Summary

In vitro Переваривание эмульсий в одной капле с помощью многофазного обмена моделируемых желудочно-кишечных жидкостей

Published: November 18, 2022
doi:

Summary

Подвесной баланс капельной поверхности пленки, реализованный с многофазным обменом, получившим название OCTOPUS, позволяет имитировать пищеварительные условия путем последовательного субфазного обмена исходного объемного раствора с моделируемыми желудочно-кишечными жидкостями. Моделируемое пищеварение in vitro контролируется путем регистрации in situ межфазного напряжения переваренного межфазного слоя.

Abstract

Эмульсии в настоящее время используются для инкапсуляции и доставки питательных веществ и лекарств для лечения различных желудочно-кишечных заболеваний, таких как ожирение, обогащение питательными веществами, пищевая аллергия и заболевания пищеварительной системы. Способность эмульсии обеспечивать желаемую функциональность, а именно достигать определенного участка в желудочно-кишечном тракте, ингибировать/замедлять липолиз или облегчать усвояемость, в конечном итоге зависит от ее восприимчивости к ферментативной деградации в желудочно-кишечном тракте. В эмульсиях масло-в-воде липидные капли окружены межфазными слоями, где эмульгаторы стабилизируют эмульсию и защищают инкапсулированное соединение. Достижение индивидуальной усвояемости эмульсий зависит от их первоначального состава, но также требует мониторинга эволюции этих межфазных слоев, поскольку они подвергаются различным фазам желудочно-кишечного пищеварения. Подвесной баланс капельной поверхности, реализованный с многофазным обменом, позволяет моделировать переваривание эмульсий in vitro в одной водной капле, погруженной в масло, путем применения индивидуальной модели статического пищеварения. Транзит через желудочно-кишечный тракт имитируется субфазным обменом исходного капельного объемного раствора с искусственными средами, имитируя физиологические условия каждого отсека/стадии желудочно-кишечного тракта. Динамическая эволюция межфазного напряжения регистрируется in situ на протяжении всего моделируемого желудочно-кишечного пищеварения. Механические свойства переваренных интерфейсов, такие как межфазная дилатационная эластичность и вязкость, измеряются после каждой фазы пищеварения (пероральная, желудочная, тонкая кишка). Состав каждой пищеварительной среды может быть настроен с учетом особенностей пищеварительных состояний, включая желудочно-кишечные патологии и пищеварительные среды младенцев. Выявлены специфические межфазные механизмы, влияющие на протеолиз и липолиз, обеспечивающие инструменты для модуляции пищеварения с помощью межфазной инженерии эмульсий. Полученными результатами можно манипулировать для разработки новых пищевых матриц с индивидуальными функциональными возможностями, такими как низкая аллергенность, контролируемое потребление энергии и снижение усвояемости.

Introduction

Понимание того, как переваривается жир, что включает в себя эмульсионное пищеварение, важно для рационального проектирования продуктов с индивидуальной функциональностью1. Субстратом для переваривания жира является эмульсия, так как жир эмульгируется при потреблении путем механического воздействия и смешивания с биоповерхностностями во рту и желудке. Кроме того, большая часть жира, потребляемого людьми, уже эмульгирована (например, молочные продукты), и в случае младенцев или некоторых пожилых людей это единственная форма потребления. Следовательно, дизайн продуктов на основе эмульсии с определенными профилями пищеварения очень важен в питании1. Кроме того, эмульсии могут инкапсулировать и доставлять питательные вещества, лекарства или липофильные биоактивныевещества 2 для лечения различных желудочно-кишечных заболеваний, таких как ожирение3, обогащение питательными веществами, пищевая аллергия и заболевания пищеварительной системы. В эмульсиях масло-вода липидные капли окружены межфазными слоями эмульгаторов, таких как белки, поверхностно-активные вещества, полимеры, частицы и смеси4. Роль эмульгаторов двояка: стабилизировать эмульсию5 и защитить/транспортировать инкапсулированное соединение к определенному участку. Достижение индивидуальной усвояемости эмульсий зависит от их исходного состава, но также требует мониторинга непрерывной эволюции этого интерфейса во время транзита через желудочно-кишечный тракт (рисунок 1).

Figure 1
Рисунок 1: Применение межфазной инженерии эмульсий для борьбы с некоторыми из основных желудочно-кишечных заболеваний. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Переваривание липидов в конечном счете является межфазным процессом, поскольку оно требует адсорбции липаз (желудочных или панкреатических) на границе раздела масло-вода эмульгированных липидных капель через межфазный слой для достижения и гидролиза триглицеридов, содержащихся в масле, в свободные жирные кислоты и моноацилглицериды6. Схематизирована на рисунке 2. Желудочная липаза конкурирует с пепсином и фосфолипидами в желудке за границу раздела масло-вода (рисунок 2, желудочное пищеварение). Затем панкреатическая липаза / колипаза конкурируют с трипсином / химотрипсином, фосфолипидами, солями желчи и пищеварительными продуктами в тонком кишечнике. Протеазы могут изменять межфазный охват, предотвращая или способствуя адсорбции липазы, в то время как соли желчи очень активны на поверхности и вытесняют большую часть оставшегося эмульгатора для содействия адсорбции липазы (рисунок 2, кишечное пищеварение). В конце концов, скорость и степень липолиза зависят от межфазных свойств исходной/желудочной перевариваемой эмульсии, таких как толщина, межмолекулярные связи и электростатические и стерические взаимодействия. Соответственно, мониторинг эволюции межфазного слоя по мере его переваривания предлагает экспериментальную платформу для выявления межфазных механизмов и событий, влияющих на адсорбцию липазы и, следовательно, на переваривание липидов.

Figure 2
Рисунок 2: Принципиальная диаграмма, иллюстрирующая роль интерфейсов в желудочно-кишечном липидном переваривании. Гидролиз пепсина изменяет межфазный состав в желудочной фазе, в то время как желудочная липаза гидролизует триглицериды. В тонком кишечнике трипсин/химотрипсин дополнительно гидролизуют межфазную пленку, в то время как липолиз протекает путем адсорбции BS/липаз, гидролиза триглицеридов и десорбции липолитических продуктов путем солюбилизации в мицеллах/комплексе BS. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Подвесное капельное оборудование в Университете Гранады (UGR) реализовано с запатентованной технологией, коаксиальным двойным капилляром, что позволяет осуществлять субфазный обмен объемного раствора7. Капилляр, удерживающий подвесную каплю, состоит из расположения двух коаксиальных капилляров, которые независимо соединены с каждым каналом двойного микроинжектора. Каждый микроинжектор может работать независимо, что позволяет обмениваться сброшенным содержимым сквозным потоком7. Соответственно, субфазный обмен состоит из одновременного введения нового раствора с внутренним капилляром и экстракции объемного раствора с наружным капилляром с использованием той же скорости потока. Этот процесс позволяет заменить объемный раствор без нарушения межфазной области или объема капли. Позже эта процедура была модернизирована до многофазного обмена, который позволяет проводить до восьми последовательных подфазных обменов капельного объемного раствора8. Это позволяет моделировать пищеварительный процесс в одной водной капле, взвешенной в липидных средах, путем последовательного обмена объемным раствором с искусственными средами, имитирующими различные отсеки (рот, желудок, тонкая кишка). Вся установка представлена на рисунке 3, включая детали компонентов. Шприцы в микроинжекторе соединены с восемью клапанами, каждый из которых подключается к микроцентрифужной трубке, содержащей искусственную пищеварительную жидкость с компонентами, описанными на фиг.2.

Figure 3
Рисунок 3: Общий вид OCTOPUS со всеми компонентами. ПЗС-камера, микроскоп, микропозитор, термостабилизированная ячейка и двойной капилляр соединены независимо друг от друга с двойным микроинжектором с двумя шприцевыми шприцевыми, соединенными с восемью клапанами. Каждый шприц соединяется с капиллярами, четырьмя микроцентрифужными трубками с образцом и одним разрядом. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

На рисунке 4А показано, как каждая из искусственных пищеварительных жидкостей вводится в подвесную каплю путем субфазного обмена через двойной капилляр. Каждое пищеварительное соединение, описанное на фиг.2 , может применяться одновременно/последовательно, имитируя прохождение через желудочно-кишечный тракт. Искусственные пищеварительные жидкости содержат различные ферменты и биозащищенные вещества, которые изменяют межфазное напряжение исходного эмульгатора, как схематизировано на рисунке 4B. Программное обеспечение DINATEN (см. Таблицу материалов), также разработанное в UGR, регистрирует эволюцию межфазного напряжения в режиме реального времени, когда начальный межфазный слой переваривается in vitro. Кроме того, после каждой пищеварительной фазы дилатационная эластичность межфазного слоя вычисляется путем наложения периодических колебаний объема/межфазной области на стабилизированный межфазный слой и регистрации реакции межфазного напряжения. Период/частота и амплитуда колебаний могут варьироваться, а обработка изображений с помощью программного обеспечения CONTACTO обеспечивает дилатационные реологические параметры8.

Figure 4
Рисунок 4: Примеры профилей пищеварения. (А) Исходный слой эмульгатора подвергают искусственной пищеварительной среде, помещенной в микроцентрифугу путем последовательного субфазного обмена различных растворов в подвесную каплю. (B) Общая эволюция межфазного напряжения (ось Y) исходного эмульгатора в зависимости от времени (ось x), когда он переваривается in vitro различными ферментами/биоповерхноводчиками в искусственных средах. Заключительный субфазный обмен с простой кишечной жидкостью измеряет десорбцию переваренного липида путем солюбилизации в смешанных мицеллах. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

В данном исследовании представлен общий протокол, предназначенный для измерения in vitro переваривания межфазных слоев с помощью подвесного капельного оборудования9. Начальный межфазный слой подвергается последовательно условиям, имитирующим прохождение через желудочно-кишечный тракт, как показано на рисунке 2. Эти различные пищеварительные среды вводят в подвесную каплю путем субфазного обмена различных растворов, содержащихся в микроцентрифужных трубках (рисунок 4А). Состав этих сред может быть настроен в зависимости от желудочно-кишечных состояний, которые будут оцениваться, а именно желудочного / кишечного протеолиза / липолиза, что позволяет измерять кумулятивные эффекты и синергии10. Экспериментальные условия, используемые для имитации процесса пищеварения в каждом отсеке, соответствуют международному консенсусному протоколу, опубликованному INFOGEST, в котором подробно описывается рН и количество электролитов и ферментов11. Экспериментальное устройство на основе подвесного капли позволяет регистрировать межфазное натяжение in situ на протяжении всего моделируемого процесса пищеварения. Дилатационная реология межфазного слоя вычисляется в конце каждой пищеварительной стадии. Таким образом, каждый эмульгатор предлагает профиль пищеварения, иллюстрирующий свойства переваренных интерфейсов, как показано на рисунке 4B. Это позволяет извлекать выводы относительно его восприимчивости или устойчивости к различным стадиям пищеварительного процесса. В целом, искусственные пищеварительные среды содержат кислоту / основной рН, электролиты, протеазы (желудочные и кишечные), липазы (желудочные и кишечные), желчные соли и фосфолипиды, которые растворяются в соответствующих пищеварительных жидкостях (желудочных или кишечных). На рисунке 4B показан общий профиль эволюции межфазного напряжения эмульгатора, сначала подвергающегося протеазному действию, а затем липазы. В целом, протеолиз межфазного слоя способствует увеличению межфазного напряжения вследствие десорбции гидролизованных пептидов 9,12, в то время как липолиз приводит к очень резкому снижению межфазного напряжения за счет адсорбции желчных солей и липаз13. Заключительный субфазный обмен с кишечной жидкостью истощает объемный раствор нерассеянного/переваренного материала и способствует десорбции растворимых соединений и солюбилизации переваренных липидов в смешанных мицеллах. Это количественно определяется зарегистрированным увеличением межфазного напряжения (рисунок 4В).

Таким образом, экспериментальная конструкция, реализованная в подвесной капле для имитации переваривания in vitro в одной капле, позволяет измерять кумулятивные эффекты и синергизм, поскольку процесс пищеварения последовательно применяется к начальному межфазному слою10. Состав каждой пищеварительной среды может быть легко настроен с учетом особенностей пищеварительных состояний, включая желудочно-кишечные патологии или пищеварительные среды14 у младенцев. Затем идентификация межфазных механизмов, влияющих на протеолиз и липолиз, может быть использована для модуляции пищеварения путем межфазной инженерии эмульсий. Полученные результаты могут быть применены при разработке новых пищевых матриц с индивидуальными функциональными возможностями, такими как низкая аллергенность, контролируемое потребление энергии и снижение усвояемости 15,16,17,18,19.

Protocol

1. Последовательность очистки всей стеклянной посуды, используемой в экспериментах по поверхностной науке Протрите стеклянную посуду концентрированным чистящим раствором (см. Таблицу материалов), разведенным в воде (10%). Тщательно промойте последовательно…

Representative Results

В этом разделе приведены различные примеры профилей пищеварения, измеренных с помощью OCTOPUS. Общий вид моделируемого профиля пищеварения показан на рисунке 4B. Межфазное напряжение обычно представлено со временем в профиле пищеварения. Различные рассматриваемые фазы/ст…

Discussion

В этой статье описывается обобщенный протокол измерения in vitro переваривания межфазных слоев с помощью подвесного капельного оборудования. Протокол может быть адаптирован к конкретным требованиям эксперимента путем настройки состава пищеварительных буферов, которые основаны на…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование финансировалось проектами RTI2018-101309-B-C21 и PID2020-631-116615RAI00, финансируемыми MCIN/AEI/10.13039/501100011033 и «ERDF Способ создания Европы». Эта работа была (частично) поддержана Группой по физике биоколлоидов и жидкостей (ref. PAI-FQM115) Университета Гранады (Испания).

Materials

Alpha-chymotrypsin from bovine pancreas Sigma-Aldrich C4129 Enzyme
Beta-lactoglobulin Sigma-Aldrich L0130 Emulsfier
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich 9048-46-8 Emulsfier
CaCl2 Sigma-Aldrich 10043-52-4 Electrolyte
Centrifuge Kronton instruments Centrikon T-124 For separating oil and resins
Citrus pectin Sigma-Aldrich P9135 Emulsfier
co-lipase FROM PORCINE PANCREAS Sigma C3028 Enzyme
CONTACTO University of Granada (UGR) https://core.ugr.es/dinaten/, last access: 07/18/2022
DINATEN University of Granada (UGR) https://core.ugr.es/dinaten/, last access: 07/18/2022
Gastric lipase Lipolytech RGE15-1G Enzyme
Human Serum Albumin Sigma-Aldrich 70024-90-7 Emulsifier
INFOGEST http://www.proteomics.ch/IVD/
Lipase from porcine pancreas, type II Sigma-Aldrich L33126 Enzyme
Magnesium metasilicate resins Fluka 1343-88-0 Resins to purify oil
Micro 90 International products M-9051-04 Cleaner
NaCl Sigma 7647-14-5 Electrolyte
NaH2PO4 Scharlau 10049-21-5 To prepare buffer
OCTOPUS Producciones Científicas y Técnicas S.L. (Gójar, Spain) Pendandt Drop Equipment implemented with multi subphase exchange
Olive oil Sigma-Aldrich 1514 oil
Pancreatic from porcine pancreas Sigma P7545-25 g Enzyme
Pepsin Sigma-Aldrich P6887 Enzyme
Pluronic F127 Sigma P2443 Emulsifier
Pluronic F68 Sigma P1300 Emulsfier
Sodium deoxycholate Sigma Bile salts
Sodium glycodeoxycholate Sigma C9910 Bile salts
Sodium taurocholate Sigma 86339 Bile salts
Syringe Filter Millex-DP SLGP033R  Syringe Filter 0.22 µm pore size polyethersulfone
Trypsin Sigma-Aldrich T1426 Enzyme

References

  1. McClements, D. J. The biophysics of digestion: Lipids. Current Opinion in Food Science. 21, 1-6 (2018).
  2. McClements, D. J., Li, Y. Structured emulsion-based delivery systems: Controlling the digestion and release of lipophilic food components. Advances in Colloid and Interface Science. 159 (2), 213-228 (2010).
  3. Corstens, M. N., et al. Food-grade micro-encapsulation systems that may induce satiety via delayed lipolysis: A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 57 (10), 2218-2244 (2017).
  4. Aguilera-Garrido, A., del Castillo-Santaella, T., Galisteo-González, F., Gálvez-Ruiz, M. J., Maldonado-Valderrama, J. Investigating the role of hyaluronic acid in improving curcumin bioaccessibility from nanoemulsions. Food Chemistry. 351, 129301 (2021).
  5. Rodríguez Patino, J. M., Carrera Sánchez, C., Rodríguez Niño, M. R. Implications of interfacial characteristics of food foaming agents in foam formulations. Advances in Colloid and Interface Science. 140 (2), 95-113 (2008).
  6. Wilde, P. J., Chu, B. S. Interfacial & colloidal aspects of lipid digestion. Advances in Colloid and Interface Science. 165 (1), 14-22 (2011).
  7. Cabrerizo-Vílchez, M. A., Wege, H. A., Holgado-Terriza, J. A., Neumann, A. W. Axisymmetric drop shape analysis as penetration Langmuir balance. Review of Scientific Instruments. 70 (5), 2438-2444 (1999).
  8. Maldonado-Valderrama, J., Muros-Cobos, J. L., Holgado-Terriza, J. A., Cabrerizo-Vílchez, M. A. Bile salts at the air-water interface: Adsorption and desorption. Colloids and surfaces B: Biointerfaces. 120, 176-183 (2014).
  9. Maldonado-Valderrama, J., Terriza, J. A. H., Torcello-Gómez, A., Cabrerizo-Vílchez, M. A. In vitro digestion of interfacial protein structures. Soft Matter. 9, 1043-1053 (2013).
  10. Maldonado-Valderrama, J. Probing in vitro digestion at oil-water interfaces. Current Opinion in Colloid and Interface Science. 39, 51-60 (2019).
  11. Brodkorb, A., et al. INFOGEST static in vitro simulation of gastrointestinal food digestion. Nature Protocols. 14 (4), 991-1014 (2019).
  12. del Castillo-Santaella, T., Maldonado-Valderrama, J., Molina-Bolivar, J. A., Galisteo-Gonzalez, F. Effect of cross-linker glutaraldehyde on gastric digestion of emulsified albumin. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 145, 899-905 (2016).
  13. Macierzanka, A., Torcello-Gómez, A., Jungnickel, C., Maldonado-Valderrama, J. Bile salts in digestion and transport of lipids. Advances in Colloid and Interface Science. 274, 102045 (2019).
  14. Maldonado-Valderrama, J., Torcello-Gómez, A., del Castillo-Santaella, T., Holgado-Terriza, J. A., Cabrerizo-Vílchez, M. A. Subphase exchange experiments with the pendant drop technique. Advances in Colloid and Interface Science. 222, 488-501 (2015).
  15. Bellesi, F. A., Ruiz-Henestrosa, V. M. P., Maldonado-Valderrama, J., Del Castillo Santaella, T., Pilosof, A. M. R. Comparative interfacial in vitro digestion of protein and polysaccharide oil/water films. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 161, 547-554 (2018).
  16. Del Castillo-Santaella, T., Sanmartín, E., Cabrerizo-Vílchez, M. A., Arboleya, J. C., Maldonado-Valderrama, J. Improved digestibility of β-lactoglobulin by pulsed light processing: A dilatational and shear study. Soft Matter. 10 (48), 9702-9714 (2014).
  17. Infantes-Garcia, M. R., et al. In vitro gastric lipid digestion of emulsions with mixed emulsifiers: Correlation between lipolysis kinetics and interfacial characteristics. Food Hydrocolloids. 128, 107576 (2022).
  18. del Castillo-Santaella, T., Cebrián, R., Maqueda, M., Gálvez-Ruiz, M. J., Maldonado-Valderrama, J. Assessing in vitro digestibility of food biopreservative AS-48. Food Chemistry. 246, 249-257 (2018).
  19. Torcello-Gómez, A., Maldonado-Valderrama, J., Jódar-Reyes, A. B., Cabrerizo-Vílchez, M. A., Martín-Rodríguez, A. Pluronic-covered oil-water interfaces under simulated duodenal conditions. Food Hydrocolloids. 34, 54-61 (2014).
  20. Minekus, M., et al. A standardised static in vitro digestion method suitable for food – an international consensus. Food & Function. 5 (6), 1113-1124 (2014).
  21. Wege, H. A., Holgado-Terriza, J. A., Cabrerizo-Vílchez, M. A. Development of a constant surface pressure penetration langmuir balance based on axisymmetric drop shape analysis. Journal of Colloid and Interface Science. 249 (2), 263-273 (2002).
  22. del Castillo-Santaella, T., et al. Hyaluronic acid and human/bovine serum albumin shelled nanocapsules: Interaction with mucins and in vitro digestibility of interfacial films. Food Chemistry. 383, 132330 (2022).
  23. Aguilera-Garrido, A., et al. Applications of serum albumins in delivery systems: Differences in interfacial behaviour and interacting abilities with polysaccharides. Advances in Colloid and Interface Science. 290 (5), 102365 (2021).

Play Video

Cite This Article
Maldonado-Valderrama, J., del Castillo Santaella, T., Holgado-Terriza, J. A., Cabrerizo-Vílchez, M. Á. In vitro Digestion of Emulsions in a Single Droplet via Multi Subphase Exchange of Simulated Gastrointestinal Fluids. J. Vis. Exp. (189), e64158, doi:10.3791/64158 (2022).

View Video