Summary

זיהוי מבוסס חיסונים של שינויים דינמיים בחלבוני תאי דם אדומים

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

לכידת שינויים דינמיים בהפעלת החלבונים של תאי דם אדומים מעוררים אתגרים מתודולוגיים, כמו שימור שינויים דינמיים לגירויים חריפים לצורך הערכה מאוחרת יותר. הפרוטוקול המוצג מתאר טכניקות הכנת דגימה וצביעה המאפשרות שימור וניתוח של שינויי חלבון רלוונטיים וזיהוי לאחר מכן.

Abstract

תיוג נוגדנים של חלבוני תאי דם אדומים (RBC) הוא שיטה נפוצה, כמותית למחצה, לזיהוי שינויים בתכולת החלבון הכוללת או שינויים חריפים במצבי הפעלת חלבון. זה מאפשר הערכה של טיפולי RBC, אפיון של הבדלים במצבי מחלה מסוימים, ותיאור של קוהרנטיות תאית. זיהוי של הפעלת חלבון שהשתנתה בחריפות (למשל, באמצעות מכנוטרנסדוקציה) דורש הכנת דגימה נאותה כדי לשמר שינויים זמניים בחלבון. העיקרון הבסיסי כולל השתקה של אתרי קשירת המטרה של חלבוני RBC הרצויים כדי לאפשר קשירה ראשונית של נוגדנים ראשוניים ספציפיים. הדגימה מעובדת עוד יותר כדי להבטיח תנאים אופטימליים לקשירת הנוגדן המשני לנוגדן הראשוני המתאים. בחירת נוגדנים משניים שאינם פלואורסצנטיים דורשת טיפול נוסף, כולל צימוד ביוטין-אבידין ויישום של 3,3-diaminobenzidine-tetrahydrochloride (DAB) כדי לפתח את הצביעה, אשר צריך להיות נשלט בזמן אמת תחת מיקרוסקופ על מנת לעצור את החמצון, ובכך את עוצמת הצביעה, בזמן. לזיהוי עוצמת הצביעה, התמונות מצולמות באמצעות מיקרוסקופ אור סטנדרטי. בשינוי של פרוטוקול זה, נוגדן משני מצומד פלואורסצאין יכול להיות מיושם במקום, אשר יש את היתרון כי אין צורך בשלב פיתוח נוסף. הליך זה, לעומת זאת, דורש מטרת פלואורסצנטיות המחוברת למיקרוסקופ לזיהוי כתמים. בהתחשב באופי הכמותי למחצה של שיטות אלה, הכרחי לספק מספר כתמי בקרה כדי להסביר תגובות נוגדנים לא ספציפיות ואותות רקע. כאן, אנו מציגים הן פרוטוקולי צביעה והן את התהליכים האנליטיים המתאימים כדי להשוות ולדון בתוצאות וביתרונות בהתאמה של טכניקות הצביעה השונות.

Introduction

תאי דם אדומים (RBCs) חוצים את מערכת הלב וכלי הדם במשך 70 עד 140 ימים, עם גיל RBC ממוצע של כ -115 ימים 1,2. RBCs מזדקנים או פגומים מוסרים ממחזור הדם על ידי אריתרופאגוציטוזה, תהליך ניקוי יעיל המונע על ידי מקרופאגים3. תוחלת החיים שנקבעה מראש של תאים אלה היא אחת התוצאות של ויתור על אברוני התא, כולל הגרעין, המיטוכונדריה והריבוזומים, במהלך התמיינות והבשלה4. לפיכך, RBCs במחזור נטולי מנגנון תרגומי, המונע סינתזה של חלבונים חדשים3. מכאן נובע כי שינויים דינמיים לאחר תרגום חלבונים קיימים מייצגים את המנגנון המעשי היחיד של ויסות ביוכימי חריף בתגובה לגורמי עקה חוץ-תאיים ותוך-תאיים הפועלים על RBCs5.

נראה כי כוחות מכניים הם רמזים חוץ-תאיים עיקריים הגורמים להפעלה או אפנון של מסלולים ביוכימיים בתוך RBCs. גילוי החלבון הרגיש למכנו, Piezo1, בקרומי RBC6 נתן השראה למספר קווי מחקר שחקרו איתות המופעל מכנית בתאים אלה7. לדוגמה, ההתקדמות האחרונה הראתה כי התכונות הפיזיקליות של RBCs מווסתות באופן פעיל על ידי שינויים חריפים ודינמיים של חלבונים8, הכולל זרחן לאחר תרגום ויוביקוויטינציה9. מכיוון ששינויים נורמליים אלה שונים במחלות מסוימות 9,10,11, נראה שיש עניין מדעי וקליני לקבוע את מצב ההפעלה של חלבוני RBC, במיוחד ביחס לתהליכים מכנוביולוגיים.

קביעת שינויים חריפים במצבי הפעלת חלבון RBC מציבה כמה אתגרים מתודולוגיים. לדוגמה, אחסון דגימות RBC לניתוח מאוחר יותר דורש שימור של חלבוני RBC שעברו שינוי, מכיוון ששינויים לאחר תרגום אינם עמידים. יתר על כן, שיטות קלאסיות לזיהוי חלבונים (למשל, כתם מערבי) ידועות לשמצה כקשות לסטנדרטיזציה ב- RBCs בשל השפע הנמוך של חלבונים ביחס להמוגלובין, המהווה ~98% מתכולת החלבון בתאים אלה12. לפיכך, צביעה מבוססת נוגדנים של RBCs שהשתמרו כימית הייתה השיטה המועדפת בעת חקירת שינויים חריפים של חלבוני RBC חשובים, כגון איזופורם ספציפי ל-RBC של סינתאז תחמוצת החנקן (RBC-NOS)13,14. הוכח כי RBC-NOS מייצר באופן אנזימטי תחמוצת החנקן (NO), שנראה חיוני לתכונות RBC חיוניות, כולל עיוות RBC15,16,17. שינויים לאחר תרגום של RBC-NOS מווסתים את פעילות האנזים הקטליטי, כאשר זרחן של שאריות סרין 1177 מתואר כמגביר את פעילות האנזים, בעוד זרחן של שאריות סרין 114 או תראונין 495 נקשרו לירידה בפעילות RBC-NOS18,19.

באופן קולקטיבי, שינויים זמניים של חלבוני RBC תורמים לתפקוד תאי חשוב, ופרוטוקולים סטנדרטיים המאפשרים זיהוי של חלבונים מהונדסים אלה הם בעלי ערך גבוה. כאן, אנו מציגים שני פרוטוקולים נפרדים המנצלים נוגדנים ספציפיים כדי להקל על זיהוי הפעלת חלבון RBC-NOS, ודנים בהמלצות לניתוח נתונים ופענוח.

הביצועים של הפרוטוקולים המתוארים הוערכו על ידי מדידת העלייה המדווחת היטב בזרחון של RBC-NOS בשאריות סרין 1177 בתגובה לכוחות מכניים המשקפים את אלה המתרחשים בתוך כלי הדם האנושיים (5 Pa).

Protocol

הפרוטוקולים המתוארים כאן עולים בקנה אחד עם הצהרת הלסינקי ואושרו על ידי ועדות האתיקה של אוניברסיטת הספורט הגרמנית קלן (16/9/2013) ואוניברסיטת גריפית (2019/808). המתנדבים נבדקו כדי לוודא היעדר פתולוגיות רלוונטיות וסיפקו הסכמה מדעת בכתב. 1. צביעת חלבוני RBC באמצעות פרוטוקולים אימונו…

Representative Results

הפרוטוקול המוצג, המתאר שיטות המאפשרות זיהוי שינויים חריפים בחלבוני RBC, נבדק על שינוי חלבון ידוע ורגיש מכנית: זרחן של RBC-NOS בשאריות סרין 1177. דם מלא נלקח ממתנדבים בריאים ולאחר מכן פוצל לשני אליציטוטים נפרדים. דגימת דם נתונה נחשפה ללחץ גזירה מכני בסדר גודל פיזיולוגי (5 Pa) במשך 300 שניות, אשר הוכח ב?…

Discussion

ספרות עדכנית מצביעה על כך שלחלבון RBC-NOS יש חשיבות מכרעת לוויסות עיוות RBC 15,22,23, שבתורו מקל על המעבר שלהם דרך נימים צרים 24. פעילות החלבונים תלויה מאוד בשינויים חלבוניים לאחר התרגום, במיוחד הזרחן של שאריות מסוימות18. ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

LK מודה בתמיכתה של מלגת תוכנית הכשרת המחקר של ממשלת אוסטרליה.

Materials

3,3′-Diaminobenzidin -tetrahydrochloride Hydrate Sigma/Merck D5637 DAB
Ammoniumchloride  Merck /Millipore 101145 NH4Cl
Centrifuge 5427 R  Eppendorf 5409000010
Coverslips VWR 631-0147 
di-sodium Hydrogen Phosphate Dihydrate  Merck /Millipore 106580 Na2HPO4. 2 H2O
Disposable transfer pipettes VWR 612-6803
Entellan Merck /Millipore 107961 rapid mounting medium for microscopy
Ethanol denaturated using 1 % methyl ethyl ketone (MEK) Hofmann 642
Glucose-Oxidase Sigma/Merck G2133
Grease pencil  Dako S 2002
Horse-radish peroxidase/ExtrAvidin−Peroxidase Sigma/Merck E-2886 HRP
Hydrochloric acid  Merck /Millipore 109057 HCl
Hydrogen peroxide, 30% Merck /Millipore 107203 H2O2
ImageJ Software Freeware
Laser-assisted optical rotational cell analyser (LORCA) RR Mechatronics Ektacytometer instrument used for shearing
Methanol Merck /Millipore 106009
Microscope slides VWR 630-1985
Nickel(II)-sulfate Hexahydrate  Sigma/Merck N4882 NiSO4.6H2O
Normal Goat serum Agilent/DAKO X0907 NGS
Paraformaldehyde Merck /Millipore 818715 PFA
Pipettes Eppendorf Reference 2 VWR 613-5836/ 613-5839
Rabbit Anti-phospho eNOS Antibody (Ser1177) Merck/Millipore 07-428-I Primary Antibody
Reaction tubes, 2ml Eppendorf 30120094
Secondary Antibody goat anti rabbit Agilent/DAKO E0432 Secondary Antibody
Skim milk powder Bio-Rad 170-6404
Sodium chloride  Merck /Millipore 106404 NaCl
Sodium Dihydrogen Phosphate Monohydrate Merck /Millipore 106346 NaH2PO4.H2O
Sodium hydroxide, 1 M Merck /Millipore 150706 NaOH
Tris(hydroxymethyl)-aminomethane Merck /Millipore 108382 Tris
Trypsin Sigma/Merck T7409
Tween20  Merck /Millipore 822184
Whatman Glas microfiber filter, quality GF/F Merck /Millipore WHA1825047
Xylol VWR Chemicals 2,89,73,465
ß-D-Glucose monohydrate Merck /Millipore 14431-43-7

References

  1. Cohen, R. M., et al. Red cell life span heterogeneity in hematologically normal people is sufficient to alter HbA1c. Blood. 112 (10), 4284-4291 (2008).
  2. Mock, D. M., et al. Red blood cell (RBC) survival determined in humans using RBCs labeled at multiple biotin densities. Transfusion. 51 (5), 1047-1057 (2011).
  3. Thiagarajan, P., Parker, C. J., Prchal, J. T. How do red blood cells die?. Frontiers in Physiology. 12, 655393 (2021).
  4. Moras, M., Lefevre, S. D., Ostuni, M. A. From erythroblasts to mature red blood cells: organelle clearance in mammals. Frontiers in Physiology. 8, 1076 (2017).
  5. Pretini, V., et al. Red blood cells: chasing interactions. Frontiers in Physiology. 10, 945 (2019).
  6. Cahalan, S. M., et al. Piezo1 links mechanical forces to red blood cell volume. eLife. 4, e07370 (2015).
  7. Kuck, L., Peart, J. N., Simmonds, M. J. Piezo1 regulates shear-dependent nitric oxide production in human erythrocytes. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 323 (1), H24-H37 (2022).
  8. Kuck, L., Peart, J. N., Simmonds, M. J. Active modulation of human erythrocyte mechanics. American Journal of Physiology. Cell Physiology. 319 (2), C250-C257 (2020).
  9. Strader, M. B., et al. Post-translational modification as a response to cellular stress induced by hemoglobin oxidation in sickle cell disease. Scientific Reports. 10 (1), 14218 (2020).
  10. Pecankova, K., Majek, P., Cermak, J., Dyr, J. E. Posttranslational modifications of red blood cell ghost proteins as "signatures" for distinguishing between low- and high-risk myelodysplastic syndrome patients. Turkish Journal of Haematology. 34 (1), 111-113 (2017).
  11. Grau, M., et al. High red blood cell nitric oxide synthase activation is not associated with improved vascular function and red blood cell deformability in sickle cell anaemia. British Journal of Haematology. 168 (5), 728-736 (2015).
  12. Sae-Lee, W., et al. The protein organization of a red blood cell. Cell Reports. 40 (3), 111103 (2022).
  13. Suhr, F., et al. Moderate exercise promotes human RBC-NOS activity, NO production and deformability through Akt kinase pathway. PLoS One. 7 (9), e45982 (2012).
  14. Kuck, L., Grau, M., Bloch, W., Simmonds, M. J. Shear stress ameliorates superoxide impairment to erythrocyte deformability with concurrent nitric oxide synthase activation. Frontiers in Physiology. 10, 36 (2019).
  15. Grau, M., et al. RBC-NOS-dependent S-nitrosylation of cytoskeletal proteins improves RBC deformability. PLoS One. 8 (2), e56759 (2013).
  16. Simmonds, M. J., Detterich, J. A., Connes, P. Nitric oxide, vasodilation and the red blood cell. Biorheology. 51 (2-3), 121-134 (2014).
  17. Bor-Kucukatay, M., Wenby, R. B., Meiselman, H. J., Baskurt, O. K. Effects of nitric oxide on red blood cell deformability. American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 284 (5), H1577-H1584 (2003).
  18. Suhr, F., et al. Intensive exercise induces changes of endothelial nitric oxide synthase pattern in human erythrocytes. Nitric Oxide: Biology and Chemistry. 20 (2), 95-103 (2009).
  19. Grau, M., et al. Regulation of red blood cell deformability is independent of red blood cell-nitric oxide synthase under hypoxia. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 63 (3), 199-215 (2016).
  20. Grau, M., Kuck, L., Dietz, T., Bloch, W., Simmonds, M. J. Sub-fractions of red blood cells respond differently to shear exposure following superoxide treatment. Biology. 10 (1), 47 (2021).
  21. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  22. Ozüyaman, B., Grau, M., Kelm, M., Merx, M. W., Kleinbongard, P. RBC NOS: regulatory mechanisms and therapeutic aspects. Trends in Molecular Medicine. 14 (7), 314-322 (2008).
  23. Kleinbongard, P., et al. Red blood cells express a functional endothelial nitric oxide synthase. Blood. 107 (7), 2943-2951 (2006).
  24. McMahon, T. J. Red blood cell deformability, vasoactive mediators, and adhesion. Frontiers in Physiology. 10, 1417 (2019).
  25. Bizjak, D. A., Brinkmann, C., Bloch, W., Grau, M. Increase in red blood cell-nitric oxide synthase dependent nitric oxide production during red blood cell aging in health and disease: a study on age dependent changes of rheologic and enzymatic properties in red blood cells. PLoS One. 10 (4), 0125206 (2015).
  26. Di Pietro, N., et al. Nitric oxide synthetic pathway and cGMP levels are altered in red blood cells from end-stage renal disease patients. Molecular and Cellular Biochemistry. 417 (1-2), 155-167 (2016).
  27. Grau, M., et al. Even patients with mild COVID-19 symptoms after SARS-CoV-2 infection show prolonged altered red blood cell morphology and rheological parameters. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 26 (10), 3022-3030 (2022).
  28. Mozar, A., et al. Red blood cell nitric oxide synthase modulates red blood cell deformability in sickle cell anemia. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 64 (1), 47-53 (2016).
  29. Ulker, P., Gunduz, F., Meiselman, H. J., Baskurt, O. K. Nitric oxide generated by red blood cells following exposure to shear stress dilates isolated small mesenteric arteries under hypoxic conditions. Clinical Hemorheology and Microcirculation. 54 (4), 357-369 (2013).
  30. Nader, E., et al. Hydroxyurea therapy modulates sickle cell anemia red blood cell physiology: Impact on RBC deformability, oxidative stress, nitrite levels and nitric oxide synthase signalling pathway. Nitric Oxide: Biology and Chemistry. 81, 28-35 (2018).
  31. Fischer, U. M., Schindler, R., Brixius, K., Mehlhorn, U., Bloch, W. Extracorporeal circulation activates endothelial nitric oxide synthase in erythrocytes. The Annals of Thoracic Surgery. 84 (6), 2000-2003 (2007).
  32. Horobin, J. T., Sabapathy, S., Kuck, L., Simmonds, M. J. Shear stress and RBC-NOS Serine1177 Phosphorylation in humans: a dose response. Life. 11 (1), 36 (2021).
  33. Kuck, L., Grau, M., Simmonds, M. J. Recovery time course of erythrocyte deformability following exposure to shear is dependent upon conditioning shear stress. Biorheology. 54 (5-6), 141-152 (2018).
  34. Grau, M., et al. Effect of acute exercise on RBC deformability and RBC nitric oxide synthase signalling pathway in young sickle cell anaemia patients. Scientific Reports. 9 (1), 11813 (2019).
  35. Feelisch, M. . Methods in Nitric Oxide Research. , (1998).
  36. Cortese-Krott, M. M., et al. Human red blood cells at work: identification and visualization of erythrocytic eNOS activity in health and disease. Blood>. 120 (20), 4229-4237 (2012).

Play Video

Cite This Article
Grau, M., Kuck, L. Immunostaining-Based Detection of Dynamic Alterations in Red Blood Cell Proteins. J. Vis. Exp. (193), e64843, doi:10.3791/64843 (2023).

View Video