ここでは、特定の微小管修飾酵素を欠くか含む可能性のある哺乳類細胞から内因性チューブリンを抽出し、特定の修飾のために富んだ微小管を得るためのプロトコルについて説明します。次に、抽出した微小管を精製した微小管結合タンパク質で修飾して、クライオ電子顕微鏡用のグリッドを準備する方法について説明します。
微小管は細胞骨格の重要な部分であり、細胞内の組織化、細胞分裂、および遊走に関与しています。翻訳後修飾に応じて、微小管は様々な相互作用タンパク質と複合体を形成することができる。これらの微小管-タンパク質複合体は、しばしばヒトの疾患に関与しています。このような錯体の構造を理解することは、その作用機序の解明に有用であり、クライオ電子顕微鏡(クライオEM)で研究することができます。このような構造研究のための複合体を得るためには、特異的な翻訳後修飾を含む、または欠失する微小管を抽出することが重要である。ここでは、遺伝子組み換え哺乳類細胞から内因性チューブリンを抽出するための簡略化されたプロトコルについて述べ、微小管重合とそれに続く超遠心を用いた沈降を含む。抽出されたチューブリンは、目的の精製された微小管結合タンパク質に結合した微小管を有するクライオ電子顕微鏡グリッドを調製するために使用できます。一例として、3つの既知のチューブリン脱チロシン化酵素を欠くように操作された細胞株からの完全にチロシン化された微小管の抽出を実証します。次に、これらの微小管を使用して、クライオEMグリッド上で酵素的に不活性な微小管関連チューブリンデチロシナーゼとのタンパク質複合体を作成します。
微小管は細胞骨格の重要な部分です。それらは細胞の移動や分裂などのさまざまな機能に関与していますが、細胞内の組織化にも貢献しています。微小管は、さまざまな機能的運命に適応するために、さまざまな微小管関連タンパク質(MAP)や酵素などのタンパク質と相互作用し、これらを総称して「微小管相互作用タンパク質」と呼びます。これらのタンパク質の微小管結合は、一般に「チューブリンコード」と呼ばれるさまざまなチューブリン修飾によって導かれる可能性があります1。この好みの例は、p1503の有糸分裂セントロメア関連キネシン(MCAK)2およびダイニン-ダイナクチンCAP-Glyドメインであり、これらは好ましくはチロシン化チューブリンと会合し、一方、キネシンモーターセントロメア関連タンパク質E(CENP-E)4およびキネシン-25は、C末端チロシンを欠くチューブリンを好む。
微小管-タンパク質相互作用の研究にはさまざまな方法を使用できますが、クライオ電子顕微鏡(クライオEM)は、原子に近い分解能でこれらの相互作用を研究するためによく使用されます6,7。近年、クライオEM構造により、ダイニン8,9,10やキネシン11などの大きなモータータンパク質、EB312,13やMCAK 14などの+TIPタンパク質、タウ15,16などの他のタンパク質、さらにはパクリタキセル、ペロルシド、ザンパノリドなどの小分子がどのようになっているかが明らかになりました17微小管と相互作用します。微小管−タンパク質相互作用を研究するために、微小管は典型的にはブタの脳から抽出される18。これに続いて、クライオEM微小管構造を含むほとんどのin vitro研究は、ブタ脳チューブリンを使用して実施されます。したがって、これらの研究の結果は、組織と細胞型の間のチューブリン修飾19の不均一な性質の重要性を曖昧にしています。これは、微小管に結合するために特定の修飾を必要とする、または好むタンパク質を調査するときに特定の問題を引き起こします。これは、微小管デチロシナーゼMATCAPの基質であるチロシン化チューブリンで説明できます。
脱チロシン化は、α-チューブリンのC末端アミノ酸チロシンが欠損しているチューブリン修飾であり、これは有糸分裂、心臓、および神経機能に関連しています20。完全にチロシン化された微小管はMATCAPの理想的な基質ですが、この組織中のバソヒビン21,22およびMATCAP 23デチロシナーゼの機能のために、ブタの脳からの市販の微小管にはほとんど存在しません22,23,24,25,26 .市販のHeLaチューブリンは主にチロシン化微小管を含んでいますが、脱チロシン化が起こる可能性があり、したがって、このチューブリン源はクライオEM分析用の均一なサンプルを作成するのにはあまり適していません。
MATCAPの微小管への結合を刺激し、構造解析用の均質なサンプルを作成するために、完全にチロシン化された微小管の供給源を探しました。この目的のために、MATCAPおよびバソヒビン欠損細胞株が作成され、完全にチロシン化された微小管を抽出するために使用された。抽出手順は、微小管の重合と解重合の繰り返しサイクルを使用して、脳組織または細胞からチューブリンを抽出する確立されたプロトコルに基づいていました18、27、28、29、30、単一の重合ステップとグリセロールクッション上での遠心分離のみで。次に、MATCAPを例に、これらの微小管をクライオEM研究にどのように使用できるかを示します。クライオEMグリッドを調製するために、低塩濃度での2段階の適用プロトコルについて説明します。この論文の方法は、クライオEM分析を実行するのに十分な量と純度でカスタマイズ可能な微小管の抽出について説明し、これらの微小管を使用してクライオEMグリッド上にタンパク質-微小管複合体を作成する方法に関する詳細なプロトコルを提供します。
この方法では、細胞株から内因性チューブリンを迅速に抽出し、その後、それらの微小管をクライオEMグリッド上に装飾する方法を説明しています。微小管は温度に敏感です。それらは寒い環境で解重合し、暖かい環境で重合します31。したがって、チューブリンを可溶化するために、4°Cで超音波処理およびクリアランススピン(ステップ1.1-1.5)を実行することが重要です。このステップで解重合しないほど微小管を安定化させる要因がある場合、これらの微小管と安定化因子は、最初のクリアランススピン後にペレットに廃棄されます。微小管を(再)重合した後は、重合した微小管を含む溶液を常に保温することが重要です。VASH1、VASH2、およびMATCAPタンパク質が不足しているHCT116細胞から微小管を抽出しました。組織と同様に他の細胞株を使用して微小管を抽出することができます29が、汚染物質、チューブリンアイソタイプ、および収量は、ここに記載されているものとは非常に異なる場合があります。修飾酵素を含む過剰発現プラスミドは、特定のチューブリン修飾を導入するためにも使用できます。
他のプロトコル18、27、28、29、30は、微小管の重合および解重合の複数サイクルを使用して、他の相互作用タンパク質の空隙微小管を得る。ここでは、これらのプロトコルを簡素化し、微小管を一度だけ重合しました。この単一の重合のために、これらの微小管は他の微小管相互作用タンパク質と共沈降する可能性があります。しかし、このプロトコルは、クライオEMの目的で十分に純粋な微小管を提供することを発見しました。特定のアッセイでより純粋なサンプルが必要な場合は、重合と解重合の追加のサイクルでより純粋なサンプルが得られる可能性がありますが、これは微小管の収量を犠牲にする可能性があります。このプロトコルでは、パクリタキセルを使用して微小管を重合しました。しかし、パクリタキセルは微小管格子を特定のねじれと上昇に偏らせる可能性があり、目的のタンパク質の微小管親和性を妨げる可能性があります。パクリタキセルが不適切な場合は、他の微小管安定化試薬を使用できます。これらの試薬の例は、ペロルシドなどの非タキサン分子またはGMPCPP17,32などの非加水分解性GTP変異体である。
クライオEMグリッド上の微小管に結合するタンパク質を構造的に調べるには、目的のタンパク質を微小管に十分な量結合させる必要があります。一般的に発生する問題は、溶液中で安定なタンパク質複合体がグリッド上でバラバラになることです。グリッド上にタンパク質複合体を形成するためには、まず微小管を層状にし、次に低塩濃度の微小管結合タンパク質を微小管被覆グリッドに適用し、タンパク質複合体をグリッド上で直接組み立てることが重要でした。他の人も同様に、微小管装飾を成功させるための低塩33,34プロトコルおよび2段階適用34,35,36プロトコルを報告している。塩濃度が低いと、静電荷が低下するため、タンパク質複合体がより安定した相互作用に偏る可能性があります。ただし、塩濃度が低いため、目的のタンパク質が沈殿するリスクがあります。したがって、グリッドをガラス化する直前まで、タンパク質を生理学的に関連する塩濃度またはその周辺に保つことを強くお勧めします。この2段階のアプリケーションプロトコルは、ブロッティングまたはプランジ凍結ステップ中にタンパク質複合体がバラバラになるのを防ぐ可能性があります。このプロトコルでは、Vitrobotを使用しました。ただし、より高速なガラス化法(VitroJet)またはブロットフリーグリッド(Puffalot)または両方の特性を持つデバイス(カメレオン)の使用は、2段階のアプリケーションを克服する可能性がありますが、これらは現在、テストに広く利用できません。
再構築されたクライオEM密度の最終的な分解能は、微小管に対する微小管結合タンパク質の動きや達成できる装飾のレベルなど、多くの要因の影響を受ける可能性があります。より高い微小管装飾は、3D密度再構成で得られる最終的な解像度に有益である可能性が高い。これは、微小管結合タンパク質の精製中に得られる最高タンパク質濃度、微小管相互作用タンパク質が凝集することなく耐えることができる最低塩濃度、および微小管相互作用タンパク質の結合モード(例えば、タンパク質が複数のチューブリン二量体にまたがる可能性があるため、1:1の結合比を妨げる)などのいくつかの要因によって制限され得る。クライオEM再構成の分解能は、まばらに装飾された微小管によって損なわれる可能性がありますが、計算解析は、最近報告された微小管-タンパク質複合体構造が非常にまばらに装飾されたことに代表されるように、多くの問題を回避できます8。
ここで説明するプロトコルは、クライオEMの目的に適した微小管を取得するための迅速で低コストの方法を提供します。市販のブタ脳チューブリンとは対照的に、MATCAP欠損およびバソヒビン欠損HCT116細胞由来の微小管は完全にチロシン化されています(図4)。高価な試薬である市販のHeLaチューブリンは、原則として比較的均一にチロシン化されており、グルタミル化などの他の修飾4 はほとんど含まれていませんが、バッチは異なる可能性があり、修飾は in vitroでのみ達成できました。カスタムメイドの細胞株から微小管を抽出する利点は、チューブリンデチロシナーゼなどのチューブリン修飾酵素を過剰発現または欠失させて、より均質な微小管のプールを作成する柔軟性があることです。これは、クライオEMサンプルの装飾と均一性に利益をもたらし、最終的にはこのサンプルに由来するクライオEM密度マップと分子構造の容易さと品質に利益をもたらします。
The authors have nothing to disclose.
Sixma、Brummelkamp、Perrakisグループのすべてのメンバーの実りある科学的議論と快適な作業環境の提供に感謝し、特に、 図3Cに示されているタンパク質濃度の決定を支援してくれたJan Sakoltchik(「人2」)に感謝します。また、NKIクライオEM施設とライデン大学のオランダ電子ナノスコピーセンター(NeCEN)の支援にも感謝します。この作業は、T.R.B.に授与されたNWO Vici助成金016.Vici.170.033によってサポートされました。A.P.とT.R.B.はオンコード調査員であり、NWO ENW(OCENW.L.L.はオーストリア科学基金(FWF JB4448-B)から資金提供を受けました。この研究は、オランダ癌協会とオランダ保健福祉スポーツ省の制度的助成金によって支援されました。
Material | |||
0.05% trypsin-EDTA | Gibco | 25300-054 | Cell culture |
10 cm plate | Falcon | 353003 | Cell culture |
15 cm plate | Thermo FisherScientific | 168381 | Cell culture |
50 mL tubes | Sarstedt | 62.547255 | Cell culture |
300 mesh quantifoil holey carbon copper grid R1.2/1.3 | Quantifoil Micro Tools | N1-C14nCu30-01 | Cryo-EM grid preparation |
Cell scrapers | Falcon | 353085 | Cell culture |
DMEM | Gibco | 41966-029 | Cell culture |
EDTA | Merck | 108418 | Cell culture |
EGTA | Sigma Aldrich | E3899 | Microtubule extraction |
Ethane gas | Cryo-EM grid preparation | ||
FCS | Serana | s-FBS-EU-015 | Cell culture |
Glycerol | VWR | 24.397.296 | Microtubule extraction |
GTP | Fisher Scientific | G8877-1G | Microtubule extraction |
HCT116 VASH1 VASH2 MATCAP KO cells | self made | Wild type HCT116 cells RRID: CVCL_0291 | Cell culture |
KOH | Merck | 1.05033 | Microtubule extraction |
MgCl2 | Merck | 105833 | Microtubule extraction |
Microtubule binding protein | self made | Cryo-EM grid preparation | |
Needle | BD microlance | 300600 | Microtubule extraction |
Paclitaxel | Santa Cruz Biotechnology | sc-212517 | caution toxic, microtubule extraction |
PBS | Fisher Scientific | BP399 | Cell culture |
Penicillin and streptomycin | Sigma Aldrich | P0781-100mL | Cell culture |
PIPES | Merck | P8203 | Microtubule extraction |
PMSF (in EtOH) | Roche | 16837091001 | Microtubule extraction |
SDS sample buffer | self made | Quality assessment | |
Syringe | BD plastipak | 309658 | Microtubule extraction |
Ultra protease tables mini | Fisher Scientific | NC0975224 | Microtubule extraction |
Whatman blotting paper | Whatman | 47000-100 | Cryo-EM grid preparation |
Equipment | |||
Flow hood | cell culture | ||
GloQube | Quorum | Cryo-EM grid preparation | |
Grid storage box | SWISSCI | 41018 | Cryo-EM grid storage |
Heating block, electric or metal | to warm the buffers | ||
Incubator, cell culture | NUAIR | cell culture | |
LN2 dewar | Cryo-EM grid storage | ||
Plunge-tweezers | Electron Microscopy Sciences | 0508-L5-PS | Cryo-EM grid preparation, hole drilled in top to fit the vitrobot |
Polystyrene box | to keep the buffers warm | ||
Sonicator | Qsonica | Q700 | Microtubule extraction |
Standard light microscope | Olympus | CKX 41 | Quality assessment |
TLA 100.3 rotor | Beckman Coulter | Microtubule extraction | |
TLA 120.2 rotor | Beckman Coulter | Microtubule extraction | |
Tubes for TLA 100.3 rotor | Beckman Coulter | 326819 | Microtubule extraction |
Tubes for TLA 120.2 rotor | Beckman Coulter | 347356 | Microtubule extraction |
Ultracentrifuge | Beckman Coulter | Optima MAX-XP | Microtubule extraction |
Vitrobot | FEI, ThermoFischer Scientific | mark IV | Cryo-EM grid preparation |
Vitrobot polystyrene container assembly with metal ethane cup | ThermoFisher Scientific | 200703 | Cryo-EM grid preparation |
Water bath | cell culture |