ここでは、不均一な細胞株、特にヒト間葉系幹細胞(hMSC)の特性評価のためのラベルフリーアプローチとして、光誘導性誘起誘電泳動を紹介します。この論文では、hMSCのネイティブ状態を変えることなく電気的挙動を特徴付けるために、光導電層を備えたマイクロ流体デバイスを使用および最適化するためのプロトコルについて説明します。
ヒト間葉系幹細胞(hMSC)は、疾患の機構研究の実施やいくつかの治療用途のための患者由来の細胞源を提供します。近年、hMSCの様々な成熟段階での電気的挙動などの特性を理解することがますます重要になっています。誘電泳動(DEP)は、不均一な電場で細胞を操作できる方法であり、細胞膜の容量や誘電率などの細胞の電気的特性に関する情報を得ることができます。DEPの従来のモードでは、3次元電極などの金属電極を使用して、DEPに対するセルの応答を特徴付けます。この論文では、容易に順応可能な形状を持つin situ 仮想電極として機能する光投影を介して細胞を操作できる感光体層で構築されたマイクロ流体デバイスを紹介します。ここでは、hMSCの特性評価のために、光誘起DEP(LiDEP)と呼ばれるこの現象を実証するプロトコルを紹介します。セル速度として測定されるLiDEP誘導セル応答は、入力電圧、光投影の波長範囲、光源の強度などのさまざまなパラメータによって最適化できることを示しています。将来的には、このプラットフォームがラベルフリーで、hMSCまたは他の幹細胞株の不均一な集団のリアルタイム特性評価を実行する技術への道を開くことができると想定しています。
ヒト間葉系幹細胞(hMSC)は、その免疫抑制特性1が認められており、II型糖尿病2、移植片対宿主病3、肝疾患4など、さまざまな疾患の治療のための治療薬での使用につながっています。HMSCは不均一であり、脂肪細胞、軟骨細胞、および骨芽細胞に分化する細胞の亜集団を含みます。HMSCは脂肪組織、臍帯組織、骨髄に由来し、その分化能は起源組織と使用する細胞培養プロセスによって異なります5。例えば、坂口らの研究によると、脂肪組織由来のhMSCは脂肪細胞に分化する可能性が高く、骨髄由来のhMSCは骨細胞に分化する可能性が高い6。しかし、hMSCの組織起源が分化能に与える影響は、さらに理解する必要がある現象です。さらに、hMSCの多様な分化の可能性は、その固有の不均一性に寄与し、hMSCを治療に適用する際の課題を生み出します。そのため、不均一な幹細胞株の特性評価と選別は、これらの細胞のin vitroおよび臨床応用を開発するために重要です。フローサイトメトリーは、細胞表現型の違いを調べるためのゴールドスタンダード技術であり、細胞表面抗原と蛍光色素を利用して標的細胞を標識し、光散乱または細胞特異的蛍光特性に基づいてそれらを特徴付けます6,7,8。この方法の欠点には、細胞表面抗原バイオマーカーの入手可能性が限られていること、機器および操作のコストが高いこと、および細胞表面染色が細胞膜を損傷し、治療用途に影響を与える可能性があるという事実が含まれます9,10,11。したがって、細胞膜の本来の状態を損なうことなく細胞特性評価のための新しい技術を探求することは、幹細胞治療の臨床性能に利益をもたらす可能性があります。
表面標識を使用しない細胞特性評価の方法である誘電泳動(DEP)は、この現在の研究の焦点です。DEPは、マイクロ流体プラットフォーム上に実装されたラベルフリーまたは非染色法であり、電気的特性に基づいて細胞の不均一な集団を特徴付けます。DEPは、蛍光染色の代わりに交流(AC)電界を使用します(すなわち、ラベルベースの方法)7。細胞の特性評価にDEPベースのマイクロ流体デバイスを使用する他の利点には、少量(マイクロリットル)の使用、迅速な分析時間、最小限の細胞サンプル調製要件、サンプル汚染のリスクの最小化、最小限の廃棄物生産、および低コストが含まれます12,13。DEPの別の利点は、セル14、15、16のリアルタイム監視です。DEPの場合、懸濁液中のセルは、電極で生成された不均一なAC電界にさらされ、分極します6。この分極は細胞の動きを引き起こし、印加されたAC電界の周波数と電圧に基づいて細胞操作を可能にします。周波数を典型的には5kHz〜20MHzの間で調整することにより、セルを電極に引き付けたり、電極から引き離したりすることができ、それぞれ正および負のDEP挙動に対応する6。
DEPの特性評価には、電極構成および/または動作戦略によって分類されるように、従来のモード、フィールドフロー分画、および光誘導モードの複数のモードがあります17。DEPの従来のモードである3DEPアナライザーは、物理的な金属電極を組み込み、AC電界に対するセルラー応答を監視します。このシステムは、複数の3次元円形電極を備えたマイクロウェルからなるチップを使用し、光強度の変化を検出して、セルDEP挙動を特徴付ける18,19,20,21。正のDEPは、セルがマイクロウェルの壁に沿って円形電極の端に向かって移動し、マイクロウェルの中心で光強度が増加するにつれて観察されます。負のDEPは、円形電極から離れたマイクロウェルの中心に細胞がクラスター化し、マイクロウェルの中心で光強度が低下することが観察されます。これら2つの現象を図1に示します。従来のDEP法は、不均一な細胞集団の電気的特性を特徴付ける能力を有する18、20、21。例えば、Mulhallらは、3DEP分析装置を用いて、膜容量21の違いに基づいて、正常な口腔ケラチノサイト(HOK)と悪性口腔ケラチノサイト(H357)細胞株を区別する可能性を実証した。ただし、DEPの従来のモードの1つの制限は、固定電極の形状です。hMSCは不均一であるため、DEP評価中に電極形状を簡単に変更できるという利点があります。たとえば、単一セルトラップ用に電極または電極アレイをリアルタイムで変更できるため、速度とDEPの動作に基づいてセルの特性評価を行うことができます。hMSCのDEP評価にリアルタイムの電極修飾を適用することで、サンプル組織からhMSCを調達した直後にhMSCのシングルセル分析が可能になり、サンプル集団の不均一性を特徴付けることができます。
従来のDEPモード(すなわち、固定物理電極)の限界を克服し、DEP現象を使用してリアルタイムの電極構成変更の新しい機会を探求するために、光誘起DEP(LiDEP)が探求されてきました。LiDEPは、光投影を介して光伝導マイクロ流体デバイス22、23を使用して細胞を操作するDEPの非伝統的なモードであり、局在化した電極は、従来のDEP法と同様に、不均一な電場を作り出す。このアプローチにより、電極形状の柔軟性とマイクロ流体デバイス内での電極の移動も可能になります。これにより、固定電極で見られる制限が緩和され、細胞の不均一性に関するより多くの情報を得る機会が得られます。LiDEPは、細胞22、23、24の均質および不均一な集団における異なる細胞型を検出および分析するために使用されています。例えば、LiaoらはLiDEPを用いて、上皮細胞接着モジュール(EpCAMneg)を発現する循環腫瘍細胞(CTC)を赤血球から分離し、癌転移におけるそれらの重要性を探った22。LiDEPによる単一細胞分析は、膵臓造腫瘍性の層別化23および転移前後のサンプル中のCTCの分析24により、癌細胞の特性評価と操作に成功しています。
ここでは、LiDEPを利用して、さまざまな電極形状(円、ひし形、星形、平行線)とシステム設定(印加電圧、光強度、マイクロ流体デバイス材料)でhMSCを操作する方法について説明し、仮想電極でヒト由来の幹細胞の挙動を特徴付けるアプローチを提供します。
hMSCの不均一性を調べることは、治療における進歩にとって重要です。この研究は、LiDEPをhMSCの評価のための分析ツールとして使用するための最初のステップを提供します。LiDEPにおける細胞の正のDEP応答の電圧依存性を速度を定量化して調べた。電圧が高いほどDEPの正の力が強くなると予想され、測定した速度でこのパターンを観察しました。10 V ppおよび20 Vppの電圧は、LiDEPを使用したhMSCの操作に十分でした。電圧が低い(つまり、5 Vpp)と、セル応答が遅くなります。hMSCには最適ではありませんが、これは他の細胞タイプには有利である可能性があります。hMSCの生存率は電圧依存的に約9%低下した。これは、生物学的細胞の検査における伝統的なDEPおよびLiDEPの使用が細胞生存率を低下させなかった以前の文献6,12,28,29とはわずかに異なる。ただし、各研究の実験目的はさまざまでした。GlasserおよびFuhrは、細胞培養培地28中の金属電極上の接着性L929マウス線維芽細胞の増殖をモニターした。逆に、Luらは、異なる期間にわたって交流電界にばく露された神経幹細胞の生存率を調べた12。Adamsらは金属電極12でhMSCの誘電特性を特徴付け、LiらはLiDEP29で白血病細胞を操作した。これらの研究と我々の研究との違いはBSAの使用であり、これが我々が観察した生存率の低下の原因である可能性がある。ただし、全体的な生存率が低いのは、ここで確立されたプロトコルで使用される曝露時間(2分30秒)にも起因する可能性があります。この時間は、不均一なAC電界への曝露中の細胞操作を視覚化するのに十分な時間を提供するために選択された。
セルの特性評価の方法は、プロトコルに記載されているように構築されたLiDEPシステムの機能と制限を決定するために、電極の色を介してテストされました。この特定のプロトコルでは、電極の色は、グラフィックエディタファイルを介して投影される形状の色に基づいて制御できます。白、黄、赤、青の4色を使用しました。各色の出力測定値から、投影された黄色(#FFFF00)および白色(#FFFFFF)電極はより高い強度を有することが測定され、それがこれらの色がその後の実験で使用するのにより有利であった理由の基礎となった。さらに、光伝導材料30,31の確立された光強度依存性のために、結果はLiDEPデバイスの性能が光伝導性A:Siに依存し、投影された電極色の選択によって調整できることを示唆している。LiDEPを用いて、hMSCの陽性および陰性のDEP応答の組み合わせも観察され、これは従来のDEP法で見られる現象に似ています。各電極の色で、hMSCは負のDEP力、正のDEP力、およびセル回転を経験し、セルサンプルが単一の周波数で不均一であることを示しています(補足ビデオ1)。これは、hMSCが単一の周波数で負のDEP挙動と正のDEP挙動の両方を示すというAdamsらの発見と一致しています。これらの条件(電極の色、電極の形状、および光導電材料)は、hMSCサンプルの不均一性のレベルを検出するための追加のパラメーターを提供する可能性があります。
最後に、LiDEP評価の結果は、hMSC DEP挙動のベンチマークとして3DEPアナライザーの結果と比較されました。hMSCsの正のDEP応答の周波数範囲に差は見られたが、LiDEPと3DEP分析装置 を介して 収集されたデータの傾向は全体的に類似していた(すなわち、正のDEP応答は頻度の増加とともに減少した)。LiDEPチップに交流電界を供給し、そこに光を投射すると、光投影内の領域のコンダクタンスが低下し、不均一な電界が生じました。したがって、光源の特性(すなわち、強度および波長)は、電圧および電極の色変化試験の結果から分かるように、LiDEPチップ内のセルの予想される応答に影響を与える。変更可能な他のパラメータは、感光体層の材料およびDEP緩衝溶液の導電率である。そのため、セルのDEP動作を評価するために使用される条件は、LiDEPシステムのセットアップに基づいて評価する必要があります。逆に、3DEP分析装置など、金属電極を使用してDEP力を加える方法では、電極特性は一定であり、調査中のセルに必要なものに適応するために即座に変化させることはできません。この陽性DEP挙動の変動は、hMSCサンプル内のさまざまな細胞タイプの特性評価、シングルセル分析、またはセルソーティングに関する将来の研究に役立つ可能性があります。さらに、セルが仮想電極から離れるにつれて、AC電界は弱くなります。ただし、3DEPアナライザー、または金属電極を使用する他の従来のDEPモードでは、より大きな電界領域を適用できるため、より多くのセルを操作できます。したがって、LiDEP実験あたりの細胞数は少なく、LiDEPチップのマイクロチャネル内のAC電界の影響を経験しました。さらなる不一致は、時間の経過に伴うデバイスのパフォーマンスの変化(つまり、2時間または3時間)によって引き起こされる可能性があり、これはまだ調査中です。水、エタノール、およびDEP緩衝溶液の一定の流れは、マイクロチャネル層(すなわち、光伝導性材料)の表面を破壊する可能性があり、考慮する必要があります。セル特性評価のための経時的なデバイス性能も、1つのLiDEPチップの長期使用のために考慮する必要があります。リアルタイムでの実験パラメータの変更には、数秒から数分しかかかりませんでした。電極の色と形状は、グラフィックエディタソフトウェア内の設定を使用して即座に調整されました。
要約すると、この論文は、hMSCなどの不均一な細胞集団を持つ細胞株を操作および特性評価するLiDEPの能力を示しています。このセットアップと説明されているプロトコルを使用して、20 Vpp および投影された仮想黄色電極の条件下でhMSCの特性評価を成功させることができました。今後の研究では、LiDEP を介して 生成されたAC電界へのhMSCの曝露時間を調整し、仮想電極の光強度を高め、hMSC(または他の幹細胞集団)のさまざまなソースを評価して、不均一な幹細胞集団の電気的特徴のLiDEPカタログを開発することに焦点を当てる必要があります。
The authors have nothing to disclose.
この研究は、 CBETを介して 全米科学財団CAREER賞(2048221)によってサポートされました。UCIの統合ナノシステム研究施設(INRF)のMo Kebaili氏に感謝の意を表します。さらに、LiDEPシステムの開発を支援してくれたデビン・ケック博士に感謝します。
0.05% Trypsin-EDTA | Gibco | 25300054 | |
10x objective | AmScope | — | Ordered from Amazon. |
Amorphous silicon (A:Si) | Millipore Sigma | S5130 | |
Antibiotic-Antimycotic (100X) | Gibco | 15240-062 | |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Fisher | BP9706-100 | |
Copper Tape | Zehhe | BF4964 | |
Dextrose | Fisher | D16-1 | This is glucose. |
Digital microscope | Keyence | VHX-7000 | |
Double Sided Tape | Insulectro | FLX000484 | |
Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline (DPBS) | Gibco | 14190-144 | |
Fetel Bovine Serum (FBS) | Corning | 35-011-CV | |
Function Generator | Tektronix | AFG 31102 | |
Graphic editor software | Microsoft Office Powerpoint | — | |
Indium tin oxidec coated glass slides | MSE Supplied | GL0333 | |
L-Alanyl-L-Glutamine | ATCC | PCS-999-034 | |
Laptop | Dell | Inspiron 14, 2-in-1 | |
Mesenchymal Stem Cell Basal Medium | ATCC | PCS-500-030 | |
Mesenchymal Stem Cell Growth Kit for Umbilical and Adipose Cord-Derived MSCs | ATCC | PCS-500-040 | |
Minimum Essential Mediaum Alpha (MEM a, 1X) | Giblo | A10490-01 | |
Molybdenum | Kurt J. Lesker | EJTMOXX352A4 | |
Phenol Red | Sigma | P5530 | |
Power Meter | Thor Labs | S130VC/PM400 | |
Projector | Vecupoi | — | Ordered from Amazon. |
Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 | Gibco | 11875-093 | This media has L-Glutamine and Phenol Red. |
Sucrose | Fisher | BP220-1 | |
Trypan Blue Stain | Gibco | 15250-061 | 0.40% |
Trypsin Neutrilizer | Gibco | R002100 | |
Vacuum Sputtering System | Denton | DV-502M |