前臨床試験で人工ペーシングと心不全発症に利用できる長期心臓ペーシングの低侵襲レポリンモデルを紹介します。
心臓ペーシングの動物モデルは、新しいデバイスのテスト、人工的にペースの速い心臓のリズムの病態生理学の研究、および不整脈誘発心筋症とその後の心不全の研究に有益です。現在、そのようなモデルはごくわずかしか利用できず、ほとんどの場合、広範なリソースが必要です。我々は、不整脈誘発性心不全を研究する可能性のある小型哺乳類における新しい実験的心臓ペーシングモデルを報告する。
全身吸入麻酔下にあるニュージーランドの白ウサギ6匹(平均体重3.5 kg)で頸部を解剖し、右外頸静脈 から ペーシングリードを1本挿入した。透視ガイダンスを使用して、リードをさらに右心室頂点に進め、そこで受動固定を使用して安定化しました。その後、心臓ペースメーカーを接続し、皮下ポケットに埋めました。
ペースメーカーの植え込みは成功し、治癒は良好でした。ウサギの解剖学的構造は鉛の配置に適しています。断続的なペーシングによる6か月の追跡期間中、平均感知心筋電位は6.3 mV(最小:2.8 mV、最大:12 mV)であり、測定された平均リードインピーダンスは744 Ω(最小:370 Ω、最大:1014 Ω)でした。ペーシングスレッショルドは当初0.8V±0.2Vで、フォローアップ中は安定していました。
この本研究は、小型哺乳類モデルで成功した経静脈心臓ペーシングを提示する最初の研究です。サイズと組織の脆弱性にもかかわらず、調整付きの人間サイズの機器は慢性心臓ペーシングに安全に使用できるため、この革新的なモデルは、不整脈誘発心筋症の発症とその結果としての心不全の病態生理学の研究に適しています。
心不全研究および心臓ペーシング開発において、トランスレーショナルモデルは前臨床試験のために頻繁に必要とされる1。さらに、新しいデバイス、材料、および鉛の精製は、臨床使用の前に潜在的な合併症についてテストする必要があります。したがって、心臓ペーシングモデルは、人工的にペースを合わせた心臓リズムの分析や、心機能に対するそれらの病態生理学的影響の研究など、幅広い用途があります2,3。心臓ペーシングまたは頻脈誘発心筋症の実験では、さまざまな動物サイズのモデルを利用することができ、高速ペーシングから数週間以内に心不全が発症します1,3,4,5。
以前の研究では、このような用途での大型動物モデル(ブタ、イヌ、ヒツジ)の使用が報告されています2,3,6。ただし、これらのモデルの入手可能性は限られており、動物の手術と取り扱いに膨大なリソースが必要です。対照的に、小型哺乳類の使用は上記の懸念に対処し、その結果、最適で手頃な研究モデルとして役立つ可能性があります。しかし、小型哺乳類の心臓ペーシング研究はめったに報告されておらず、これは繊細な解剖学的構造、組織の脆弱性、および必要なペーシング率が高いことが原因である可能性があります7,8,9,10,11,12。
小型哺乳類ペースメーカーの研究では、外部ペースメーカー11、12またはワイヤレス顕微鏡ペーシングデバイス5、7、8、9を備えた部分的に埋め込まれたペーシングリードの手術モデルのみが使用されていますが、私たちの知る限り、完全に埋め込まれた人間サイズの経静脈ペースメーカーシステムの使用は今日まで報告されていません。レポリンモデルの以前の証拠は、数週間にわたる速い心拍数でのペーシングが心筋うつ病につながることを示しています11,12。この論文は、ウサギへのヒトサイズのペースメーカーの埋め込みに成功したことを示す、最初の実用的に実行可能な小型哺乳類モデルを提示します。記載された方法論は、心臓ペーシングの臨床的に関連するモデルを提示することを目的としており、頻脈またはペーシング誘発心筋症およびその結果としての心不全病態生理学のヒト研究に密接に変換することができます2,11,12。
特定の制約にもかかわらず、小型哺乳類モデルは臨床研究に利点を提供します13。確立された方法論により、心臓ペーシングモデルは、大型動物モデルや臨床試験と比較して大幅に低いリソース要件で、広範囲の心血管疾患および循環器病態のシミュレーションに最適なプラットフォームを提供できます7,14。この論文は、ウサギの長期にわたる心臓ペーシングの革新的で低侵襲モデルを提示します。このプロトコルに従うことにより、小型哺乳類モデルにおいて、全長ペーシングリードを含む、完全に埋め込まれたフルサイズのヒトペースメーカーシステムを使用することが可能である。
ペースメーカーの植え込み時には、すべての動物において、右心室の頂点の安定した最適な位置にリードを配置することができました。侵襲的に測定されたペーシングパラメータは正常範囲内であり、大型動物実験またはヒト医学で一般的な値と同様でした2,3。右ウサギの心室における6.5mV±1.9mVの測定平均心筋電位は、標準的な植込み型ペースメーカーによって明確に認識されます。測定された最大ペーシングスレッショルドは2.5Vで、刺激持続時間は0.4msで、インピーダンスはフォローアップ中も正常範囲内にとどまりました。全体として、これらは最適なペーシングパラメータを表します。
フォローアップ中、ペーシングパラメータは、埋め込まれたペースメーカーに問い合わせることによって非侵襲的に検証され、これらのパラメータは図 7、 図9、および 表1に要約されています。心室センシングとリードインピーダンスは、6か月間にわたって有意な変化を示しませんでした。すべての被験者で平均したペーシングしきい値の増加傾向にもかかわらず、有意な変化は観察されず、研究全体を通してペーシングを安全に実施することができました。ペーシングパラメータのわずかな変動は、局所的な炎症反応または線維症に起因する可能性があり、ステロイド溶出物質を利用することで軽減できます。長期的なペーシング研究で使用するには、ペーシングパラメータを頻繁に監視および調整する必要があります。
血液分析では,移植後1週間の全身性炎症や貧血は認められなかった.処置前の血小板数の増加傾向は、追跡期間中も値が安定していたため、動物の取り扱いと鎮静によって引き起こされる急性ストレスに起因する可能性があります。ペースメーカー埋め込みの恐れられている合併症は、鉛の浸透です。特に小型哺乳類組織の脆弱性では、ペーシングパラメータが急激に変化すると浸透が疑われ、リードは常に適切な位置に注意深く操作する必要があることを強調する必要があります。X線画像で鉛の貫通を確認できます。急性心臓埋め込み型電子機器(CIED)関連の細菌感染は、死亡率と罹患率に大きく寄与する別の潜在的に重篤な合併症です15。したがって、感染率を減らし、ペーシングシステムの耐久性を延ばすために、新しい材料、ペーシング技術を研究し、改良を導くことが非常に重要です。提示された方法論は、そのような重要な実験研究のための適切な動物モデルを提供する。
Ryuらは、外科的に埋め込まれた心房ペーシングリードおよび外部パルス発生器を用いて進行性心不全を伴う心筋症を誘発した12。同様に、Freemanらは、持続的な心室ペーシングが3〜4週間にわたってウサギの心筋うつ病につながると結論付けました11。小動物のネイティブ心拍数が高いため、ペースメーカーは、完全にペースのリズムを維持するために、約300〜400 bpmの周波数をペーシングできる必要があります。これらのより高いペーシング頻度は週11,12にわたって進行性心不全につながるため、提示されたレポリンモデルは、結果として生じる心筋症の発症と調査に最適です。そのサイズを考慮すると、これらの小型モデルは、体液性または心筋組織の変化の評価などの特定のアプリケーションに最適です11,16。心エコー検査はさらに、レポリン心臓の寸法および収縮性を評価するために使用することができる12、17。比較すると、心不全のより大きな動物モデルには、冠循環または圧力-体積評価を含む詳細な侵襲的血行動態評価の可能性など、他の利点があります2。
ペーシング研究のためのレポリンモデルの具体的な選択は、その複数の利点に基づいていました。ウサギはこの手順によく耐え、人間サイズのペースメーカーシステムを受け取る能力を実証する最小の哺乳類の1つであり、他の大型動物よりも少ないリソースの展開を必要とします。一部の著者18は、小型哺乳類の生理機能は人間の生理機能を反映していない可能性があると考えていますが、これらの小型哺乳類で観察されたペーシングパラメータは、ヒトまたは大型動物で見られるものと非常に類似しており1,2,3,19、トランスレーショナル研究に容易に利用できることを意味します。
この小型哺乳類モデルにおけるリード留置とペースメーカーの埋め込み中に、大型動物モデルでの以前の実験との類似点に遭遇しましたが、有意差を指摘する必要があります。レポリン組織は壊れやすく、血管と心室の壁は薄いです。手順全体を通して穏やかな操作が必要です。リードチップは常にスタイレットでサポートされていないため、柔軟性があります。特に三尖弁を通過し、リード先端を右心室の頂点に配置する場合は、怪我をしないように細心の注意を払い、透視ガイダンスの下で操作を行う必要があります。チップを他の場所に配置することもできます。最適な術周囲パラメータを用いて右心房付属器と心室流出路の位置をテストしましたが、リードの安定性は限られている可能性があり、現在のデータは代替ペーシング部位をサポートできません。ウサギの外頸静脈は、単一のペーシングリードを挿入するのに適切なサイズです。複数のリードの移植が意図されている場合は、より大きな動物の使用をお勧めします。
心筋線維柱帯における鉛固定は、リード先端にシリコンタインを用いて受動的に行われた。我々の経験に基づいて、タンポナーデまたは胸部出血による組織損傷を防ぐために、薄い心筋層にねじ込まれたらせんによる能動固定の使用は避けなければならない。ウサギの右心室のサイズが小さいにもかかわらず、25 mm間隔で配置されたペーシング電極のペアにより、ユニポーラとバイポーラの両方のセンシングおよびペーシング構成が可能になりました(図10)。これにより、心臓ペーシング研究に汎用性を提供できます。
小型哺乳類18の高い天然心拍数のために、連続ペーシングは、埋め込み型ペースメーカのカスタムプログラミングによって達成することができる。あるいは、一般的な人間認定ペーシングシステムの単純な社内修正の方法を使用して、以前に詳細に説明したように、高速ペーシング周波数を得ることができます2、20。キャプチャの喪失は、ネイティブ心拍数が高い状態でもテストできる独自のアプローチである非侵襲的ペーシング研究機能を使用して評価されました。報告されたペーシングパラメータは定期的に測定された。埋め込まれたペースメーカーは、心筋電位とリードインピーダンスのセンシングを自動的かつ継続的に記録することができましたが、ネイティブ心拍数が高いため、ペーシングしきい値を手動で測定する必要がありました。したがって、継続的なペーシングが必要な場合は、キャプチャの損失を防ぐために頻繁な評価をお勧めします。
Gutrufらは以前、小動物モデルにおける高度に小型化されたワイヤレスのバッテリーフリーペースメーカーの使用を報告しました7。彼らの研究と比較して、ここで説明する人間サイズのペースメーカーの埋め込みは、革新的なリードテスト、臨床研究への密接な翻訳、および一般に入手可能な材料によるより広いアプリケーションの可能性を提供する異なるアプローチを表しています。Zhouらは、房室ブロックを治療するために胎児の心臓に経皮的に埋め込まれるように設計された小型心臓ペースメーカーの開発を発表しました。彼らは、そのような装置の実現可能性を確認するために成体ウサギ実験の使用を報告した9。他の人は以前に侵襲的処置のためのウサギ挿管の利点を報告しました。私たちの経験に基づいて、口腔鼻マスクで自発呼吸を維持するアプローチは、気道の操作によって引き起こされる合併症のリスクを最小限に抑えるため、このような短い手順により多くの利点があります。さらに、褥瘡による損傷も防ぐことができます。
研究プロトコルは慎重に準備され、含まれる動物の総数は適切でしたが、いくつかの制限を指摘する必要があります。ウサギの右心室のサイズが小さいため、複数のリード配置はできませんでした。右室流出路におけるリード先端の位置を試験してみたが,安定性に関する知見は限られており,かなり限定的であると予想している。ペーシングインピーダンスの傾向は、リード配置後最初の1週間以内に低下を示しました。これは局所的な炎症と軽度の線維症が原因である可能性がありますが、その後すぐにリードインピーダンスが回復し、安定性の傾向が継続的に維持されました。この研究では、シングルチャンバーペーシングシステムを使用しました。将来の研究では、片側頸静脈を通るペーシングリードのペアを進めることも調査する必要があります。これはこの研究ではテストされていませんが、右心房に2番目のリードを導入して安定させることができると考えています。
一般に、心臓ペーシングの動物モデルは、心臓血管研究において多くの用途があります。第一に、数週間にわたる非生理学的な高頻度でのペーシングは、以前に報告されているように頻脈誘発心筋症につながり、慢性心不全の病態生理学と治療の研究を可能にします2,3,11,12。さらに、洗練された材料と技術の研究は、提示されたレポリンモデルを利用することができ、中期的なペーシング研究に示唆される可能性があります。我々の知る限り、この研究は、複雑な心臓ペーシング実験のためのそのような小型哺乳類モデルの利点を実証した最初のものである21。結論として、記載された方法論では、組織の脆弱性および繊細な解剖学的構造にもかかわらず、ヒトサイズのペーシングシステムを小型哺乳動物に首尾よく移植することができる。トレーニング後、この手法は簡単に再現可能であり、心臓血管研究に幅広い用途があるペース頻脈のモデルの基礎を提供します。
The authors have nothing to disclose.
著者は、マリア・キム、ヤナ・ボルテロヴァー、アリーナ・エールリコヴァー、マチェイ・フラコヴィナ、レオシュ・テイクル、ヤナ・ミシュコヴァー、テレザ・ヴァヴジーコヴァーのインスピレーション、仕事、技術サポートに対するアドバイスと支援に感謝の意を表します。この研究は、MH CZ-DRO(NNH、00023884)、IG200501助成金によって資金提供されました。
Medication | |||
atipamezole | Eurovet Animal Health, B.V. | Atipam | anesthetic |
buprenorphine | Vetoquinol | Bupaq | analgetic |
enrofloxacin | Krka | Enroxil | antibiotic |
isoflurane | Baxter | Aerrane | anesthetic |
ketamine hydrochloride | Richter Gedeon | Calypsol | anesthetic |
medetomidine | Orion Corp. | Domitor | anesthetic |
meloxicam | Cymedica | Melovem | analgetic |
povidone iodine | Egis Praha | Betadine | disinfection |
Silver Aluminium Aerosol | Henry Schein | 9003273 | tincture |
Surgical materials | |||
2-0 Perma-Hand Silk | Ethicon | A185H | silk tie suture |
2-0 Vicryl | Ethicon | V323H | absorbable braided suture |
4-0 Monocryl | Ethicon | MCP494G | monofilament |
BearHugger | 3M | BearHugger | heating pad |
cauterizer | |||
Metzenbaum scissors, lancet with #22 blade, DeBakey forceps, needle driver | basic surgical equipment | ||
sterile drapes | |||
Diagnostic devices | |||
Acuson VF10-5 | Siemens Healthcare | sonographic vascular probe | |
Acuson x300 | Siemens Healthcare | ultrasound system | |
ESP C-arm | GE Healthcare | ESP | X-ray fluoro C-arm |
Pacing devices | |||
400 | Medico | CAT400 | bipolar pacing lead |
Effecta DR | Biotronic | 371199 | implantable pacemaker |
ERA 3000 | Biotronic | 128828 | external pacemaker |
ICS 3000 | Biotronic | 349528 | pacemaker programmer |