Summary

Préparation de matrices décellularisées 3D à partir de muscle squelettique de souris fœtale pour culture cellulaire

Published: March 03, 2023
doi:

Summary

Dans ce travail, un protocole de décellularisation a été optimisé pour obtenir des matrices décellularisées du muscle squelettique de souris fœtale. Les myoblastes C2C12 peuvent coloniser ces matrices, proliférer et se différencier. Ce modèle in vitro peut être utilisé pour étudier le comportement cellulaire dans le contexte de maladies musculaires squelettiques telles que les dystrophies musculaires.

Abstract

La matrice extracellulaire (ECM) joue un rôle crucial en fournissant un soutien structurel aux cellules et en transmettant des signaux importants pour divers processus cellulaires. Les modèles de culture cellulaire bidimensionnels (2D) simplifient à l’excès les interactions complexes entre les cellules et l’ECM, car l’absence d’un support tridimensionnel complet (3D) peut modifier le comportement cellulaire, les rendant inadéquats pour comprendre les processus in vivo . Les déficiences dans la composition de l’ECM et les interactions cellule-ECM sont des contributeurs importants à une variété de maladies différentes.

Un exemple est la dystrophie musculaire congénitale LAMA2 (LAMA2-CMD), où l’absence ou la réduction de la laminine fonctionnelle 211 et 221 peut entraîner une hypotonie sévère, détectable à la naissance ou peu après. Des travaux antérieurs utilisant un modèle murin de la maladie suggèrent que son apparition se produit pendant la myogenèse fœtale. La présente étude visait à développer un modèle 3D in vitro permettant l’étude des interactions entre les cellules musculaires et l’ECM du muscle fœtal, imitant le microenvironnement natif. Ce protocole utilise des muscles profonds du dos disséqués à partir de fœtus de souris E18.5, traités avec un tampon hypotonique, un détergent anionique et de la DNase. Les matrices décellularisées résultantes (dECM) ont conservé toutes les protéines ECM testées (laminine α2, laminines totales, fibronectine, collagène I et collagène IV) par rapport au tissu natif.

Lorsque les myoblastes C2C12 ont été ensemencés au-dessus de ces dECM, ils ont pénétré et colonisé les dECM, ce qui a favorisé leur prolifération et leur différenciation. De plus, les cellules C2C12 ont produit des protéines ECM, contribuant au remodelage de leur niche au sein des dECM. La mise en place de cette plateforme in vitro fournit une nouvelle approche prometteuse pour démêler les processus impliqués dans l’apparition de LAMA2-CMD, et a le potentiel d’être adaptée à d’autres maladies musculaires squelettiques où des déficiences dans la communication entre l’ECM et les cellules musculaires squelettiques contribuent à la progression de la maladie.

Introduction

La matrice extracellulaire (MEC) est un constituant majeur des tissus, représentant leur composante non cellulaire. Cette structure tridimensionnelle (3D) fournit non seulement un soutien physique aux cellules, mais joue également un rôle crucial dans les processus biochimiques impliqués dans le développement des organismes1. La formation d’une ECM spécifique au tissu se produit au cours du développement, en raison des interactions complexes entre les cellules et leurs niches, influencées par divers stimuli intra et extracellulaires. L’ECM est une structure très dynamique qui subit des réarrangements chimiques et mécaniques de manière temporelle et spatiale et a un impact direct sur le destin cellulaire2. L’une des caractéristiques les plus remarquables de l’ECM est sa diversité fonctionnelle, car chaque ECM tissulaire présente une combinaison unique de molécules qui fournissent différentes topologies et propriétés adaptées aux cellules qu’il contient1.

La signalisation et le soutien de l’ECM sont cruciaux pour le développement et l’homéostasie et, lorsqu’ils sont perturbés, ils peuvent entraîner de multiples pathologies 3,4. Un exemple est la dystrophie congénitale déficiente en LAMA2 (LAMA2-CMD), qui est la forme la plus courante de dystrophie musculaire congénitale. Le gène LAMA2 code pour la chaîne de laminine α2, qui est présente dans la laminine 211 et la laminine 221, et lorsqu’elle est mutée, peut conduire à LAMA2-CMD 5. La laminine 211 est la principale isoforme trouvée dans la membrane basale entourant les fibres musculaires squelettiques. Lorsque la laminine 211 est anormale ou absente, le lien entre la membrane basale et les cellules musculaires est perturbé, entraînant l’apparition de la maladie6. Les patients atteints de LAMA2-CMD présentent un phénotype léger à sévère en fonction du type de mutation dans le gène LAMA2.

Lorsque la fonction de la protéine laminine α2 est affectée, les patients peuvent présenter une hypotonie musculaire sévère à la naissance et développer une inflammation chronique, une fibrose et une atrophie musculaire, entraînant une réduction de l’espérance de vie. À ce jour, aucun traitement ciblé n’a été développé et les approches thérapeutiques se limitent à soulager les symptômes de la maladie7. Par conséquent, la compréhension des mécanismes moléculaires sous-jacents impliqués dans l’apparition de cette maladie est cruciale pour développer des stratégies thérapeutiques appropriées 6,8. Des travaux antérieurs utilisant la souris dyW 9, un modèle pour LAMA2-CMD, suggèrent que l’apparition de la maladie commence in utero, en particulier pendant la myogenèse fœtale10. Une meilleure compréhension de la façon dont le défaut de myogenèse fœtale émerge changerait la donne dans la génération de nouvelles approches thérapeutiques pour LAMA2-CMD.

Les systèmes in vitro fournissent un environnement contrôlé pour étudier les interactions cellule-cellule et cellule-ECM, mais les modèles de culture 2D n’ont pas la complexité des tissus natifs. La décellularisation des tissus produit des échafaudages ECM acellulaires spécifiques aux tissus et aux stades de développement qui imitent plus précisément le microenvironnement cellulaire naturel par rapport aux modèles 2D et aux échafaudages artificiels / synthétiques. Les matrices décellularisées (dECM) ont le potentiel de préserver les signaux moléculaires et mécaniques du tissu hôte, ce qui en fait de meilleurs modèles alternatifs pour comprendre les processus in vivo 11.

Il existe diverses techniques, réactifs et conditions qui peuvent être utilisés pour la décellularisation12,13. Dans cette étude, un protocole de décellularisation pour le cœur de souris fœtale, décrit par Silva et al.14,15, est adapté au muscle squelettique de souris fœtale et conserve tous les composants ECM testés (laminine α2, laminines totales, fibronectine, collagène I et collagène IV). Le protocole comprend trois étapes : la lyse cellulaire par choc osmotique (tampon hypotonique), la dissolution de la membrane plasmique et la dissociation des protéines (dodécylsulfate de sodium à 0,05 % [SDS]), et la destruction enzymatique de l’ADN (traitement par DNase). À notre connaissance, il s’agit du premier protocole établi pour décellulariser le muscle squelettique fœtal de souris.

Pour utiliser ce système 3D in vitro pour étudier LAMA2-CMD, il est crucial de maintenir la chaîne laminine α2 après décellularisation. Par conséquent, un protocole d’optimisation a été mis en œuvre où différents détergents (FDS et Triton X-100) et concentrations (0,02 %, 0,05 %, 0,1 %, 0,2 % et 0,5 %) ont été testés (données non présentées). Le choix optimal pour l’élimination cellulaire et la préservation de la protéine laminine α2 s’est avéré être 0,05% SDS. Les cellules C2C12, une lignée cellulaire de myoblastes16,17 bien établie, ont été utilisées pour ensemencer les dECM. Ces cellules envahissent la dECM, prolifèrent et se différencient à l’intérieur de ces échafaudages, synthétisant de nouvelles protéines ECM. La production réussie de ce modèle in vitro 3D offre une nouvelle approche pour comprendre les processus moléculaires et cellulaires impliqués dans la myogenèse fœtale, l’apparition de LAMA2-CMD, et peut être étendue à d’autres maladies musculaires où la communication entre l’ECM et les cellules musculaires squelettiques est perturbée.

Protocol

Toutes les méthodologies décrites ont été approuvées par le Comité du bien-être animal (ORBEA) de la Faculté des sciences de l’Université de Lisbonne et la Direção Geral de Veterinária (DGAV; réf. 0421/000/000/2022), et sont conformes à la directive européenne 2010/63/UE. 1. Préparation des tampons de décellularisation et des réactifs REMARQUE: Toutes les solutions utilisées pendant le protocole de décellularisation doivent être…

Representative Results

Le but du protocole de décellularisation est de produire des dECM qui ressemblent étroitement à la composition des tissus natifs. Pour déterminer l’efficacité du processus de décellularisation, diverses méthodes ont été utilisées, y compris l’examen de la morphologie des tissus, la mesure des niveaux d’ADN, la coloration de la F-actine et l’analyse des composants clés de l’ECM à l’aide de techniques d’immunohistochimie et de transfert Western. Plus précisément, cinq composants majeurs de l’E…

Discussion

L’ECM est un réseau complexe de macromolécules présent dans tous les tissus et jouant un rôle crucial dans la régulation du comportement et de la fonctioncellulaire 2. L’ECM agit comme un échafaudage physique auquel les cellules peuvent se fixer et fournit des indices qui modulent activement les processus cellulaires tels que la prolifération, la motilité, la différenciation et l’apoptose. Ainsi, la formation et le maintien appropriés de l’ECM sont essentiels à la fois pour le d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ces travaux ont été financés par l’Association Française contre les Myopathies (AFM-Téléthon ; contrat n° 23049), le projet MATRIHEALTH, et l’unité cE3c de financement UIDB/00329/2020. Nous tenons à remercier notre donateur Henrique Meirelles qui a choisi de soutenir le projet MATRIHEALTH. Ce travail a bénéficié des infrastructures de l’installation de microscopie de la Faculté des sciences, un nœud de la plate-forme portugaise de bioimagerie (référence PPBI-POCI-01-0145-FEDER-022122), et nous remercions Luís Marques pour son aide dans l’acquisition et le traitement des images. Enfin, nous remercions Marta Palma pour son soutien technique et notre équipe de recherche pour leurs généreuses contributions.

Materials

12 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile Abdos Labware P21021
4′,6-Diamidino-2-phenylindole dihydrochloride Merck D8417
4–20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel Bio-Rad 4561093
48 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile Abdos Labware P21023
96 Well Cell Culture Plate, Flat, TC, Sterile Abdos Labware P21024
Bovine Serum Albumin, Fraction V NZYtech MB04601
BX60 fluorescence microscope Olympus
Cryostat CM1860 UV Leica
Dithiothreitol ThermoFisher R0862
DMEM high glucose w/ stable glutamine w/ sodium pyruvate Biowest L0103-500
DNase I PanReac AppliChem A3778
DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen 69506
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Merck 108418
Fetal bovine serum Biowest S1560-500
Fine tip transfer pipette ThermoFisher 15387823
Goat serum Biowest S2000-100
Hera Guard Flow Cabinet Heraeus
Heracell 150 CO2 Incubator Thermo Scientific
HiMark Pre-stained Protein Standard Invitrogen
Horse Serum, New Zealand origin Gibco 16050122
HRP-α- Rabbit IgG abcam ab205718
HRP-α- Rat IgG abcam ab205720
HRP-α-Mouse IgG abcam ab205719
ImageJ v. 1.53t
Methyl Green Sigma-Aldrich 67060
MM400 Tissue Lyser Retsch
NanoDrop ND-1000 Spectrophotometer ThermoFisher
Paraformaldehyde, 16% w/v aq. soln., methanol free Alfa Aesar 043368-9M
Penicillin-Streptomycin (100x) GRiSP GTC05.0100
Phalloidin Alexa 488 Thermo Fisher Sci. A12379
Polystyrene Petri dish 60x15mm with vents (sterile) Greiner Bio-One 628161
Qubit dsDNA HS kit Thermo Scientific Q32851
Qubit™ 3 Fluorometer Invitrogen 15387293
S6E Zoom Stereo microscope Leica
Sodium Dodecyl Sulfate Merck 11667289001
SuperFrost® Plus adhesion slides Thermo Scientific 631-9483
SuperSignal West Pico PLUS Chemiluminescent Substrate Thermo Scientific 15626144
TCS SPE confocal microscope Leica
Tris-(hidroximetil) aminometano (Tris base) ≥99% VWR Chemicals 28811.295
Triton X-100 Sigma-Aldrich X100-100ML
Trypan Blue Solution, 0.4% Gibco 15250061
Trypsin-EDTA (0.05%) in DPBS (1X) GRiSP GTC02.0100
TWEEN 20 (50% Solution) ThermoFisher 3005
WesternBright PVDF-CL membrane roll (0.22µm) Advansta L-08024-001
α-Collagen I abcam ab21286
α-Collagen IV Millipore AB756P
α-Collagen IV Santa Cruz Biotechnology sc-398655
α-Fibronectin Sigma F-3648
α-Laminin α2 Sigma L-0663
α-MHC D.S.H.B. MF20
α-Mouse Alexa 488 Molecular Probes A11017
α-Mouse Alexa 568 Molecular Probes A11019
α-pan-Laminin Sigma L- 9393
α-phospho-histone 3 Merk Millipore 06-570
α-Rabbit Alexa 568 Molecular Probes A21069
α-Rabbit Alexa 488 Molecular Probes A11070
α-Rat Alexa 488 Molecular Probes A11006

References

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Gameiro dos Santos, P., Soares, A. R., Thorsteinsdóttir, S., Rodrigues, G. Preparation of 3D Decellularized Matrices from Fetal Mouse Skeletal Muscle for Cell Culture. J. Vis. Exp. (193), e65069, doi:10.3791/65069 (2023).

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