Este trabalho descreve um protocolo para o sistema modular de transgênese Tol2, um método de clonagem baseado em gateway para criar e injetar construções transgênicas em embriões de peixe-zebra.
Os transtornos do espectro alcoólico fetal (TEAF) são caracterizados por um conjunto altamente variável de defeitos estruturais e prejuízos cognitivos que surgem devido à exposição pré-natal ao etanol. Devido à complexa patologia do TEAF, modelos animais têm se mostrado críticos para nossa compreensão atual dos defeitos de desenvolvimento induzidos pelo etanol. O peixe-zebra provou ser um modelo poderoso para examinar defeitos de desenvolvimento induzidos pelo etanol devido ao alto grau de conservação da genética e do desenvolvimento entre peixes-zebra e humanos. Como um sistema modelo, o peixe-zebra possui muitos atributos que os tornam ideais para estudos de desenvolvimento, incluindo um grande número de embriões fertilizados externamente que são geneticamente tratáveis e translúcidos. Isso permite que os pesquisadores controlem com precisão o tempo e a dosagem da exposição ao etanol em vários contextos genéticos. Uma importante ferramenta genética disponível no peixe-zebra é a transgênese. No entanto, gerar construções transgênicas e estabelecer linhagens transgênicas pode ser complexo e difícil. Para resolver essa questão, os pesquisadores do peixe-zebra estabeleceram o sistema de transgênese Tol2 baseado em transposon. Este sistema modular usa uma abordagem de clonagem de Gateway multisite para a montagem rápida de construções transgênicas completas baseadas em transposon Tol2. Aqui, descrevemos a caixa de ferramentas do sistema flexível Tol2 e um protocolo para geração de construções transgênicas prontas para a transgênese de peixe-zebra e seu uso em estudos de etanol.
A exposição pré-natal ao etanol dá origem a um continuum de déficits estruturais e comprometimentos cognitivos denominados transtornos do espectro alcoólico fetal (TEAF)1,2,3,4. As complexas relações entre múltiplos fatores tornam o estudo e a compreensão da etiologia do TEAF em humanos um desafio. Para resolver esse desafio, uma grande variedade de modelos animais tem sido utilizada. As ferramentas biológicas e experimentais disponíveis nesses modelos têm se mostrado cruciais no desenvolvimento de nossa compreensão das bases mecanicistas da teratogenicidade do etanol, e os resultados desses sistemas modelo têm sido notavelmente consistentes com o que é encontrado em estudos com etanol humano 5,6. Dentre estes, o zebrafish tem emergido como um poderoso modelo para o estudo da teratogênese do etanol7,8, em parte devido à sua fecundação externa, alta fecundidade, tratabilidade genética e embriões translúcidos. Esses pontos fortes se combinam para tornar o peixe-zebra ideal para estudos de imagem ao vivo em tempo real do FASD usando linhas transgênicas de peixe-zebra.
O peixe-zebra transgênico tem sido extensivamente utilizado para estudar múltiplos aspectos do desenvolvimento embrionário9. No entanto, criar construções transgênicas e linhas transgênicas subsequentes pode ser extremamente difícil. Um transgene padrão requer um elemento promotor ativo para conduzir o transgene e um sinal poli A ou “cauda”, tudo em um vetor bacteriano estável para manutenção geral do vetor. A geração tradicional de uma construção transgênica multicomponente requer várias etapas demoradas de subclonagem10. Abordagens baseadas em PCR, como a montagem Gibson, podem contornar alguns dos problemas associados à subclonagem. No entanto, primers únicos devem ser projetados e testados para a geração de cada construção transgênica única10. Além da construção de transgenes, a integração genômica, a transmissão germinativa e a triagem para a integração adequada de transgenes também têm sido difíceis. Descrevemos aqui um protocolo para utilização do sistema de transgênese Tol2 baseado em transposon (Tol2Kit)10,11. Este sistema modular usa clonagem de Gateway multissite para gerar rapidamente várias construções transgênicas a partir de uma biblioteca em constante expansão de vetores de “entrada” e “destino”. Os elementos transponíveis integrados Tol2 aumentam consideravelmente a taxa de transgênese, permitindo a rápida construção e integração genômica de múltiplos transgenes. Usando este sistema, mostramos como a geração de uma linhagem de zebrafish transgênico endoderme pode ser usada para estudar os defeitos estruturais tecido-específicos subjacentes ao TEAF. Em última análise, neste protocolo, mostramos que a configuração modular e a construção de construções transgênicas ajudarão muito a pesquisa de FASD baseada em peixe-zebra.
Os peixes-zebra são ideais para estudar o impacto da exposição ao etanol no desenvolvimento e estados de doença 7,8. Os peixes-zebra produzem um grande número de embriões translúcidos, fertilizados externamente e geneticamente tratáveis, o que permite a obtenção de imagens vivas de vários tecidos e tipos celulares marcados com transgenes simultaneamente em múltiplos contextos ambientais19,20. …
The authors have nothing to disclose.
A pesquisa apresentada neste artigo foi apoiada por uma bolsa do National Institutes of Health/National Institute on Alcohol Abuse (NIH/NIAAA) R00AA023560 para C.B.L.
Addgene Tol2 toolbox | https://www.addgene.org/kits/cole-tol2-neuro-toolbox/ | ||
Air | Provided directly by the university | ||
Ampicillin | Fisher Scientific | BP1760 | |
Analytical Balance | VWR | 10204-962 | |
Borosil 1.0 mm OD x 0.75 mm ID Capillary | FHC | 30-30-0 | |
Calcium Chloride | VWR | 97062-590 | |
Chloramphenicol | BioVision | 2486 | |
EDTA | Fisher Scientific | BP118-500 | |
Fluorescent Dissecting Microscope | Olympus | SZX16 | |
Kanamycin | Fisher Scientific | BP906 | |
Laser Scanning Confocal Microscope | Olympus | Fluoview FV1000 | |
Lawsone Lab Donor Plasmid Prep | https://www.umassmed.edu/lawson-lab/reagents/lawson-lab-protocols/ | ||
LB Agar | Fisher Scientific | BP9724 | |
LB Broth | Fisher Scientific | BP1426 | |
Low-EEO/Multi-Purpose/Molecular Biology Grade Agarose | Fisher Scientific | BP160-500 | |
LR Clonase II Plus Enzyme | Fisher Scientific | 12538200 | |
Magnesium Sulfate (Heptahydrate) | Fisher Scientific | M63-500 | |
Micro Pipette holder | Applied Scientific Instrumentation | MIMPH-M-PIP | |
Microcentrifuge tube 0.5 mL | VWR | 10025-724 | |
Microcentrifuge tube 1.5 mL | VWR | 10025-716 | |
Micromanipulator | Applied Scientific Instrumentation | MM33 | |
Micropipette tips 10 μL | Fisher Scientific | 13611106 | |
Micropipette tips 1000 μL | Fisher Scientific | 13611127 | |
Micropipette tips 200 μL | Fisher Scientific | 13611112 | |
mMESSAGE mMACHINE SP6 Transcription Kit | Fisher Scientific | AM1340 | |
Mosimann Lab Tol2 Calculation Worksheet | https://www.protocols.io/view/multisite-gateway-calculations-excel-spreadsheet-8epv599p4g1b/v1 | ||
NanoDrop Spectrophotometer | NanoDrop | ND-1000 | |
NcoI | NEB | R0189S | |
NotI | NEB | R0189S | |
Petri dishes 100 mm | Fisher Scientific | FB012924 | |
Phenol Red sodium salt | Sigma Aldrich | P4758-5G | |
Pipetman L p1000L Micropipette | Gilson | FA10006M | |
Pipetman L p200L Micropipette | Gilson | FA10005M | |
Pipetman L p2L Micropipette | Gilson | FA10001M | |
Potassium Chloride | Fisher Scientific | P217-500 | |
Potassium Phosphate (Dibasic) | VWR | BDH9266-500G | |
Pressure Injector | Applied Scientific Instrumentation | MPPI-3 | |
QIAprep Spin Miniprep Kit | Qiagen | 27106 | |
Sodium Bicarbonate | VWR | BDH9280-500G | |
Sodium Chloride | Fisher Scientific | S271-500 | |
Sodium Phosphate (Dibasic) | Fisher Scientific | S374-500 | |
Stericup .22 µm vacuum filtration system | Millipore | SCGPU11RE | |
Tol2 Wiki Page | http://tol2kit.genetics.utah.edu/index.php/Main_Page | ||
Top10 Chemically Competent E. coli | Fisher Scientific | C404010 | |
Vertical Pipetter Puller | David Kopf Instruments | 720 | |
Zebrafish microinjection mold | Adaptive Science Tools | i34 |