Aqui, descrevemos o método para estabelecer um modelo de cultura de células triplas da barreira hematoencefálica baseado em células endoteliais microvasculares cerebrais humanas primárias, astrócitos e pericitos. Este modelo multicelular é adequado para estudos de disfunção da unidade neurovascular durante acidente vascular cerebral isquêmico in vitro ou para a triagem de candidatos a medicamentos.
O acidente vascular cerebral isquêmico é uma das principais causas de morte e incapacidade em todo o mundo, com opções terapêuticas limitadas. A neuropatologia do acidente vascular cerebral isquêmico é caracterizada por uma interrupção no suprimento de sangue para o cérebro, levando à morte celular e disfunção cognitiva. Durante e após o acidente vascular cerebral isquêmico, a disfunção da barreira hematoencefálica (BBB) facilita a progressão da lesão e contribui para a má recuperação do paciente. Os modelos atuais de BBB incluem principalmente monoculturas endoteliais e coculturas duplas com astrócitos ou pericitos.
Tais modelos não têm a capacidade de imitar completamente um microambiente cerebral dinâmico, o que é essencial para a comunicação célula-a-célula. Além disso, os modelos BBB comumente usados geralmente contêm células endoteliais humanas imortalizadas ou culturas de células derivadas de animais (roedores, suínos ou bovinos) que apresentam limitações translacionais. Este artigo descreve um novo modelo BBB bem baseado em inserção contendo apenas células humanas primárias (células endoteliais microvasculares cerebrais, astrócitos e pericitos vasculares cerebrais) permitindo a investigação de lesão cerebral isquêmica in vitro.
Os efeitos da privação de oxigênio-glicose (OGD) sobre a integridade da barreira foram avaliados pela permeabilidade passiva, medições de resistência elétrica transendotelial (TEER) e visualização direta de células hipóxicas. O protocolo apresentado oferece uma vantagem distinta que imita o ambiente intercelular do BBB in vivo, servindo como um modelo de BBB in vitro mais realista para o desenvolvimento de novas estratégias terapêuticas no cenário de lesão cerebral isquêmica.
O AVC é uma das principais causas de morte e incapacidade a longo prazo em todo o mundo1. A incidência de AVC aumenta rapidamente com a idade, dobrando a cada 10 anos após os 55 anos2. O acidente vascular cerebral isquêmico ocorre como resultado da ruptura do fluxo sanguíneo cerebral devido a eventos trombóticos e embólicos, que abrange mais de 80% de todos os casos de AVC3. Mesmo agora, existem relativamente poucas opções de tratamento disponíveis para minimizar a morte tecidual após acidente vascular cerebral isquêmico. Os tratamentos que existem são sensíveis ao tempo e, consequentemente, nem sempre levam a bons resultados clínicos. Portanto, a pesquisa sobre mecanismos celulares complexos de acidente vascular cerebral isquêmico que afetam a recuperação pós-AVC é urgentemente necessária.
O BBB é uma interface dinâmica para a troca de moléculas entre o sangue e o parênquima cerebral. Estruturalmente, o BBB é composto por células endoteliais microvasculares cerebrais interconectadas por complexos juncionais circundados por membrana basal, pericitos e extremidades astrocíticas4. Pericitos e astrócitos desempenham um papel essencial na manutenção da integridade do BBB através da secreção de vários fatores necessários para a formação de junções fortes e apertadas 5,6. A quebra do BBB é uma das características do acidente vascular cerebral isquêmico. A resposta inflamatória aguda e o estresse oxidativo associados à isquemia cerebral resultam na ruptura de complexos proteicos de junção apertada e no crosstalk desregulado entre astrócitos, pericitos e células endoteliais, o que leva ao aumento da permeabilidade de solutos paracelulares em todo o BBB7. A disfunção do BBB promove ainda a formação de edema cerebral e aumenta o risco de transformação hemorrágica8. Considerando todos os itens acima, há grande interesse em compreender as alterações moleculares e celulares que ocorrem no nível BBB durante e após o AVC isquêmico.
Embora muitos modelos de BBB in vitro tenham sido desenvolvidos nas últimas décadas e utilizados em uma variedade de estudos, nenhum deles pode se replicar totalmente em condições in vivo 9. Enquanto alguns modelos são baseados em monocamadas de células endoteliais cultivadas em suportes permeáveis de inserção de poço isoladamente ou em combinação com pericitos ou astrócitos, apenas estudos mais recentes introduziram desenhos de modelos de cultura de células triplas. Quase todos os modelos de BBB de cultura tripla existentes incorporam células endoteliais cerebrais primárias, juntamente com astrócitos e pericitos isolados de espécies animais ou células derivadas de células-tronco pluripotentes humanas10,11,12,13.
Reconhecendo a necessidade de recapitular melhor o BBB humano in vitro, estabelecemos um modelo de BBB in vitro de cultura de células triplas composto por células endoteliais microvasculares do cérebro humano (HBMEC), astrócitos humanos primários (HA) e pericitos vasculares cerebrais humanos primários (HBVP). Este modelo BBB de cultura tripla é configurado em inserções de membrana de poliéster de placa de 6 poços com tamanho de poro de 0,4 μm. Essas inserções de poço fornecem um ambiente ideal para a fixação celular e permitem fácil acesso aos compartimentos apicais (sangue) e basolateral (cérebro) para amostragem média ou aplicação de compostos. As características deste modelo BBB de cultura de células triplas proposto são avaliadas medindo-se TEER e fluxo paracelular pós-OGD imitando acidente vascular cerebral isquêmico in vitro, com uma escassez de oxigênio (<1% O2) e nutrientes (usando meio livre de glicose) alcançada usando uma câmara umidificado e selada. Além disso, as condições isquêmicas induzidas neste modelo são verificadas com precisão pela visualização direta de células hipóxicas.
Neste protocolo, descrevemos um método para estabelecer um modelo confiável de cultura BBB de células endoteliais triplas de pericitos-astrócitos para estudar a disfunção de BBB no contexto de acidente vascular cerebral isquêmico in vitro. Considerando que os pericitos são os vizinhos mais próximos das células endoteliais in vivo, as HBVP são revestidas na parte inferior das inserções de poços neste modelo16. Embora essa configuração não tenha a comunicação dir…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pelos subsídios dos Institutos Nacionais de Saúde (NIH) MH128022, MH122235, MH072567, MH122235, HL126559, DA044579, DA039576, DA040537, DA050528 e DA047157.
24 mm Transwell with 0.4 µm Pore Polyester Membrane Insert | Corning | 3450 | |
35 mm Glass Bottom Dishes | MatTek Life Sciences (FISHERSCI) | P35GC-1.5-14-C | |
Astrocyte Medium | Science Cell | 1801 | |
Attachment Factor | Cell Systems (Fisher Scientific) | 4Z0-201 | |
BD 60 mL Syringe | BD | 309653 | |
BrainPhys Imaging Optimized Medium | STEMCELL Technologies | 5791 | |
Complete Classic Medium With Serum and CultureBoost | 4Z0-500 | Cell Systems | |
Corning 50 mL PP Centrifuge Tubes (Conical Bottom with CentriStar Cap | VWR | 430829 | |
Corning 75cm² U-Shaped Canted Neck Not Treated Cell Culture Flask | Corning | 431464U | |
Corning CellBIND 96-well Flat Clear Bottom Black Polystyrene Microplates | Corning | 3340 | |
Countes Cell Counting Chamber Slides | Thermo Fisher Scientific | C10228 | |
Countess II FL Automated Cell Counter | Thermo Fisher Scientific | ZGEXSCCOUNTESS2FL | |
Decon CiDehol 70 Isopropyl Alcohol Solution | Fisher Scientific | 04-355-71 | |
Disposable Petri Dishes | VWR | 25384-088 | |
DMEM Medium (No glucose, No glutamine, No phenol red) | ThermoFisher | A14430-01 | Glucose-free medium |
DPBS (No Calcium, No Magnesium) | ThermoFisher | 14190250 | |
EBM Endothelial Cell Growth Basal Medium, Phenol Red Free, 500 mL | Lonza | CC-3129 | |
EVOM2 Epithelial Volt/Ohm (TEER) Meter with STX2 electrodes | World Precison Instruments | NC9792051 | Epithelial voltohmmeter |
Fluorescein isothiocyanate–dextran (wt 20,000) | Millipore Sigma | FD20-250MG | |
Fluorescein isothiocyanate–dextran (wt 70,000) | Millipore Sigma | FD70S-250MG | |
Fluorview FV3000 Confocal Microscope | Olympus | FV3000 | |
Gas Tank (95% N2, 5% CO2) | Airgas | X02NI95C2003071 | |
HBSS (No calcium, No magnesium, no phenol red) | Thermofisher | 14025092 | |
Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate – 10 mg/mL Solution in Water | ThermoFisher | H3570 | |
Human Astrocytes | Science Cell | 1800 | |
Human Brain Vascular Pericytes | Science Cell | 1200 | |
Hypoxia Incubator Chamber | STEMCELL Technologies | 27310 | |
Image-iT Green Hypoxia Reagent | ThermoFisher | I14834 | |
Pericyte Medium | Science Cell | 1201 | |
Primary Human Brain Microvascular Endothelial Cells | ACBRI 376 | Cell Systems | |
Rocking Platform Shaker, Double | VWR | 10860-658 | |
Single Flow Meter | STEMCELL Technologies | 27311 | |
SpectraMax iD3 Microplate Reader | Molecular Devices | 75886-128 | |
Syringe Filter, 25 mm, 0.22 μm, PVDF, Sterile | NEST Scientific | 380121 | |
TPP Mutli-well Plates (6 wells) | MidSci | TP92406 | |
TPP Tissue Culture Flasks T-75 Flasks | MidSci | TP90075 | Flasks with activated surface for cell adhesion |
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red | ThermoFisher | 25200056 | |
UltraPure Distilled Water | Invitrogen (Life Technologies) | 10977-015 | |
Uno Stage Top Incubator- | Oko Lab | UNO-T-H-CO2-TTL |