Este protocolo descreve uma metodologia para a preparação de esferas de látex para ensaios utilizando anticorpos IgY para detecção de antígenos.
Os imunoensaios são testes importantes para a detecção de inúmeros alvos moleculares. Dentre os métodos atualmente disponíveis, o ensaio citométrico de contas tem ganhado destaque nas últimas décadas. Cada microesfera lida pelo equipamento representa um evento de análise da capacidade de interação entre as moléculas em teste. Milhares desses eventos são lidos em um único ensaio, garantindo alta precisão e reprodutibilidade do ensaio. Essa metodologia também pode ser utilizada na validação de novos insumos, como anticorpos IgY, para o diagnóstico de doenças. Esses anticorpos são obtidos através da imunização das galinhas com o antígeno de interesse e, em seguida, da extração da imunoglobulina da gema dos ovos dos animais; Portanto, este é um método indolor e altamente produtivo para a obtenção dos anticorpos. Além de uma metodologia para a validação de alta precisão da capacidade de reconhecimento de anticorpos deste ensaio, este trabalho também apresenta um método para extração desses anticorpos, determinação das melhores condições de acoplamento para os anticorpos e esferas de látex e determinação da sensibilidade do teste.
Dentre as técnicas de imunoensaio voltadas para o diagnóstico de doenças, o ensaio citométrico de contas tem emergido como uma abordagem altamente sensível e confiável, pois permite a análise de milhares de partículas em um único ensaio1. Essa técnica, além de apresentar alta produtividade e permitir a utilização de menores volumes de amostras, também apresenta grande flexibilidade, pois permite a detecção de diversas moléculas, como citocinas, moléculas de adesão, isotipos de anticorpos eproteínas2,3.
Diferentes partículas são utilizadas para o desenvolvimento desses ensaios, entre elas esferas de látex, que são um insumo eficaz e de baixo custo. Estas podem apresentar modificações em sua superfície, como a presença de grupos funcionais ou proteínas que permitem o acoplamento covalente ou não covalente de determinadas moléculas 3,4,5.
Esses imunoensaios usam componentes como antígenos e anticorpos para realizar a detecção de marcadores de doenças e comumente requerem anticorpos de mamíferos como camundongos, coelhos e cabras. Isso gera problemas relacionados a questões éticas, uma vez que a imunização de mamíferos geralmente requer muitos animais para obter um bom rendimento, bem como a realização frequente de procedimentos que levam ao sofrimento dos animais 6,7. Uma alternativa a isso é o uso de anticorpos IgY isolados das gemas de ovos de galinhas imunizadas, uma vez que altas concentrações dos anticorpos específicos contra os antígenos inoculados podem ser encontradas nas gemas; A produção de um frango equivale à produção de 4,3 coelhos ao longo de um ano 6,7.
Assim, o objetivo deste protocolo é fornecer um método para avaliar anticorpos IgY obtidos de gemas de ovo de galinha usando citometria de fluxo com esferas de látex. Para isso, propomos um método de padronização para um imunoensaio citométrico de esferas em formato sanduíche utilizando esferas de látex. Como modelo, foram utilizados anticorpos IgY direcionados ao antígeno II da proteína II rica em histidina do Plasmodium falciparum (IgY-Pf HRP2). Descrevemos um método para extração dos anticorpos, discutimos os passos críticos para a definição da concentração de acoplamento destes aos cordões de látex e apresentamos uma avaliação do limite de detecção do antígeno. A alta acurácia da citometria de fluxo, aliada ao baixo custo das esferas de látex, tornam esta técnica aplicável para a análise de ferramentas de imunoensaio, como anticorpos e antígenos. Este método pode ser utilizado para a detecção de diversos alvos.
O método de precipitação do anticorpo IgY por redução de pH seguida de separação lipídica utilizando ácido caprílico é eficiente no isolamento de anticorpos totais sem perda de funcionalidade. O método aqui proposto é mais simples e barato do que o relatado por Redwan et al.11, que também utilizaram precipitação por acidificação e ácido caprílico, porém com um protocolo mais complexo e trabalhoso. Esse método também apresenta vantagens sobre as metodologias comumente utiliza…
The authors have nothing to disclose.
Ao Programa de excelência em pesquisa básica e aplicada em saúde dos laboratórios do Instituto Leônidas e Maria Deane – ILMD/Fiocruz Amazônia-PROEP-LABS/ILMD FIOCRUZ AMAZÔNIA (“Programa de excelência em pesquisa básica e aplicada em saúde dos laboratórios do Instituto Leônidas e Maria Deane – ILMD/Fiocruz Amazônia-PROEP-LABS/ILMD FIOCRUZ AMAZÔNIA”), ao Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia (PPGBIOTEC) da Universidade Federal do Amazonas (UFAM), à Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível (CAPES) e à Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Amazonas (FAPEAM) pela concessão das bolsas. A Figura 2 e a Figura 4 foram criadas com biorender.com.
Anti-Chicken IgY (H+L), highly cross-adsorbed, CF 488A antibody produced in donkey | Sigma-Aldrich | SAB4600031 | |
Anti-mouse IgG (H+L), F(ab′)2 | Sigma-Aldrich | SAB4600388 | |
BD FACSCanto II | BD Biosciences | BF-FACSC2 | |
BD FACSDiva CS&T research beads (CS&T research beads) | BD Biosciences | 655050 | |
BD FACSDiva software 7.0 | BD Biosciences | 655677 | |
Bio-Rad Protein Assay Dye Reagent Concentrate | Bio-Rad | #5000006 | |
Bovine serum albumin | Sigma-Aldrich | A4503 | |
Caprilic acid | Sigma-Aldrich | O3907 | |
Centrifuge 5702 R | Eppendorf | Z606936 | |
Chloride 37% acid molecular grade | NEON | 02618 NEON | |
CML latex, 4% w/v | Invitrogen | C37253 | |
Megafuge 8R | Thermo Scientific | TS-HM8R | |
N-(3-Dimethylaminopropyl)-N′-ethylcarbodiimide Hydrochloride Powder (EDC) | Sigma-Aldrich | E7750-1G | |
N-Hydroxysuccinimide (NHS) | Sigma-Aldrich | 130672-25G | |
Phosphate buffered saline | Sigma-Aldrich | 1003335620 | |
Sodium hydroxide | Acs Cientifica | P.10.0594.024.00.27 | |
Sodium hypochlorite | Acs Cientifica | R09211000 | |
Thermo Mixer Heat/Cool | KASVI | K80-120R |