Мы представляем минимально инвазивную лепориновую модель долгосрочной кардиостимуляции, которая может быть использована для искусственного электрокардиостимуляции и развития сердечной недостаточности в доклинических исследованиях.
Животные модели кардиостимуляции полезны для тестирования новых устройств, изучения патофизиологии искусственно изменяемых сердечных ритмов и изучения кардиомиопатий, вызванных аритмией, и последующей сердечной недостаточности. В настоящее время доступно всего несколько таких моделей, и они в основном требуют обширных ресурсов. Мы сообщаем о новой экспериментальной модели кардиостимуляции у мелких млекопитающих с потенциалом для изучения сердечной недостаточности, вызванной аритмией.
У шести новозеландских белых кроликов (средний вес: 3,5 кг) под общей ингаляционной анестезией яремная область была рассечена, и через правую наружную яремную вену был введен один кардиостимулятор. С помощью рентгеноскопического контроля отведение было продвинуто к верхушке правого желудочка, где оно было стабилизировано с помощью пассивной фиксации. Затем был подключен кардиостимулятор и закопан в подкожный карман.
Имплантация кардиостимулятора прошла успешно с хорошим заживлением; Анатомия кролика благоприятна для размещения поводка. В течение 6 месяцев наблюдения с прерывистой стимуляцией средний воспринимаемый потенциал миокарда составлял 6,3 мВ (мин.: 2,8 мВ, макс.: 12 мВ), а измеренный средний импеданс отведения составлял 744 Ω (мин.: 370 Ω, макс.: 1014 Ω). Порог стимуляции первоначально составлял 0,8 В ± 0,2 В и оставался стабильным во время наблюдения.
Настоящее исследование является первым, в котором представлена успешная трансвенозная кардиостимуляция на модели мелких млекопитающих. Несмотря на размер и хрупкость тканей, приборы размером с человека с регулировкой могут безопасно использоваться для хронической кардиостимуляции, и, таким образом, эта инновационная модель подходит для изучения развития кардиомиопатии, вызванной аритмией, и последующей патофизиологии сердечной недостаточности.
В исследованиях сердечной недостаточности и разработке кардиостимуляции трансляционные модели часто требуются для доклинических испытаний1. Кроме того, новые устройства, материалы и усовершенствования свинца должны быть проверены на предмет их потенциальных осложнений перед их клиническим использованием. Таким образом, модели кардиостимуляции имеют широкий спектр применения, включая анализ искусственно ритмизированных сердечных ритмов и изучение их патофизиологического влияния на сердечную функцию 2,3. В экспериментах по кардиомиопатии, вызванной кардиостимуляцией или тахикардией, могут использоваться модели различных размеров животных с развитием сердечной недостаточности в течение нескольких недель после высокоскоростной стимуляции 1,3,4,5.
В предыдущих исследованиях сообщалось об использовании моделей крупных животных — свиней, собак и овец — в таких приложениях 2,3,6. Однако доступность этих моделей ограничена, и они требуют обширных ресурсов для хирургии и обработки животных. Напротив, использование мелких млекопитающих может решить вышеупомянутые проблемы и, следовательно, послужить оптимальной и доступной моделью исследования. Тем не менее, об исследованиях кардиостимуляции на мелких млекопитающих сообщалось редко, и это может быть связано с их тонкой анатомией, хрупкостью тканей и более высокой скоростью стимуляции, требуемой 7,8,9,10,11,12.
Только хирургические модели частично имплантированных кардиостимуляторов с внешними кардиостимуляторами11,12 или беспроводными микроскопическими кардиостимуляторами 5,7,8,9 использовались в исследованиях кардиостимуляторов мелких млекопитающих, но, насколько нам известно, до настоящего времени не сообщалось об использовании полностью имплантированных трансвенозных кардиостимуляторов размером с человека. Предыдущие данные на моделях лепорина показывают, что стимуляция с учащенным сердцебиением в течение нескольких недель приводит к депрессии миокарда11,12. В данной работе представлена первая практически жизнеспособная модель мелких млекопитающих, демонстрирующая успешную имплантацию кардиостимулятора размером с человека кроликам. Описанная методология направлена на представление клинически значимой модели кардиостимуляции и может быть тесно переведена на исследования кардиомиопатии, вызванной тахикардией или кардиостимуляцией, и последующей патофизиологии сердечной недостаточности 2,11,12.
Несмотря на специфические ограничения, модели мелких млекопитающих предлагают преимущества для клинических исследований13. Обладая установленной методологией, модели кардиостимуляции могут обеспечить оптимальную платформу для моделирования широкого спектра сердечно-сосудистых заболеваний и патологических состояний кровообращения 7,14 со значительно меньшими требованиями к ресурсам по сравнению с моделями крупных животных или клиническими испытаниями. В этой статье представлена инновационная, минимально инвазивная модель длительной сердечной стимуляции у кроликов. Следуя этому протоколу, можно использовать полностью имплантированную полноразмерную систему кардиостимулятора человека, включая полноразмерный кардиостимулятор, в модели мелких млекопитающих.
Во время имплантации кардиостимулятора мы смогли расположить поводок в стабильном, оптимальном месте в верхушке правого желудочка у всех животных. Инвазивно измеренные параметры стимуляции находились в пределах нормы, аналогично значениям, распространенным в экспериментах на крупных животных или в медицинечеловека 2,3. Измеренный средний потенциал миокарда 6,5 мВ ± 1,9 мВ в правом желудочке кролика четко распознается стандартным имплантируемым кардиостимулятором. Максимальный измеренный порог стимуляции составлял 2,5 В при длительности стимула 0,4 мс, а импеданс оставался в пределах нормы во время наблюдения. В целом, они представляют собой оптимальные параметры темпа.
Во время наблюдения параметры стимуляции были проверены неинвазивно путем опроса имплантированного кардиостимулятора, и эти параметры обобщены на рисунке 7, рисунке 9 и таблице 1. Желудочковое зондирование и импеданс отведения не продемонстрировали каких-либо существенных изменений в течение 6 месяцев. Несмотря на тенденцию к увеличению порога стимуляции, усредненного по всем субъектам, существенных изменений не наблюдалось, что позволяло безопасно проводить стимуляцию на протяжении всего исследования. Небольшие колебания параметров стимуляции могут быть связаны с местными воспалительными реакциями или фиброзом и могут быть смягчены путем использования материалов с элюированием стероидов. Для использования в долгосрочных исследованиях кардиостимуляции параметры стимуляции следует контролировать и часто корректировать.
Анализ крови не показал системного воспаления или анемии в течение первой недели после имплантации. Тенденция увеличения количества тромбоцитов перед процедурой может быть связана с острым стрессом, вызванным обращением с животными и седацией, поскольку значения оставались стабильными во время наблюдения. Опасным осложнением имплантации кардиостимулятора является проникновение свинца. Особенно при хрупкости тканей мелких млекопитающих следует подозревать проникновение при резком изменении параметров стимуляции, и следует подчеркнуть, что поводком всегда следует осторожно манипулировать в его правильное положение. Рентгеновское изображение может подтвердить проникновение свинца. Острая бактериальная инфекция, связанная с имплантируемым электронным устройством сердца (CIED), является еще одним потенциально тяжелым осложнением, которое вносит значительный вклад в показатели смертности и заболеваемости15. Следовательно, чрезвычайно важно изучать новые материалы, методы стимуляции и усовершенствования свинца, чтобы снизить скорость заражения и продлить долговечность систем стимуляции. Представленная методология обеспечивает подходящую модель на животных для таких жизненно важных экспериментальных исследований.
Ryu et al. индуцировали кардиомиопатию с прогрессирующей сердечной недостаточностью с использованием хирургически имплантированных предсердных отведений и внешнего генератора импульсов12. Аналогичным образом, Фримен и др. пришли к выводу, что устойчивая стимуляция желудочков приводит к депрессии миокарда у кроликов в течение 3-4 недель11. Из-за высокой частоты сердечных сокращений у мелких животных кардиостимулятор должен быть способен регулировать частоту около 300-400 ударов в минуту, чтобы поддерживать ритм в полном темпе. Поскольку эти более высокие частоты стимуляции приводят к прогрессирующей сердечной недостаточности в течение11,12 недель, представленная лепориновая модель является оптимальной для развития и исследования результирующей кардиомиопатии. Учитывая их размер, эти небольшие модели идеально подходят для конкретных применений, таких как оценка гуморальных изменений или изменений ткани миокарда11,16. Эхокардиография может быть дополнительно использована для оценки размеров и сократительной способности лепоринового сердца12,17. Для сравнения, более крупные животные модели сердечной недостаточности имеют другие преимущества, такие как возможность детальной инвазивной гемодинамической оценки, включая коронарное кровообращение или оценку давления и объема2.
Конкретный выбор модели лепорина для исследований кардиостимуляции был основан на ее многочисленных преимуществах. Кролики хорошо переносят процедуру, являются одними из самых маленьких млекопитающих, демонстрирующих способность получать систему кардиостимулятора размером с человека, и требуют использования меньшего количества ресурсов, чем другие более крупные животные. Некоторые авторы18 считают, что физиология мелких млекопитающих может не отражать физиологию человека, но мы обнаружили, что параметры стимуляции, наблюдаемые у этих мелких млекопитающих, очень похожи на те, которые наблюдаются у людей или крупных животных 1,2,3,19, что означает, что они могут быть легко использованы для трансляционных исследований.
Во время установки свинца и имплантации кардиостимулятора в этой модели мелких млекопитающих мы столкнулись со сходством с предыдущими экспериментами на моделях крупных животных, но следует отметить существенные различия. Ткани лепорина хрупкие, а стенки сосудов и желудочков тонкие. В течение всей процедуры необходимы щадящие манипуляции; Свинцовый наконечник всегда должен быть неподдерживаемым стилетом и, следовательно, гибким. Особенно при прохождении через трехстворчатое кольцо и позиционировании ведущего кончика к вершине правого желудочка манипуляция должна проводиться с особой осторожностью и под рентгеноскопическим контролем, чтобы избежать травм. Также должно быть возможно размещение наконечника в других местах. Мы проверили положение правого придатка предсердия и желудочкового оттока с оптимальными перипроцедурными параметрами, но стабильность отведения может быть ограничена, и текущие данные не могут поддерживать альтернативные места стимуляции. Наружная яремная вена кролика имеет соответствующий размер для введения одного отведения. Если предполагается имплантация нескольких отведений, может быть рекомендовано использование более крупного животного.
Фиксация свинца при трабекуляции миокарда осуществлялась пассивно с помощью силиконовых зубцов на кончике свинца. Исходя из нашего опыта, следует избегать использования активной фиксации спиралью, ввинченной в тонкий слой миокарда, чтобы предотвратить травмирование тканей из-за тампонады или грудного кровотечения. Несмотря на небольшой размер правого желудочка кролика, пара электродов для стимуляции, расположенных на расстоянии 25 мм, позволяла использовать как униполярные, так и биполярные конфигурации зондирования и стимуляции (рис. 10). Это может обеспечить универсальность для исследований кардиостимуляции.
Из-за высокой нативной частоты сердечных сокращений мелких млекопитающих18 непрерывная стимуляция может быть достигнута путем специального программирования имплантируемого кардиостимулятора. В качестве альтернативы, метод простой внутренней модификации общей сертифицированной человеком системы кардиостимуляции может быть использован для получения высокоскоростных частот стимуляции, как подробно описано ранее 2,20. Потеря захвата оценивалась с помощью функции исследования неинвазивной стимуляции, которая является уникальным подходом, позволяющим проводить тестирование даже в условиях высокой нативной частоты сердечных сокращений. Сообщаемые параметры стимуляции измерялись регулярно. Имплантированный кардиостимулятор мог автоматически и непрерывно регистрировать восприятие потенциалов миокарда и импеданса свинца, но порог стимуляции приходилось измерять вручную из-за высокой частоты сердечных сокращений. Поэтому, если требуется непрерывный темп, рекомендуется частая оценка, чтобы предотвратить потерю захвата.
Gutruf et al. ранее сообщали об использовании высокоминиатюрных, беспроводных, безбатарейных кардиостимуляторов на моделях мелких животных7. По сравнению с их исследованиями, имплантация кардиостимулятора размером с человека, описанная здесь, представляет собой другой подход, который обеспечивает возможность инновационного тестирования свинца, близкого перевода в клинические исследования и более широкого применения с общедоступными материалами. Zhou et al. представили разработку миниатюрного кардиостимулятора, предназначенного для чрескожной имплантации в сердце плода для лечения атриовентрикулярной блокады. Они сообщили об использовании экспериментов на взрослых кроликах для подтверждения осуществимости такого устройства9. Другие ранее сообщали о преимуществах интубации кроликов для инвазивных процедур. Исходя из нашего опыта, подход поддержания спонтанного дыхания с помощью ороносальной маски имеет больше преимуществ для таких коротких процедур, поскольку сводит к минимуму риск осложнений, вызванных манипуляциями с дыхательными путями. Кроме того, травмы легких под давлением также могут быть предотвращены.
Несмотря на то, что протокол исследования был тщательно подготовлен и общее количество включенных животных было адекватным, необходимо отметить несколько ограничений. Маленький размер правого желудочка кролика не позволял размещать несколько отведений. Хотя мы пытались проверить расположение свинцового наконечника в выходном тракте правого желудочка, у нас есть ограниченные знания о его стабильности, и мы ожидаем, что она будет довольно ограниченной. Тенденция импеданса стимуляции показала снижение в течение первой недели после размещения свинца. Это может быть связано с местным воспалением и легким фиброзом, но вскоре после этого импеданс свинца был восстановлен, и тенденция стабильности постоянно сохранялась. В этом исследовании использовалась однокамерная система стимуляции. В будущих исследованиях также следует изучить продвижение пары кардиостимуляторов через одностороннюю яремную вену. Хотя это не было проверено в этом исследовании, мы считаем, что второе отведение может быть введено и стабилизировано в правом предсердии.
В целом, животные модели сердечной стимуляции имеют множество применений в сердечно-сосудистых исследованиях. Во-первых, стимуляция с нефизиологически высокой частотой в течение нескольких недель приводит к кардиомиопатии, вызванной тахикардией, как сообщалось ранее, и позволяет изучать патофизиологию и лечение хронической сердечной недостаточности 2,3,11,12. Кроме того, в исследованиях усовершенствованных материалов и технологий может использоваться представленная модель лепорина, которая может быть предложена для среднесрочных исследований темпов. Насколько нам известно, это исследование является первым, демонстрирующим преимущества такой модели мелких млекопитающих для сложных экспериментов по кардиостимуляции21. В заключение, с помощью описанной методики система стимуляции размером с человека может быть успешно имплантирована мелким млекопитающим, несмотря на хрупкость тканей и тонкую анатомию. После обучения этот метод легко воспроизводим и обеспечивает основу для моделей пейс-тахикардии с широким применением в сердечно-сосудистых исследованиях.
The authors have nothing to disclose.
Авторы выражают благодарность за советы и помощь Марии Ким, Яне Бортеловой, Алене Эрлиховой, Матею Граховине, Леошу Тейклу, Яне Мишковой и Терезе Вавржиковой за их вдохновение, работу и техническую поддержку. Эта работа была профинансирована MH CZ-DRO (NNH, 00023884), грант IG200501.
Medication | |||
atipamezole | Eurovet Animal Health, B.V. | Atipam | anesthetic |
buprenorphine | Vetoquinol | Bupaq | analgetic |
enrofloxacin | Krka | Enroxil | antibiotic |
isoflurane | Baxter | Aerrane | anesthetic |
ketamine hydrochloride | Richter Gedeon | Calypsol | anesthetic |
medetomidine | Orion Corp. | Domitor | anesthetic |
meloxicam | Cymedica | Melovem | analgetic |
povidone iodine | Egis Praha | Betadine | disinfection |
Silver Aluminium Aerosol | Henry Schein | 9003273 | tincture |
Surgical materials | |||
2-0 Perma-Hand Silk | Ethicon | A185H | silk tie suture |
2-0 Vicryl | Ethicon | V323H | absorbable braided suture |
4-0 Monocryl | Ethicon | MCP494G | monofilament |
BearHugger | 3M | BearHugger | heating pad |
cauterizer | |||
Metzenbaum scissors, lancet with #22 blade, DeBakey forceps, needle driver | basic surgical equipment | ||
sterile drapes | |||
Diagnostic devices | |||
Acuson VF10-5 | Siemens Healthcare | sonographic vascular probe | |
Acuson x300 | Siemens Healthcare | ultrasound system | |
ESP C-arm | GE Healthcare | ESP | X-ray fluoro C-arm |
Pacing devices | |||
400 | Medico | CAT400 | bipolar pacing lead |
Effecta DR | Biotronic | 371199 | implantable pacemaker |
ERA 3000 | Biotronic | 128828 | external pacemaker |
ICS 3000 | Biotronic | 349528 | pacemaker programmer |