Summary

Динамический сбор внеклеточной жидкости гиппокампа у крыс, находящихся в сознании, в режиме реального времени с использованием системы микродиализа

Published: October 21, 2022
doi:

Summary

Протокол обеспечивает подробный динамический отбор проб внеклеточной жидкости из гиппокампа бодрствующих крыс в режиме реального времени с использованием системы микродиализа.

Abstract

Различные заболевания центральной нервной системы (ЦНС) связаны с изменениями состава внеклеточной жидкости гиппокампа (HECF). Однако трудности с получением HECF в режиме реального времени от крыс, находящихся в сознании, долгое время ограничивали оценку прогрессирования заболевания ЦНС и эффективность этномедицинской терапии. Обнадеживает то, что метод микродиализа мозга может быть использован для непрерывного отбора проб с преимуществами динамического наблюдения, количественного анализа и небольшого размера выборки. Это позволяет отслеживать изменения содержания во внеклеточной жидкости соединений из традиционных трав и их метаболитов в мозге живых животных. Таким образом, цель этого исследования состояла в том, чтобы точно имплантировать зонд микродиализа спинномозговой жидкости в область гиппокампа крыс Sprague Dawley (SD) с трехмерным стереотаксическим аппаратом мозга, отсекая молекулярные массы более 20 кДа. Затем высококачественный HECF был получен от крыс, находящихся в сознании, с использованием системы контроля отбора проб при микродиализе с регулируемой частотой отбора проб от 2,87 нл / мин до 2,98 мл / мин. В заключение, наш протокол обеспечивает эффективный, быстрый и динамичный метод получения HECF у бодрствующих крыс с помощью технологии микродиализа, что дает нам неограниченные возможности для дальнейшего изучения патогенеза заболеваний, связанных с ЦНС, и оценки эффективности лекарств.

Introduction

Заболевания центральной нервной системы (ЦНС) с высокой заболеваемостью, такие как нейродегенеративные заболевания, черепно-мозговые травмы, черепно-мозговая травма, вызванная высотной гипоксией, и ишемический инсульт, являются основными причинами роста смертности во всем мире 1,2,3. Мониторинг цитокинов и белковых изменений в определенных областях мозга в режиме реального времени способствует диагностической точности заболеваний ЦНС и фармакокинетических исследований мозга после приема лекарств. В традиционных научных исследованиях используется гомогенат мозговой ткани или ручной сбор интерстициальной мозговой жидкости животных для обнаружения специфических веществ и для фармакокинетических исследований. Однако это имеет некоторые недостатки, такие как ограниченный размер выборки, невозможность динамического наблюдения за изменениями показателей и неравномерное качество выборки 4,5,6. Спинномозговая жидкость, интерстициальная жидкость, защищает головной и спинной мозг от механических повреждений. Его состав отличается от состава сыворотки из-за наличия гематоэнцефалического барьера (ГЭБ)7. Прямой анализ образцов спинномозговой жидкости в большей степени способствует раскрытию механизма поражения ЦНС и открытию лекарств. Неизбежно, что образцы спинномозговой жидкости, полученные вручную непосредственно из большой цистерны и желудочков головного мозга через шприц, имеют недостатки, связанные с загрязнением крови, случайной вероятностью сбора пробы, неопределенностью количества и почти отсутствием возможности многократного извлечения 8,9. В частности, традиционные методы забора интерстициальной мозговой жидкости не могут получить образцы из поврежденных областей мозга, что препятствует изучению патогенеза заболеваний ЦНС в определенных областях мозга и оценке эффективности таргетной этномедицинской терапии 9,10.

Микродиализ головного мозга — это метод отбора проб интерстициальной мозговой жидкости у бодрствующих животных11. Система микродиализа имитирует проницаемость сосудов с помощью зонда, имплантированного в мозг. Зонд для микродиализа оснащен полупроницаемой мембраной и имплантируется в определенные области мозга. После перфузии изотонической искусственной спинномозговой жидкостью (ACSF) диализованная интерстициальная мозговая жидкость может быть благоприятно собрана с преимуществами небольших размеров выборки, непрерывного отбора проб и динамического наблюдения12,13. С точки зрения расположения, зонды для микродиализа мозга могут быть выборочно имплантированы в структуры мозга или краниальные цистерны, представляющие интерес14. Наблюдение аномальных уровней эндогенного вещества во внеклеточной жидкости гиппокампа (HECF) предполагает возникновение заболеваний ЦНС или патогенез заболевания. Несколько исследований показали, что биомаркеры заболеваний ЦНС, такие как D-аминокислоты при шизофрении, β-амилоидные и тау-белки при болезни Альцгеймера, легкие цепи нейрофиламентов при черепно-мозговой травме и убиквитинкарбокси-концевая гидролаза L1s при гипоксической ишемической энцефалопатии, могут быть проанализированы в спинномозговой жидкости15,16,17 . Метод химического анализа, основанный на методе отбора проб микродиализа мозга, может быть использован для мониторинга динамических изменений экзогенных соединений, таких как активные ингредиенты этномедицины, которые диффундируют и распределяются в определенных областях мозга14.

В этой статье представлен специфический процесс динамического приобретения HECF у бодрствующих крыс и измерено его осмотическое давление для обеспечения качества образца.

Protocol

Протокол эксперимента был проведен в соответствии с требованиями Комитета по использованию лабораторных животных и институциональному уходу за животными и их использованию при Университете традиционной китайской медицины Чэнду (номер записи: 2021-11). Для настоящего исследования испол…

Representative Results

В соответствии с приведенным выше протоколом эксперимента и параметрами отбора проб, установленными в таблице 1, был получен водоподобный, бесцветный и прозрачный HECF крыс с заданной частотой отбора проб (рис. 1K). Осмотическое давление полученного крысой HECF сост…

Discussion

Патогенез заболеваний ЦНС до сих пор до конца не изучен, что препятствует разработке новых методов лечения и лекарств. Исследования показали, что большинство заболеваний ЦНС тесно связаны с поражениями гиппокампа20,21,22. Предлагаемый ме…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Национальным фондом естественных наук Китая (82104533), Департаментом науки и технологий провинции Сычуань (2021YJ0175) и Китайским фондом постдокторантуры (2020M683273). Авторы хотели бы поблагодарить г-на Юньчэн Хонга, старшего инженера по оборудованию в Tri-Angels D&H Trading Pte. Ltd. (Сингапур) за оказание технических услуг по методике микродиализа.

Materials

 Air-drying oven Suzhou Great Electronic Equipment Co., Ltd GHG-9240A
Animal anesthesia system Rayward Life Technology Co., Ltd R500IE
Animal temperature maintainer Rayward Life Technology Co., Ltd 69020
Artificial cerebrospinal fluid Beijing leagene biotech. Co., Ltd CZ0522
Brain microdialysis probe  CMA Microdialysis AB T56518
Catheter  CMA Microdialysis AB T56518
Covance infusion harness Instech Laboratories, Inc. CIH95
Denture base resins Shanghai Eryi Zhang Jiang Biomaterials Co., Ltd 190732
Electric cranial drill Rayward Life Technology Co., Ltd 78001
Electric shaver Rayward Life Technology Co., Ltd CP-5200
Free movement tank for animals  CMA Microdialysis AB CMA120
Heparin sodium injection Chengdu Haitong Pharmaceutical Co., Ltd H51021208
Iodophor Sichuan Lekang Pharmaceutical Accessories Co., Ltd 202201
Isofluran Rayward Life Technology Co., Ltd R510-22
Microdialysis catheter stylet  CMA Microdialysis AB 8011205
Microdialysis collection tube  CMA Microdialysis AB 7431100
Microdialysis collector  CMA Microdialysis AB CMA4004
Microdialysis fep tubing  CMA Microdialysis AB 3409501
Microdialysis in vitro stand  CMA Microdialysis AB CMA130
Microdialysis microinjection pump  CMA Microdialysis AB 788130
Microdialysis syringe (1.0 mL)  CMA Microdialysis AB 8309020
Microdialysis tubing adapter  CMA Microdialysis AB 3409500
Non-absorbable surgical sutures Shanghai Tianqing Biological Materials Co., Ltd S19004
Ophthalmic forceps Rayward Life Technology Co., Ltd F12016-15
Osmometer Löser OM 807
Sodium hyaluronate eye drops URSAPHARM Arzneimittel GmbH H20150150
Stereotaxie apparatus Rayward Life Technology Co., Ltd 68025
Surgical scissors Rayward Life Technology Co., Ltd S14014-15
Surgical scissors Shanghai Bingyu Fluid technology Co., Ltd BY-103
Syringe needle  CMA Microdialysis AB T56518
Trypsin solution Boster
Biological Technology, Ltd.
PYG0107
Ultrasonic cleaner Guangdong Goote Ultrasonic Co., Ltd KMH1-240W8101

References

  1. Erkkinen, M. G., Kim, M. O., Geschwind, M. D. Clinical neurology and epidemiology of the major neurodegenerative diseases. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 10 (4), 033118 (2018).
  2. Salehi, A., Zhang, J. H., Obenaus, A. Response of the cerebral vasculature following traumatic brain injury. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 37 (7), 2320-2339 (2017).
  3. Kurtzman, R. A. e. m. 3., Caruso, J. L. High-altitude illness death investigation. Academic Forensic Pathology. 8 (1), 83-97 (2018).
  4. Matsumoto, T., et al. Pharmacokinetic study of Ninjin’yoeito: Absorption and brain distribution of Ninjin’yoeito ingredients in mice. Journal of Ethnopharmacology. 279, 114332 (2021).
  5. Mahat, M. Y., et al. An improved method of transcutaneous cisterna magna puncture for cerebrospinal fluid sampling in rats. Journal of Neuroscience Methods. 211 (2), 272-279 (2012).
  6. Ceaglio, N., et al. High performance collection of cerebrospinal fluid in rats: evaluation of erythropoietin penetration after osmotic opening of the blood-brain barrier. Journal of Neuroscience Methods. 219 (1), 70-75 (2013).
  7. Bothwell, S. W., Janigro, D., Patabendige, A. Cerebrospinal fluid dynamics and intracranial pressure elevation in neurological diseases. Fluids and Barriers of the CNS. 16 (1), 9 (2019).
  8. Barthel, L., et al. A step-by-step guide for microsurgical collection of uncontaminated cerebrospinal fluid from rat cisterna magna. Journal of Neuroscience Methods. 352, 109085 (2021).
  9. Zhao, Y., Yang, Y., Wang, D. X., Wang, J., Gao, W. Y. Cerebrospinal fluid amino acid metabolite signatures of diabetic cognitive dysfunction based on targeted mass spectrometry. Journal of Alzheimer’s Disease. 86 (4), 1655-1665 (2022).
  10. Lim, N. K., et al. An improved method for collection of cerebrospinal fluid from anesthetized mice. Journal of Visualized Experiments. (133), e56774 (2018).
  11. Hendrickx, S., et al. A sensitive capillary LC-UV method for the simultaneous analysis of olanzapine, chlorpromazine and their FMO-mediated N-oxidation products in brain microdialysates. Talanta. 162, 268-277 (2017).
  12. Chefer, V. I., Thompson, A. C., Zapata, A., Shippenberg, T. S. Overview of brain microdialysis. Current Protocols in Neuroscience. , (2009).
  13. Hammarlund-Udenaes, M. Microdialysis as an important technique in systems pharmacology-a historical and methodological review. The AAPS Journal. 19 (5), 1294-1303 (2017).
  14. Anderzhanova, E., Wotjak, C. T. Brain microdialysis and its applications in experimental neurochemistry. Cell and Tissue Research. 354 (1), 27-39 (2013).
  15. Mohammadi, A., Rashidi, E., Amooeian, V. G. Brain, blood, cerebrospinal fluid, and serum biomarkers in schizophrenia. Psychiatry Research. 265, 25-38 (2018).
  16. Lashley, T., et al. Molecular biomarkers of Alzheimer’s disease: progress and prospects. Disease Models & Mechanisms. 11 (5), 031781 (2018).
  17. Kawata, K., Tierney, R., Langford, D. Blood and cerebrospinal fluid biomarkers. Handbook of Clinical Neurology. 158, 217-233 (2018).
  18. Zhao, Q. P., et al. Protective effects of dehydrocostuslactone on rat hippocampal slice injury induced by oxygen-glucose deprivation/reoxygenation. International Journal of Molecular Medicine. 42 (2), 1190-1198 (2018).
  19. Wang, X. B. . Protective effects of dehydrocostuslactone on oxygen-glucose deprivation injury in rat hippocampal slices. , (2017).
  20. Coimbra-Costa, D., Alva, N., Duran, M., Carbonell, T., Rama, R. Oxidative stress and apoptosis after acute respiratory hypoxia and reoxygenation in rat brain. Redox Biology. 12, 216-225 (2017).
  21. Liu, H. Y., Chou, K. H., Chen, W. T. Migraine and the Hippocampus. Current Pain and Headache Reports. 22 (2), 13 (2018).
  22. Toda, T., Parylak, S. L., Linker, S. B., Gage, F. H. The role of adult hippocampal neurogenesis in brain health and disease. Molecular Psychiatry. 24 (1), 67-87 (2019).
  23. Wang, P., Lo Cascio, F., Gao, J., Kayed, R., Huang, X. F., F, X. Binding and neurotoxicity mitigation of toxic tau oligomers by synthetic heparin like oligosaccharides. Chemical Communications. 54 (72), 10120-10123 (2018).
  24. Han, J. Y., Li, Q., Ma, Z. Z., Fan, J. Y. Effects and mechanisms of compound Chinese medicine and major ingredients on microcirculatory dysfunction and organ injury induced by ischemia/reperfusion. Pharmacology & Therapeutics. 177, 146-173 (2017).
  25. Peng, T. M., et al. Anti-inflammatory effects of traditional Chinese medicines on preclinical in vivo models of brain ischemia-reperfusion-injury: Prospects for neuroprotective drug discovery and therapy. Frontiers in Pharmacology. 10, 204 (2019).
  26. König, M., Thinnes, A., Klein, J. Microdialysis and its use in behavioural studies: Focus on acetylcholine. Journal of Neuroscience Methods. 300, 206-215 (2018).
  27. Liu, M. Z., Wang, P., Yu, X. M., Dong, G. C., Yue, J. Intracerebral microdialysis coupled to LC-MS/MS for the determination tramadol and its major pharmacologically active metabolite O-desmethyltramadol in rat brain microdialysates. Drug Testing and Analysis. 9 (8), 1243-1250 (2017).
  28. de Lima Oliveira, M., et al. Cerebral microdialysis in traumatic brain injury and subarachnoid hemorrhage: state of the art. Neurocritical Care. 21 (1), 152-162 (2014).
  29. Amiridze, N., Dang, Y., Brown, O. R. Hydroxyl radicals detected via brain microdialysis in rats breathing air and during hyperbaric oxygen convulsions. Redox Report. 4 (4), 165-170 (1999).
  30. Chang, H. Y., Morrow, K., Bonacquisti, E., Zhang, W., Shah, D. K. Antibody pharmacokinetics in rat brain determined using microdialysis. MABS. 10 (6), 843-853 (2018).
  31. Wan, H. Y., et al. Pharmacokinetics of seven major active components of Mahuang decoction in rat blood and brain by LC-MS/MS coupled to microdialysis sampling. Naunyn-Schmiedeberg’s Archives of Pharmacology. 393 (8), 1559-1571 (2020).
  32. Zheng, H. Z., et al. Pharmacokinetic analysis of Huangqi Guizhi Wuwu decoction on blood and brain tissue in rats with normal and cerebral ischemia-reperfusion Injury by microdialysis with HPLC-MS/MS. Drug Design Development and Therapy. 14, 2877-2888 (2020).
  33. Bongaerts, J., et al. Sensitive targeted methods for brain metabolomic studies in microdialysis samples. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 161, 192-205 (2018).
  34. Zhang, Y. Q., Jiang, N., Yetisen, A. K. Brain neurochemical monitoring. Biosensors and Bioelectronics. 189, 113351 (2021).

Play Video

Cite This Article
Wang, X., Xie, N., Zhang, Y., Meng, X., Hou, Y., Zhang, S. Real-Time Dynamic Collection of Hippocampal Extracellular Fluid from Conscious Rats Using a Microdialysis System. J. Vis. Exp. (188), e64530, doi:10.3791/64530 (2022).

View Video