоскостей для оцифровки координат точек, которые затем могут быть использованы в морфометрическом анализе. Несмотря на то, что основное внимание здесь уделяется мозгу новорожденных мышей, аналогичные стратегии могут быть применены и к другим мягким тканям. Таким образом, представленный здесь протокол является достаточно гибким, чтобы его можно было применять, с незначительными изменениями, к другим типам образцов.
В данной работе представлен краткий протокол сканирования тканей головного мозга новорожденных мышей с помощью микро-КТ с контрастным веществом. Кроме того, он включает в себя простые процедуры для получения количественных и качественных результатов. На основе этих методов могут быт?…
The authors have nothing to disclose.
Благодарим Вэй Лю за техническую помощь. Эта работа финансируется ANPCyT PICT 2017-2497 и PICT 2018-4113.
µCT 35 | Scanco Medical AG | Note that Scanco does not offer the µCT 35 anymore. Their smallest scanner is now the µCT 45 | |
Avizo | Visualization Sciences Group, VSG | ||
C57BL/6 Mice | Bioterio Facultad de Ciencias Veterinarias Universidad Nacional de La Plata | ||
Conical tubes | Daigger | CH-CI4610-1856 | |
Flux cabinet | Esco | AC2-458 | |
Glass beaker | Glassco | GL-229.202.10 | |
Glass bottle | Simax | CFB017 | |
Glass funnel | HDA | VI1108 | |
HCl | Carlo Erba | 403872 | Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
I2 | Cicarelli | 804211 | When preparing I2KI, manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
KI | Cicarelli | PA131542.1210 | When preparing I2KI, manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
Magnetic stirring | Arcano | 4925 | |
NaOH | Cicarelli | 1580110 | Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
Orbital shaker | Biomint | BM021 | |
Paraformaldehyde | Biopack | 2000959400 | Manipulate under a flux cabinet and use personal protective equipment (mask, glass and gloves) |
Paton spatula | Glassco | GL-377.303.01 | |
PBS | Biopack | 2000988800 | |
Plastic Pasteur pipette | Daigger | 9153 | |
R | R Project | The package geomorph for R was used in the protocol (https://cran.r-project.org/web/packages/geomorph/index.html) | |
Scissors | Belmed | ||
Sodium azide | Biopack | 2000163500 | |
Thermometer | Daigger | 7650 |