Это исследование демонстрирует доставку повторяющейся черепно-мозговой травмы мышам и одновременную имплантацию краниального окна для последующей прижизненной визуализации нейрон-экспрессируемого EGFP с помощью двухфотонной микроскопии.
Целью этого протокола является демонстрация того, как лонгитюдно визуализировать экспрессию и локализацию интересующего белка в определенных типах клеток мозга животного при воздействии экзогенных стимулов. Здесь показано введение закрытой черепно-мозговой травмы (ЧМТ) и одновременная имплантация краниального окна для последующей продольной прижизненной визуализации у мышей. Мышам внутричерепно вводят аденоассоциированный вирус (AAV), экспрессирующий усиленный зеленый флуоресцентный белок (EGFP) под действием нейронно-специфического промотора. Через 2-4 недели мышей подвергают повторной ЧМТ с использованием устройства для сброса веса над местом инъекции AAV. Во время одного хирургического сеанса мышам имплантируют металлический подголовник, а затем стеклянное краниальное окно над местом удара ЧМТ. Экспрессия и клеточная локализация EGFP исследуется с помощью двухфотонного микроскопа в одной и той же области мозга, подвергшейся травме в течение нескольких месяцев.
Черепно-мозговая травма (ЧМТ), которая может возникнуть в результате спортивных травм, столкновений транспортных средств и военных действий, является проблемой здравоохранения во всем мире. ЧМТ может привести к физиологическим, когнитивным и поведенческим нарушениям, а также к пожизненной инвалидности или смертности 1,2. Тяжесть ЧМТ можно классифицировать как легкую, умеренную и тяжелую, в подавляющем большинстве случаев это легкая ЧМТ (75%-90%)3. Все чаще признается, что ЧМТ, особенно повторяющиеся случаи ЧМТ, могут способствовать дегенерации нейронов и служить факторами риска развития ряда нейродегенеративных заболеваний, включая болезнь Альцгеймера (БА), боковой амиотрофический склероз (БАС), лобно-височную деменцию (ЛВД) и хроническую травматическую энцефалопатию (ХТЭ)4,5,6. Тем не менее, молекулярные механизмы, лежащие в основе нейродегенерации, вызванной ЧМТ, остаются неясными и, таким образом, представляют собой активную область исследований. Чтобы получить представление о том, как нейроны реагируют на ЧМТ и восстанавливаются после нее, в данной статье описан метод мониторинга флуоресцентно меченых белков, представляющих интерес, особенно внутри нейронов, с помощью продольной прижизненной визуализации у мышей после ЧМТ.
С этой целью в данном исследовании показано, как сочетать хирургическую процедуру для введения закрытой черепно-мозговой ЧМТ, аналогичную той, о которой сообщалось ранее7,8, с хирургической процедурой имплантации краниального окна для последующей прижизненной визуализации, как описано Goldey et al9. Примечательно, что невозможно сначала имплантировать краниальное окно, а затем выполнить ЧМТ в той же области, так как воздействие падения веса, которое вызывает ЧМТ, может повредить окно и нанести непоправимый вред мыши. Таким образом, этот протокол был разработан для проведения ЧМТ, а затем имплантации краниального окна непосредственно над местом удара, и все это в рамках одного хирургического сеанса. Преимуществом сочетания ЧМТ и имплантации краниального окна в одном хирургическом сеансе является сокращение количества операций, которые мышь подвергается хирургическому вмешательству. Кроме того, это позволяет отслеживать немедленный ответ (т.е. в течение нескольких часов) на ЧМТ, в отличие от имплантации окна на более позднем хирургическом сеансе (т.е. первичная визуализация, начинающаяся в течение нескольких дней после ЧМТ). Краниальное окно и платформа прижизненной визуализации также имеют преимущества по сравнению с мониторингом белков нейронов традиционными методами, такими как иммуноокрашивание фиксированных тканей. Например, для прижизненной визуализации требуется меньшее количество мышей, так как одна и та же мышь может быть изучена в несколько временных точек, в отличие от отдельных когорт мышей, необходимых для дискретных моментов времени. Кроме того, одни и те же нейроны могут контролироваться с течением времени, что позволяет отслеживать конкретные биологические или патологические события в одной и той же клетке.
В качестве доказательства концепции здесь демонстрируется нейрон-специфическая экспрессия усиленного зеленого флуоресцентного белка (EGFP) под промотором синапсина10. Этот подход может быть распространен на: 1) различные типы клеток головного мозга путем использования других специфических промоторов клеточного типа, таких как промотор основного белка миелина (MBP) для олигодендроцитов и промотор глиального фибриллярного кислого белка (GFAP) для астроцитов11, 2) различные белки-мишени, представляющие интерес, путем слияния их генов с геном EGFP, и 3) коэкспрессия нескольких белков, объединенных с различными флуорофорами. Здесь EGFP упаковывается и экспрессируется путем доставки аденоассоциированного вируса (AAV) через внутричерепную инъекцию. ЧМТ с закрытым черепом проводится с помощью устройства для снижения веса с последующей имплантацией краниального окна. Визуализация нейронального EGFP достигается через краниальное окно с помощью двухфотонной микроскопии для обнаружения флуоресценции EGFP in vivo. С помощью двухфотонного лазера можно проникнуть глубже в кортикальную ткань с минимальным фотоповреждением, что позволяет проводить повторную продольную визуализацию одних и тех же областей коры у отдельной мыши в течение нескольких дней и месяцев12,13,14,15. Таким образом, этот подход, сочетающий операцию ЧМТ с прижизненной визуализацией, направлен на углубление понимания молекулярных событий, которые способствуют патологии, вызванной ЧМТ16,17.
В этом исследовании инъекция AAV, введение ЧМТ и имплантация краниального окна были объединены для анализа продольной визуализации EGFP-меченных нейронов в коре головного мозга мыши (слои IV и V) для наблюдения за влиянием ЧМТ на нейроны коры головного мозга. В этом исследовании отмечается, …
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим доктора Мигеля Сена-Эстевеса из Медицинской школы Чана Массачусетского университета за дарение вируса AAV(PHP.eB)-Syn1-EGFP и Дебру Кэмерон из Медицинской школы Чана Массачусетского университета за рисунок эскиза черепа мыши. Мы также благодарим нынешних и бывших сотрудников лабораторий Bosco, Schafer и Henninger за их предложения и поддержку. Эта работа финансировалась Министерством обороны (W81XWH202071/PRARP) для DAB, DS и NH.
Adjustable Precision Applicator Brushes | Parkell | S379 | |
BD insulin syringe | BD | NDC/HRI#08290-3284-38 | 5/16" x 31G |
Betadine | Purdue | NDC67618-151-17 | including 7.5% povidone iodine |
Buprenorphine | PAR Pharmaceutical | NDC 42023-179-05 | |
Cefazolin | HIKMA Pharmaceutical | NDC 0143-9924-90 | |
Ceramic Mixing Dish | Parkell | SKU: S387 | For dental cement preparation |
Cotton Tipped Applicators | ZORO | catlog #: G9531702 | |
Catalyst | Parkell | S371 | full name: "C" Universal TBB Catalyst |
Dental cement powder | Parkell | S396 | Radiopaque L-Powder for C&B Metabond |
Dental drill | Foredom | H.MH-130 | |
Dental drill controller | Foredom | HP4-310 | |
Dexamethasone | Phoenix | NDC 57319-519-05 | |
EF4 carbide bit | Microcopy | Lot# C150113 | Head Dia/Lgth/mm 1.0/4.2 |
Ethonal | Fisher Scientific | 04355223EA | 75% |
FG1/4 carbide bit | Microcopy | Lot# C150413 | Head Dia/Lgth/mm 0.5/0.4 |
FG4 carbide bit | Microcopy | Lot# C150309 | Head Dia/Lgth/mm 1.4/1.1 |
Headpost | N/A | N/A | Custom-manufactured |
Heating apparatus | CWE | TC-1000 Mouse | equiped with the stereotaxic instrument and be used while operating surgery |
Heating blanket | CVS pharmacy | E12107 | extra heating device and be used after surgery |
Isoflurane | Pivetal | NDC 46066-755-03 | |
Isoflurane induction chamber | Vetequip | 89012-688 | induction chamber for short |
Isoflurane volatilizing machine | Vetequip | 911103 | |
Isoflurane volatilizing machine holder | Vetequip | 901801 | |
Leica surgical microscope | Leica | LEICA 10450243 | |
Lubricant ophthalmic ointment | Picetal | NDC 46066-753-55 | |
Marker pen | Delasco | SMP-BK | |
Meloxicam | Norbrook | NDC 55529-040-10 | |
Microinjection pump and its controller | World Precision Instruments | micro4 and UMP3 | |
Microliter syringe | Hamilton | Hamilton 80014 | 1701 RN, 10 μL gauge for syringe and 32 gauge for needle, 2 in, point style 3 |
Mosquito forceps | CAROLINA | Item #:625314 | Stainless Steel, Curved, 5 in |
Depilatory agent | McKesson Corporation | N/A | Nair Hair Aloe & Lanolin Hair Removal Lotion |
Microscope 1 | Nikon | SMZ745 | Nikon microscope for cranial window preparation |
Microscope 2 | Zeiss | LSM 7 MP | two-photon microscope |
Multiphoton laser | Coherent | Chameleon Ultra II, Model: MRU X1, VERDI 18W | laser for two-photon microscopy |
Non-absorbable surgical suture | Harvard Apparatus | catlog# 59-6860 | 6-0, with round needle |
Norland Optical Adhesive 81 | Norland Products | NOA 81 | |
No-Snag Needle Holder | CAROLINA | Item #: 567912 | |
Quick base liquid | Parkell | S398 | "B" Quick Base For C&B Metabond |
Regular scissor 1 | Eurostat | eurostat es5-300 | |
Regular scissor 2 | World Precision Instruments | No. 501759-G | |
Round cover glass 1 | Warner instruments | CS-5R Cat# 64-0700 | for 5 mm of diameter |
Round cover glass 2 | Warner instruments | CS-3R Cat# 64-0720 | for 3 mm of diameter |
Rubber rings | Orings-Online | Item # OO-014-70-50 | O-Rings |
Saline | Bioworld | L19102411PR | |
Spring scissor 1 | World Precision Instruments | No. 91500-09 | tip straight |
Spring scissor 2 | World Precision Instruments | No. 91501-09 | tip curved |
Stereotaxic platform | KOPF | Model 900LS | |
Super glue | Henkel | Item #: 1647358 | |
surgical Caliper | World Precision Instruments | No. 501200 | |
Surgical forceps 1 | ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES | Catlog# 0508-5/45-PO | style 5/45, curved |
Surgical forceps 2 | ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES | catlog# 0103-5-PO | style 5, straight |
Surgical forceps 3 | ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES | catlog# 72912 | |
Surgical forceps 4 | ELECTRON MICROSCOPY SCIENCES | Catlog# 0508-5/45-PO | style 5/45, curved |
Surgical gauze | ZORO | catlog #: G0593801 | |
Surgical lamp | Leica | Leica KL300 LED | |
UV box | Spectrolinker | XL-1000 | also called UV crosslinker |
Vaporguard | Vetequip | 931401 | |
Vetbond Tissue Adhesive | 3M Animal Care | Part Number:014006 |