Summary

Neurônios Kisspeptin Hipotalâmicos como Alvo para Gravações de Patch-Clamp de Células Inteiras

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

Aqui, apresentamos um protocolo para realizar um patch-clamp de células inteiras em fatias cerebrais contendo neurônios de kisspeptina, o principal modulador das células do hormônio liberador de gonadotrofina (GnRH). Ao agregar conhecimento sobre a atividade neuronal da kisspeptina, essa ferramenta eletrofisiológica tem servido de base para avanços significativos no campo da neuroendocrinologia nos últimos 20 anos.

Abstract

As kisspeptinas são essenciais para a maturação do eixo hipotálamo-hipófise-gonadal (HPG) e fertilidade. Os neurônios kisspeptina hipotalâmicos, localizados no núcleo periventricular anteroventral e no núcleo periventricular rostral, bem como o núcleo arqueado do hipotálamo, projetam-se para neurônios do hormônio liberador de gonadotrofina (GnRH), entre outras células. Estudos anteriores demonstraram que a sinalização da kisspeptina ocorre através do receptor Kiss1 (Kiss1r), excitando a atividade do neurônio de GnRH. Em humanos e modelos animais experimentais, as kisspeptinas são suficientes para induzir a secreção de GnRH e, consequentemente, a liberação de hormônio luteinizante (LH) e hormônio folículo estimulante (FSH). Uma vez que as kisspeptinas desempenham um papel essencial nas funções reprodutivas, os pesquisadores estão trabalhando para avaliar como a atividade intrínseca dos neurônios hipotalâmicos da kisspeptina contribui para ações relacionadas à reprodução e identificar os neurotransmissores/neuromoduladores primários capazes de alterar essas propriedades. A técnica de patch-clamp de células inteiras tornou-se uma ferramenta valiosa para investigar a atividade de neurônios de kisspeptina em células de roedores. Esta técnica experimental permite aos pesquisadores registrar e medir correntes iônicas excitatórias e inibitórias espontâneas, potencial de membrana de repouso, disparo de potencial de ação e outras propriedades eletrofisiológicas das membranas celulares. No presente estudo, aspectos cruciais da técnica de patch-clamp de células inteiras, conhecida como medidas eletrofisiológicas que definem os neurônios hipotalâmicos da kisspeptina, e uma discussão de questões relevantes sobre a técnica são revistos.

Introduction

Hodgkin e Huxley fizeram o primeiro registro intracelular de um potencial de ação descrito em vários estudos científicos. Este registro foi realizado no axônio da lula, que tem um grande diâmetro (~500 μm), permitindo que um microeletrodo seja colocado dentro do axônio. Este trabalho proporcionou grandes possibilidades para a pesquisa científica, culminando posteriormente com a criação do modo tensão-pinça, que foi utilizado para estudar a base iônica da geração do potencial de ação 1,2,3,4,5,6,7,8. Com o passar dos anos, a técnica foi se aprimorando, tornando-se amplamente aplicada em pesquisascientíficas6,9. A invenção da técnica patch-clamp, ocorrida no final da década de 1970 por meio de estudos iniciados por Erwin Neher e Bert Sakmann, permitiu aos pesquisadores registrar canais iônicos únicos e potenciais ou correntes de membrana intracelular em praticamente todos os tipos celulares utilizando apenas um eletrodo 9,10,11,12. Os registos de patch-clamp podem ser feitos numa variedade de preparações de tecidos, tais como células cultivadas ou cortes de tecido, quer em modo voltage-clamp (mantendo a membrana celular a uma tensão definida que permite o registo, por exemplo, de correntes dependentes de voltagem e correntes sinápticas) quer em modo corrente-clamp (permitindo o registo de, por exemplo, alterações no potencial de membrana de repouso induzidas por correntes iónicas, potenciais de ação e frequência potencial pós-sináptico).

O uso da técnica patch-clamp possibilitou várias descobertas notáveis. De fato, os achados seminais sobre as propriedades eletrofisiológicas dos neurônios kisspeptina hipotalâmico localizados nos núcleos periventricular anteroventral e periventricular rostral (VPVV/PeN Kisspeptina), também conhecidos como área periventricular rostral do terceiro ventrículo (RP3V), e núcleo arqueado do hipotálamo (ARHkisspeptina)13,14,15 são de particular interesse. Em 2010, Ducret e colaboradores realizaram os primeiros registros de neurônios deKisspeptinAVPV/PeN em camundongos usando outra ferramenta eletrofisiológica, a técnica de patch-clamp de células soltas. Esses estudos forneceram uma descrição elétrica dos neurôniosKisspeptin AVPV/PeN e demonstraram que seus padrões de disparo são dependentes do ciclo estral16. Em 2011, Qiu e col. utilizaram a técnica de patch-clamp de células inteiras para demonstrar que os neurônios dakisspeptina ARH expressam correntes endógenas de marcapasso17. Posteriormente, Gottsch e col. mostraram que os neurônios kisspeptin exibem atividade espontânea e expressam correntes de cálcio do tipo h (marca-passo) e do tipo T, sugerindo que os neurônios dakisspeptina ARH compartilham propriedades eletrofisiológicas com outros neurônios marca-passo do sistema nervosocentral18. Além disso, foi demonstrado que os neurônios da kisspeptina ARH exibem taxas de disparo sexualmente dimórficas e que os neurônios daKisspeptina AVPV/PeN exibem um potencial de membrana de repouso (RMP) bimodal influenciado por canais de potássio sensíveis ao ATP (KATP)19,20. Além disso, foi estabelecido que os esteroides gonadais afetam positivamente a atividade elétrica espontânea dos neurônios kisspeptin em camundongos 19,20,21. São citados os primeiros trabalhos que estudam as propriedades eletrofisiológicas dos neurônios kisspeptina 16,17,18,19,20. Desde então, muitos estudos têm utilizado a técnica de patch-clamp de células inteiras para demonstrar quais fatores/neuromoduladores são suficientes para modular a atividade elétrica dos neurônios kisspeptin (Figura 1)17,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30,31,32.

Dada a importância dessa técnica para o estudo dos neurônios necessários para a reprodução, entre outros tipos celulares não abordados aqui, este artigo descreve os passos básicos para o desenvolvimento da técnica de patch-clamp de células inteiras, como preparar as soluções, dissecar e fatiar o cérebro e realizar o selamento da membrana celular para registros. Além disso, questões relevantes sobre a técnica são discutidas, como suas vantagens, limitações técnicas e variáveis importantes que devem ser controladas para um ótimo desempenho experimental.

Protocol

Todos os procedimentos com animais foram aprovados pelo Comitê de Ética em Animais do Instituto de Ciências Biomédicas da Universidade de São Paulo e foram realizados de acordo com as diretrizes éticas adotadas pelo Colégio Brasileiro de Experimentação Animal. 1. Preparação das soluções Preparação da solução internaNOTA: A solução interna preenche a micropipeta patch-clamp e entrará em contato com o interior da célula (veja um exemplo na <str…

Representative Results

Para estudar os possíveis efeitos do hormônio de crescimento recombinante humano (hGH) sobre a atividade dos neurônios hipotalâmicos kisspeptina, realizamos registros de patch-clamp de células inteiras em fatias cerebrais e avaliamos se esse hormônio causa alterações agudas na atividade dos neurônios dekisspeptina AVPV/PeN e ARHkisspeptina. Camundongos adultos Kiss1-Cre/GFP fêmeas (estádio diestro) e machos36 foram utilizados neste estudo. Animais gônadas intacto…

Discussion

O desenvolvimento da técnica de patch-clamp de células inteiras teve um impacto significativo na comunidade científica, sendo considerada de suma importância para o desenvolvimento de pesquisas científicas e possibilitando diversas descobertas. Seu impacto na ciência foi suficiente para culminar com o Prêmio Nobel de Medicina em 1991, pois essa descoberta abriu as portas para uma melhor compreensão do funcionamento dos canais iônicos em condições fisiológicas e patológicas, bem como a identificação de pote…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este estudo foi financiado pela Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo [FAPESP número: 2021/11551-4 (JNS), 2015/20198-5 (TTZ), 2019/21707/1 (RF) e pela Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) – Código Financeiro 001″ (HRV).

Materials

Compounds for aCSF, internal and slicing solutions
ATP Sigma Aldrich/various A9187
CaCl2 Sigma Aldrich/various C7902
D-(+)-Glucose Sigma Aldrich/various G7021
EGTA Sigma Aldrich/various O3777
HEPES Sigma Aldrich/various H3375
KCL Sigma Aldrich/various P5405
K-gluconate Sigma Aldrich/various G4500
KOH Sigma Aldrich/various P5958
MgCl2 Sigma Aldrich/various M9272
MgSO4 Sigma Aldrich/various 230391
NaCl Sigma Aldrich/various S5886
NaH2PO4  Sigma Aldrich/various S5011
NaHCO3 Sigma Aldrich/various S5761
nitric acid Sigma Aldrich/various 225711 CAUTION
Sucrose Sigma Aldrich/various S1888
Equipments
Air table TMC 63-534
Amplifier Molecular Devices Multiclamp 700B
Computer various
DIGIDATA 1440 LOW-NOISE DATA ACQUISITION SYSTEM Molecular Devices DD1440
Digital peristaltic pump Ismatec ISM833C 
Faraday cage TMC 81-333-03
Imaging Camera Leica DFC 365 FX
Micromanipulator Sutter Instruments Roe-200
Micropipette Puller Narishige PC-10
Microscope Leica DM6000 FS
Osteotome Bonther equipamentos & Tecnologia/various 128
Recovery chamber Warner Instruments/Harvard apparatus can be made in-house
Recording chamber Warner Instruments 640277
Spatula Fisher Scientific /various FISH-14-375-10; FISH-21-401-20
Vibratome  Leica VT1000 S
Water Bath  Fisher Scientific /various Isotemp
Software and systems
AxoScope 10 software Molecular Devices Commander Software
LAS X wide field system Leica Image acquisition and analysis
MultiClamp 700B Molecular Devices MULTICLAMP 700B Commander Software
PCLAMP 10 SOFTWARE FOR WINDOWS Molecular Devices Pclamp 10 Standard
Tools
Ag/AgCl electrode, pellet, 1.0 mm Warner Instruments 64-1309
Curved hemostatic forcep various
cyanoacrylate glue LOCTITE/various
Decapitation scissors various
Filter paper various
Glass capillaries (micropipette) World Precision Instruments, Inc TW150F-4
Iris scissors Bonther equipamentos & Tecnologia/various 65-66
Pasteur glass pipette  Sigma Aldrich/various CLS7095B9-1000EA
Petri dish various
Polyethylene tubing  Warner Instruments 64-0756
Razor blade for brain dissection TED PELLA TEDP-121-1
Razor blade for the vibratome TED PELLA TEDP-121-9
Scissors Bonther equipamentos & Tecnologia/various 71-72, 48,49; 
silicone teat various
Slice Anchor  Warner Instruments 64-0246
Syringe filters Merck Millipore Ltda SLGVR13SL Millex-GV 0.22 μm
Tweezers Bonther equipamentos & Tecnologia/various 131, 1518

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Cite This Article
Silva, J. d. N., Zampieri, T. T., Vieira, H. R., Frazao, R. Hypothalamic Kisspeptin Neurons as a Target for Whole-Cell Patch-Clamp Recordings. J. Vis. Exp. (193), e64989, doi:10.3791/64989 (2023).

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