Summary

Mikobakterilerin Doğal ve Rekombinant Hücre Dışı Veziküllerinin Zenginleştirilmesi

Published: December 08, 2023
doi:

Summary

Bu protokol, Mycobacterium smegmatis’in (Msm) aksenik kültürlerinden doğal mikobakteriyel hücre dışı veziküllerin (mEV’ler) zenginleştirilmesini ve mCherry (kırmızı floresan raportör) içeren rekombinant MsmEV’lerin nasıl tasarlanabileceğini ve zenginleştirilebileceğini detaylandırır. Son olarak, Mycobacterium tuberculosis’in EsxA proteinini içeren MsmEV’lerin zenginleştirilmesiyle yeni yaklaşımı doğrulamaktadır.

Abstract

Mikobakteriler de dahil olmak üzere çoğu bakteri, hücre dışı veziküller (EV’ler) üretir. Bakteriyel EV’ler (bEV’ler), metabolitler, lipitler, proteinler ve nükleik asitler dahil olmak üzere hücresel bileşenlerin bir alt kümesini içerdiğinden, birkaç grup, alt birim aşı adayları olarak koruyucu güçleri açısından bEV’lerin doğal veya rekombinant versiyonlarını değerlendirmiştir. Doğal EV’lerin aksine, rekombinant EV’ler, ilgilenilen bir veya daha fazla immünojen içerecek şekilde moleküler olarak tasarlanmıştır. Son on yılda, farklı gruplar rekombinant bEV’ler üretmek için çeşitli yaklaşımlar araştırdılar. Bununla birlikte, burada, mikobakterilerde rekombinant mikobakteriyel EV’lerin (mEV’ler) tasarımını, yapımını ve zenginleştirilmesini rapor ediyoruz. Bu doğrultuda, model sistem olarak avirulent bir toprak mikobakterisi olan Mycobacterium smegmatis’i (Msm) kullanıyoruz. İlk olarak, Msm’nin yerel EV’lerinin üretimini ve zenginleştirilmesini açıklıyoruz. Daha sonra, kırmızı bir floresan raportör proteini olan mCherry veya Mycobacterium tuberculosis’in belirgin bir immünojeni olan EsxA (Esat-6) içeren rekombinant mEV’lerin tasarımını ve yapımını açıklıyoruz. Bunu, mCherry ve EsxA N-terminalini küçük bir Msm proteini Cfp-29’un C-terminali ile ayrı ayrı kaynaştırarak başarıyoruz. Cfp-29, MsmEV’lerin bol miktarda bulunan birkaç proteininden biridir. Msm’den rekombinant mEV’ler üretme ve zenginleştirme protokolü, Msm’nin yerel EV’lerinin üretilmesi ve zenginleştirilmesi ile aynı kalır.

Introduction

Bulaşıcı hastalıklara karşı çok çeşitli aşıların geliştirilmesine ve uygulanmasına rağmen, bugüne kadar bile, tüm insan ölümlerinin ~%30’u hala bulaşıcı hastalıklardan kaynaklanmaktadır1. Tüberküloz (TB) aşısının ortaya çıkmasından önce – Bacillus Calmette Guerin (BCG) – TB bir numaralı katildi (~10.000 ila 15.000 / 100.000 nüfus)2. BCG’nin uygulanması ve birinci ve ikinci basamak anti-TB ilaçlarına kolay erişim ile 2022 yılına kadar, TB’ye bağlı ölümler 2022 yılına kadar ~1 milyon/yıl’a önemli ölçüde düşmüştür (yani, ~15-20/100.000 nüfus1). Bununla birlikte, dünyanın TB endemik popülasyonlarında, TB’ye bağlı ölümler ~ 100-550 / 100.000 nüfustadurmaya devam etmektedir 1. Uzmanlar bu çarpık sayılara yol açan çeşitli nedenleri kabul ederken, BCG aracılı korumanın yaşamın ilk on yılında bile sürmemesiöne çıkan neden gibi görünmektedir 3,4,5,6,7. Sonuç olarak, BM’nin yenilenen ‘Sürdürülebilir Kalkınma Hedefleri’ ve DSÖ’nün ‘Tüberkülozu Bitirme Stratejisi’ göz önüne alındığında, belki de tüberkülozdan ömür boyu koruma sağlayan BCG’ye çok daha üstün bir aşı alternatifi geliştirmek için ortak bir küresel çaba var.

Bu amaca yönelik olarak, şu anda birkaç grup modifiye / rekombinant BCG suşlarını, BCG dışındaki patojenik olmayan ve zayıflatılmış mikobakteriyel türleri ve alt birim adaylarınıdeğerlendirmektedir 8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18 . Tipik olarak, alt birim aşılar, patojenin birkaç saflaştırılmış (~ 1-6) tam uzunlukta veya kesilmiş immünojenik proteini ile seçici olarak yüklenmiş lipozomlardır. Bununla birlikte, doğal olmayan konformasyonlara sahte katlanmaları ve/veya yüklü proteinler arasındaki rastgele işlevsel olmayan etkileşimler nedeniyle, alt birimler genellikle doğal ve germane epitoplarından yoksundur ve bu nedenle bağışıklık sistemini yeterince hazırlayamaz14,19,20.

Sonuç olarak, bakterilerin hücre dışı vezikülleri (EV’ler) umut verici bir alternatif olarak hız kazanmıştır 21,22,23,24,25,26. Tipik olarak, bakteriyel EV’ler (bEV’ler), nükleik asitlerin, lipitlerin ve yüzlerce metabolit ve proteinin bazı kısımları dahil olmak üzere hücresel bileşenlerinin bir alt kümesini içerir27,28. Birkaç saflaştırılmış proteinin yapay olarak yüklendiği lipozomların aksine, bEV’ler, özellikle adjuvanların ve Toll benzeri reseptör (TLR) agonistlerinin desteği/yardımı olmadan, bağışıklık sistemini hazırlamak için daha iyi bir eğilime sahip, doğal olarak yüklenmiş, doğal olarak katlanmış yüzlerce protein içerir27,28,29. Bu araştırma hattında, biz ve diğerleri, mikobakteriyel EV’lerin BCG30’a potansiyel alt birim güçlendiriciler olarak faydasını araştırdık. bEV’lerin tek tip antijen yüklerinden yoksun olduğuna dair endişelere rağmen, zayıflatılmış Neisseria meningitidis’ten elde edilen EV’ler, insanları serogrup B meningokoklarına karşı başarıyla korumuştur31,32.

En azından teorik olarak, BCG’yi iyi bir şekilde artırabilecek en iyi EV’ler, patojenik bakterilerden zenginleştirilmiş EV’lerdir. Bununla birlikte, patojenik mikobakteri tarafından üretilen EV’leri zenginleştirmek pahalı, zaman alıcı ve risklidir. Ek olarak, patojen kaynaklı EV’ler koruyucu olmaktan çok öldürücü olabilir. Potansiyel riskler göz önüne alındığında, burada, avirulan bir mikobakteri olan aksenik olarak yetiştirilen Msm tarafından üretilen EV’lerin zenginleştirilmesi için iyi test edilmiş bir protokol bildiriyoruz.

Bununla birlikte, birkaç patojen protein ortologunu kodlamasına rağmen, avirulent mikobakteriler, bağışıklık sistemini korumaya yeterince hazırlamak için gerekli olan birkaç aşı antijeni/patojenik protein epitopundan yoksundur33. Bu nedenle, moleküler mühendislik yoluyla Msm’nin rekombinant EV’lerini oluşturmayı ve zenginleştirmeyi de araştırdık, öyle ki Msm’de ifade edilen ve çevrilen herhangi bir patojenik proteinin önemli bir kısmı EV’lerine ulaşmalıdır. Msm EV’lerin en bol bulunan 10 proteininden bir veya daha fazlasının, ilgilenilen proteine kaynaştığında bu tür bir translokasyona yardımcı olacağını varsaydık.

Laboratuvarımızda mikobakteriyel EV’lerin (mEV’ler) zenginleştirilmesini standartlaştırmaya başlarken, 2011 yılında Prados-Rosales ve ark. ilk olarak mEV’lerin in vitro30’un görselleştirilmesini ve zenginleştirilmesini bildirdi. Daha sonra, 2014 yılında, aynı grup 2011 yöntem34’ün değiştirilmiş bir versiyonunu yayınladı. 2015 yılında, Lee ve ark. ayrıca mikobakterilerin35 aksenik kültürlerinden mEV zenginleştirme için bağımsız olarak standartlaştırılmış bir yöntem bildirdiler. Her iki protokolüde 34,35 birleştirerek ve kapsamlı standardizasyondan sonra modifikasyonlarımızdan birkaçını dahil ederek, burada mikobakterilerin 36 aksenik kültürlerinden mEV’leri rutin olarak zenginleştirmeye yardımcı olan bir protokolü açıklıyoruz.

Burada, genel olarak mikobakteriyel EV’lerin zenginleştirilmesi için yayınlanmış bir protokol36’nın bir uzantısı olan Msm’ye özgü EV’lerin zenginleştirilmesini özellikle detaylandırıyoruz. Ayrıca, mCherry proteinini (kırmızı floresan raportör olarak) ve EsxA’yı (Esat-6)37,38,39, baskın bir immünojen ve Mycobacterium tuberculosis’in potansiyel bir alt birim aşılayıcısı olarak içeren rekombinant mEV’lerin (R-mEV’ler) nasıl oluşturulacağını da detaylandırıyoruz. R-mEV’leri zenginleştirme protokolü, Msm’den yerel EV’leri zenginleştirmek için tanımladığımız protokolle aynı kalır.

Protocol

1. Mycobacterium smegmatis, Escherichia coli ve türevlerinin büyüme koşulları MedyaMiddlebrook 7H9 sıvı et suyuGerekli hacimde çift damıtılmış suyu (ddw) bir cam beherde mikrodalgada ~45-50 oC’ye önceden ısıtarak Tween-80 stok çözeltisi hazırlayın, uygun bir ölçüm silindiri kullanarak gerekli hacimde Tween-80 ekleyin ve Tween-80’i homojen bir çözelti haline getirmek için küçük bir…

Representative Results

Hem doğal hem de rekombinant mEV’lerin (R-mEV’ler) zenginleşmesini göstermek için model mikobakteri olarak M. smegmatis (Msm) kullanıyoruz. Bu şematik olarak özetlenen mEV zenginleştirme protokolü (Şekil 1), Msm’nin R-mEV’lerinin ve Mtb’nin yerel EV’lerinin zenginleştirilmesi için de çalışır (1.2’nin protokol notlarında olduğu gibi küçük değişikliklerle). Zenginleştirilmiş mEV’lerin görselleştirilmesi, bunların bir transmisyon elektron mikroskobu<sup clas…

Discussion

BCG’den daha üstün olan ve BCG’nin yerini alabilecek yeni bir TB aşısı geliştirmek zorlu bir zorluk olmaya devam ettiğinden, alternatif olarak birkaç grup BCG’nin gücünü artırabilecek ve koruyucu süresini uzatabilecek farklı alt birim TB aşılarının keşfini sürdürmektedir48,49. Potansiyel alt birimler ve doğal adjuvanlar olarak bakteriyel EV’lere (bEV’ler) artan ilgi göz önüne alındığında50,51,<sup cl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, M. smegmatis mc2155 hissesini paylaşma nezaketini gösterdiği için Prof. Sarah M. Fortune’a içtenlikle teşekkür eder. Ayrıca, Şekil 1 için bazı temel unsurları sağladığı için Servier Medical Art’ı (smart.servier.com) kabul ederler. mEV zenginleştirme için inkübatör çalkalayıcıların, santrifüjlerin ve ultrasantrifüjlerin uzun kullanımı sırasında hasta ayarlamaları için laboratuvar üyelerinin geri kalanının desteğini içtenlikle kabul ederler. Ayrıca, gerekli cam eşyaların ve sarf malzemelerinin her zaman mevcut ve kullanışlı olduğundan emin olduğu için laboratuvar asistanı Bay Surjeet Yadav’a da teşekkür ediyorlar. Son olarak, THSTI’nin idari, satın alma ve finans ekiplerine sürekli destekleri ve projenin sorunsuz yürütülmesine yardımcı oldukları için teşekkür ederler.

Materials

A2 type Biosafety Cabinet Thermo Fisher Scientific, USA 1300 series
Bench top Centrifuge Eppendorf, USA 5810 R
BstB1, HindIII, HpaI NEB, USA NEB
Cell densitometer GE Healthcare, USA Ultraspec 10
Citric Acid Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Dibasic Potassium Phosphate Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Double Distilled Water Merck, USA ~18.2 MW/cm @ 25 oC
Electroporation cuvettes Bio-Rad, USA 2 mm
Electroporator Bio-Rad, USA Electroporator
EsxA-specific Ab Abcam, UK Rabbit polyclonal
Ferric Ammonium Citrate Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Floor model centrifuge Thermo Fisher Scientific, USA Sorvall RC6 plus
Glassware Borosil, INDIA 1 L Erlenmeyer flasks
Glycerol Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
HEPES and Sodium Chloride Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Incubator shakers Thermo Fisher Scientific, USA MaxQ 6000 & 8000
L-Asparagine Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Luria Bertani Broth and Agar, Miller Hi Media, INDIA Hi Media
Magnesium Sulfate Heptahydrate Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Magnetic stirrer Tarsons, INDIA Tarsons
mCherry-specific Ab Abcam, UK Rabbit monoclonal
Microwave LG, INDIA MC3286BLT
Middlebrook 7H9 Broth BD, USA Difco Middlebrook 7H9 Broth
Middlebrook ADC enrichment BD, USA BBL Middlebrook ADC enrichment
Nanodrop Thermo Fisher Scientific, USA Spectronic 200 UV-Vis
NEB5a NEB, USA a derivative of DH5a
Optiprep (Iodixanol) Merck, USA Available as 60% stock solution (in water)
PCR purification kit Hi Media, INDIA Hi Media
pH Meter Mettler Toledo, USA Mettler Toledo
Plasmid DNA mini kit Hi Media, INDIA Hi Media
Plate incubator Thermo Fisher Scientific, USA New Series
Plasmid pMV261 Addgene, USA *
*The   plasmid   is   no   more available in this plasmid bank
Shuttle vector
Proof-reading DNA Polymerase Thermo Fisher Scientific, USA Phusion DNA Plus Polymerase
Q5 Proof-reading DNA Polymerase NEB, USA NEB
Refrigerated circulating water bath Thermo Fisher Scientific, USA R20
Middlebrock 7H11 Agar base BD, USA BBL Seven H11 Agar base
SOC broth Hi Media, INDIA Hi Media
Sodium Hydroxide Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
T4 DNA Ligase NEB, USA NEB
Tween-80 Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
Ultracentrifuge Beckman Coulter, USA Optima L100K
Ultracentrifuge tubes – 14 mL Beckman Coulter, USA Polyallomer type – ultra clear type in SW40Ti rotor
Ultracentrifuge tubes – 38 mL Beckman Coulter, USA Polypropylene type– cloudy type for SW28 rotor
Ultrasonics cleaning waterbath sonicator Thermo Fisher Scientific, USA Sonicator – bench top model
0.22 µm Disposable filters Thermo Fisher Scientific, USA Nunc-Nalgene
30-kDa Centricon concentrators Merck, USA Amicon Ultra centrifugal filters – Millipore
3X FLAG antibody Sigma-Aldrich, Merck, USA Sigma Aldrich
400 mL Centrifuge bottles Thermo Fisher Scientific, USA Nunc-Nalgene
50 mL Centrifuge tubes Corning, USA Sterile, pre-packed
Bacteria
Strain
Escherichia coli NEB, USA NEB 5-alpha (a derivative of DH5α).
Msm expressing cfp29::mCherry This study MC2 155
Msm expressing cfp29::esxA This study MC2 155
Msm expressing cfp29::esxA::3X FLAG This study MC2 155
Mycobacterium smegmatis (Msm) Prof. Sarah M. Fortune, Harvard Univ, USA  MC2 155

References

  1. . Global Tuberculosis Report 2022. , (2022).
  2. Luca, S., Mihaescu, T. History of BCG vaccine. Mædica. 8 (1), 53-58 (2013).
  3. Palmer, C. E., Long, M. W. Effects of infection with atypical mycobacteria on BCG vaccination and tuberculosis. The American Review of Respiratory Disease. 94 (4), 553-568 (1966).
  4. Brandt, L., et al. Failure of the Mycobacterium bovis BCG vaccine: some species of environmental mycobacteria block multiplication of BCG and induction of protective immunity to tuberculosis. Infection and Immunity. 70 (2), 672-678 (2002).
  5. Andersen, P., Doherty, T. M. The success and failure of BCG – implications for a novel tuberculosis vaccine. Nature Reviews. Microbiology. 3 (8), 656-662 (2005).
  6. Kumar, P. A perspective on the success and failure of BCG. Frontiers in Immunology. 12, 778028 (2021).
  7. Fine, P. E. Variation in protection by BCG: implications of and for heterologous immunity. Lancet. 346 (8986), 1339-1345 (1995).
  8. Triccas, J. A. Recombinant BCG as a vaccine vehicle to protect against tuberculosis. Bioengineered Bugs. 1 (2), 110-115 (2010).
  9. Dietrich, G., Viret, J. -. F., Hess, J. Mycobacterium bovis BCG-based vaccines against tuberculosis: novel developments. Vaccine. 21 (7-8), 667-670 (2003).
  10. Singh, V. K., Srivastava, R., Srivastava, B. S. Manipulation of BCG vaccine: a double-edged sword. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 35 (4), 535-543 (2016).
  11. Bastos, R. G., Borsuk, S., Seixas, F. K., Dellagostin, O. A. Recombinant Mycobacterium bovis BCG. Vaccine. 27 (47), 6495-6503 (2009).
  12. Kaufmann, S. H. E., Gengenbacher, M. Recombinant live vaccine candidates against tuberculosis. Current Opinion in Biotechnology. 23 (6), 900-907 (2012).
  13. Yuan, X., et al. A live attenuated BCG vaccine overexpressing multistage antigens Ag85B and HspX provides superior protection against Mycobacterium tuberculosis infection. Applied Microbiology and Biotechnology. 99 (24), 10587-10595 (2015).
  14. Vartak, A., Sucheck, S. J. Recent advances in subunit vaccine carriers. Vaccines. 4 (2), 12 (2016).
  15. Lindenstrøm, T., et al. Tuberculosis subunit vaccination provides long-term protective immunity characterized by multifunctional CD4 memory T cells1. The Journal of Immunology. 182 (12), 8047-8055 (2009).
  16. Liu, Y., et al. A subunit vaccine based on rH-NS induces protection against Mycobacterium tuberculosis infection by inducing the Th1 immune response and activating macrophages. Acta Biochimica et Biophysica Sinica. 48 (10), 909-922 (2016).
  17. Ning, H., et al. Subunit vaccine ESAT-6:c-di-AMP delivered by intranasal route elicits immune responses and protects against Mycobacterium tuberculosis infection. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 11, 647220 (2021).
  18. Woodworth, J. S., et al. A Mycobacterium tuberculosis-specific subunit vaccine that provides synergistic immunity upon co-administration with Bacillus Calmette-Guérin. Nature Communications. 12 (1), 6658 (2021).
  19. Moyle, P. M., Toth, I. Modern subunit vaccines: development, components, and research opportunities. ChemMedChem. 8 (3), 360-376 (2013).
  20. Baxter, D. Active and passive immunity, vaccine types, excipients and licensing. Occupational Medicine. 57 (8), 552-556 (2007).
  21. Lee, W. -. H., et al. Vaccination with Klebsiella pneumoniae-derived extracellular vesicles protects against bacteria-induced lethality via both humoral and cellular immunity. Experimental & Molecular Medicine. 47 (9), e183-e183 (2015).
  22. Micoli, F., et al. Comparative immunogenicity and efficacy of equivalent outer membrane vesicle and glycoconjugate vaccines against nontyphoidal Salmonella. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (41), 10428-10433 (2018).
  23. Obiero, C. W., et al. A phase 2a randomized study to evaluate the safety and immunogenicity of the 1790GAHB generalized modules for membrane antigen vaccine against Shigella sonnei administered intramuscularly to adults from a shigellosis-endemic country. Frontiers in Immunology. 8, 1884 (2017).
  24. Sedaghat, M., et al. Evaluation of antibody responses to outer membrane vesicles (OMVs) and killed whole cell of Vibrio cholerae O1 El Tor in immunized mice. Iranian Journal of Microbiology. 11 (3), 212-219 (2019).
  25. Adriani, R., Mousavi Gargari, S. L., Nazarian, S., Sarvary, S., Noroozi, N. Immunogenicity of Vibrio cholerae outer membrane vesicles secreted at various environmental conditions. Vaccine. 36 (2), 322-330 (2018).
  26. Roier, S., et al. Intranasal immunization with nontypeable Haemophilus influenzae outer membrane vesicles induces cross-protective immunity in mice. PLOS ONE. 7 (8), e42664 (2012).
  27. Furuyama, N., Sircili, M. P. Outer membrane vesicles (OMVs) produced by gram-negative bacteria: structure, functions, biogenesis, and vaccine application. BioMed Research International. 2021, e1490732 (2021).
  28. Buzas, E. I. The roles of extracellular vesicles in the immune system. Nature Reviews Immunology. 23 (4), 236-250 (2022).
  29. Cai, W., et al. Bacterial outer membrane vesicles, a potential vaccine candidate in interactions with host cells based. Diagnostic Pathology. 13 (1), 95 (2018).
  30. Prados-Rosales, R., et al. Mycobacteria release active membrane vesicles that modulate immune responses in a TLR2-dependent manner in mice. The Journal of Clinical Investigation. 121 (4), 1471-1483 (2011).
  31. Bai, X., Findlow, J., Borrow, R. Recombinant protein meningococcal serogroup B vaccine combined with outer membrane vesicles. Expert Opinion on Biological Therapy. 11 (7), 969-985 (2011).
  32. Nagaputra, J. C., et al. Neisseria meningitidis native outer membrane vesicles containing different lipopolysaccharide glycoforms as adjuvants for meningococcal and nonmeningococcal antigens. Clinical and Vaccine Immunology: CVI. 21 (2), 234-242 (2014).
  33. Echeverria-Valencia, G., Flores-Villalva, S., Espitia, C. I. Virulence factors and pathogenicity of Mycobacterium. Mycobacterium – Research and Development. IntechOpen. , (2017).
  34. Prados-Rosales, R., Brown, L., Casadevall, A., Montalvo-Quirós, S., Luque-Garcia, J. L. Isolation and identification of membrane vesicle-associated proteins in Gram-positive bacteria and mycobacteria. MethodsX. 1, 124-129 (2014).
  35. Lee, J., et al. Proteomic analysis of extracellular vesicles derived from Mycobacterium tuberculosis. Proteomics. 15 (19), 3331-3337 (2015).
  36. Das, S., et al. Development of DNA aptamers to visualize release of mycobacterial membrane-derived extracellular vesicles in infected macrophages. Pharmaceuticals. 15 (1), 45 (2022).
  37. Brandt, L., Elhay, M., Rosenkrands, I., Lindblad, E. B., Andersen, P. ESAT-6 subunit vaccination against Mycobacterium tuberculosis. Infection and Immunity. 68 (2), 791-795 (2000).
  38. Kim, W. S., Kim, H., Kwon, K. W., Cho, S. -. N., Shin, S. J. Immunogenicity and vaccine potential of InsB, an ESAT-6-like antigen identified in the highly virulent Mycobacterium tuberculosis Beijing K strain. Frontiers in Microbiology. 10, 220 (2019).
  39. Valizadeh, A., et al. Evaluating the performance of PPE44, HSPX, ESAT-6 and CFP-10 factors in tuberculosis subunit vaccines. Current Microbiology. 79 (9), 260 (2022).
  40. Tang, Y., et al. Cryo-EM structure of Mycobacterium smegmatis DyP-loaded encapsulin. Proceedings of the National Academy of Sciences. 118 (16), (2021).
  41. Rosenkrands, I., et al. Identification and characterization of a 29-kilodalton protein from Mycobacterium tuberculosis culture filtrate recognized by mouse memory effector cells. Infection and Immunity. 66 (6), 2728-2735 (1998).
  42. Gu, S., et al. Comprehensive proteomic profiling of the membrane constituents of a Mycobacterium tuberculosis strain. Molecular & cellular proteomics: MCP. 2 (12), 1284-1296 (2003).
  43. Xiong, Y., Chalmers, M. J., Gao, F. P., Cross, T. A., Marshall, A. G. Identification of Mycobacterium tuberculosis H37Rv integral membrane proteins by one-dimensional gel electrophoresis and liquid chromatography electrospray ionization tandem mass spectrometry. Journal of Proteome Research. 4 (3), 855-861 (2005).
  44. Chen, X., Zaro, J. L., Shen, W. -. C. Fusion protein linkers: property, design and functionality. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (10), 1357-1369 (2013).
  45. Klein, J. S., Jiang, S., Galimidi, R. P., Keeffe, J. R., Bjorkman, P. J. Design and characterization of structured protein linkers with differing flexibilities. Protein Engineering, Design and Selection. 27 (10), 325-330 (2014).
  46. Green, M. R., Sambrook, J. . Molecular cloning, a laboratory manual, 4th Edition. , (2012).
  47. Atmakuri, K., Ding, Z., Christie, P. J. VirE2, a Type IV secretion substrate, interacts with the VirD4 transfer protein at cell poles of Agrobacterium tumefaciens. MolecularMicrobiology. 49 (6), 1699-1713 (2003).
  48. Woodworth, J. S., et al. A Mycobacterium tuberculosis-specific subunit vaccine that provides synergistic immunity upon co-administration with Bacillus Calmette-Guérin. Nature Communications. 12 (1), 6658 (2021).
  49. Khademi, F., Derakhshan, M., Yousefi-Avarvand, A., Tafaghodi, M., Soleimanpour, S. Multi-stage subunit vaccines against Mycobacterium tuberculosis: an alternative to the BCG vaccine or a BCG-prime boost. Expert Review of Vaccines. 17 (1), 31-44 (2018).
  50. Prior, J. T., et al. Bacterial-derived outer membrane vesicles are potent adjuvants that drive humoral and cellular immune responses. Pharmaceutics. 13 (2), 131 (2021).
  51. Tan, K., Li, R., Huang, X., Liu, Q. Outer membrane vesicles: current status and future direction of these novel vaccine adjuvants. Frontiers in Microbiology. 9, 783 (2018).

Play Video

Cite This Article
Jayaswal, P., Ilyas, M., Singh, K., Kumar, S., Sisodiya, L., Jain, S., Mahlawat, R., Sharma, N., Gupta, V., Atmakuri, K. Enrichment of Native and Recombinant Extracellular Vesicles of Mycobacteria. J. Vis. Exp. (202), e65138, doi:10.3791/65138 (2023).

View Video