Summary

Erstellung eines reproduzierbaren Modells der mütterlichen Immunaktivierung in der Mitte der Schwangerschaft unter Verwendung von Poly(I:C) zur Untersuchung der Suszeptibilität und Resilienz bei Nachkommen

Published: August 17, 2022
doi:

Summary

Eine Infektion der Mutter ist ein Risikofaktor für neurologische Entwicklungsstörungen. Mausmodelle der mütterlichen Immunaktivierung (MIA) können die Auswirkungen der Infektion auf die Entwicklung und Funktion des Gehirns aufklären. Hier werden allgemeine Richtlinien und ein Verfahren bereitgestellt, um zuverlässig belastbare und anfällige Nachkommen zu erzeugen, die MIA ausgesetzt sind.

Abstract

Die mütterliche Immunaktivierung (MIA) während der Schwangerschaft ist durchweg mit einem erhöhten Risiko für neurologische Entwicklungsstörungen und neuropsychiatrische Störungen bei den Nachkommen verbunden. Tiermodelle der MIA werden verwendet, um die Kausalität zu testen, Mechanismen zu untersuchen und Diagnosen und Behandlungen für diese Erkrankungen zu entwickeln. Trotz ihrer weit verbreiteten Verwendung leiden viele MIA-Modelle unter mangelnder Reproduzierbarkeit und ignorieren fast alle zwei wichtige Aspekte dieses Risikofaktors: (i) viele Nachkommen sind resistent gegen MIA, und (ii) anfällige Nachkommen können unterschiedliche Kombinationen von Phänotypen aufweisen. Um die Reproduzierbarkeit zu erhöhen und sowohl die Anfälligkeit als auch die Resilienz gegenüber MIA zu modellieren, wird die Baseline-Immunreaktivität (BIR) weiblicher Mäuse vor der Schwangerschaft verwendet, um vorherzusagen, welche Schwangerschaften entweder zu resistenten Nachkommen oder Nachkommen mit definierten Verhaltens- und molekularen Anomalien nach Exposition gegenüber MIA führen werden. Hier wird eine detaillierte Methode zur Induktion von MIA durch intraperitoneale (i.p.) Injektion der doppelsträngigen RNA (dsRNA) viralen Mimik Poly(I:C) nach 12,5 Tagen der Schwangerschaft bereitgestellt. Diese Methode induziert eine akute Entzündungsreaktion im Muttertier, die bei Mäusen zu Störungen der Gehirnentwicklung führt, die sich auf ähnlich betroffene Domänen bei menschlichen psychiatrischen und neurologischen Entwicklungsstörungen (NDDs) abbilden.

Introduction

Epidemiologische Beweise verbinden eine Infektion der Mutter mit einem erhöhten Risiko für psychiatrische und NDDs, einschließlich Schizophrenie (SZ) und Autismus-Spektrum-Störung (ASD)1,2,3,4,5,6,7. Das MIA-Mausmodell wurde entwickelt, um die Kausalität und die mechanistische Rolle von MIA in der Ätiologie dieser Erkrankungen zu testen, molekulare Biomarker zu identifizieren und sowohl diagnostische als auch therapeutische Werkzeuge zu entwickeln 4,6. Trotz der Nützlichkeit dieses Modells und seiner zunehmenden Popularität gibt es eine beträchtliche Variabilität der MIA-Induktionsprotokolle innerhalb des Feldes, was es schwierig macht, die Ergebnisse zwischen Studien zu vergleichen und die Ergebnisse zu replizieren 8,9. Darüber hinaus untersuchen die meisten Iterationen des Modells zwei wichtige translationale Aspekte von MIA nicht: (i) viele Nachkommen sind resistent gegen MIA, und (ii) anfällige Nachkommen können unterschiedliche Kombinationen von Phänotypen aufweisen8.

Um ein reproduzierbares MIA-Modell zu erstellen, sollten die Forscher mindestens ein quantitatives Maß für das Ausmaß der in Staudämmen induzierten MIA angeben. Um MIA während der Schwangerschaft zu induzieren, führt unser Labor intraperitoneale (i.p.) Injektionen der doppelsträngigen RNA durch, die polyinositisch nachahmt: Polycytidilsäure [Poly(I:C)]. Poly(I:C) induziert eine Immunkaskade ähnlich wie Influenzaviren, wie sie vom Toll-like-Rezeptor 3 (TLR3)10 erkannt wird. Infolgedessen aktiviert Poly(I:C) die Akute-Phase-Reaktion, die zu einer schnellen Erhöhung der proinflammatorischen Zytokine 8,11,12 führt. Frühere Studien haben gezeigt, dass die Erhöhung von proinflammatorischen Zytokinen, einschließlich Interleukin-6 (IL-6), notwendig ist, um Verhaltensanomalien und Neuropathologie bei Nachkommen als Folge von MIA11,12,13 hervorzurufen. Daher ist der IL-6-Spiegel im mütterlichen Serum, der während seines Höhepunkts 2,5 h nach der Poly(I:C)-Injektion gesammelt wurde, ein überzeugendes quantitatives Maß für MIA, das verwendet werden kann, um die Ergebnisse zwischen Laboratorien innerhalb des Feldes zu vergleichen.

Um ein MIA-Modell zu generieren, das die translational wesentlichen Elemente der Resilienz und Suszeptibilität mit einem einzigen Induktionsprotokoll 8,14 adressiert, können Forscher typische Induktionsansätze mit der Charakterisierung der Basis-Immunreaktivität (BIR) der Mutter vor der Schwangerschaft kombinieren 8. Kürzlich wurde entdeckt, dass jungfräuliche weibliche C57BL/6-Mäuse eine breite Palette von IL-6-Reaktionen auf eine niedrig dosierte Exposition gegenüber Poly(I:C) vor der Schwangerschaft zeigen8. Es ist nur eine Untergruppe dieser Weibchen, die anfällige Nachkommen hervorbringt, und nur in bestimmten Größenordnungen der Immunaktivierung, wie sie durch die Kombination von BIR und Poly(I:C)-Dosis8 vorgegeben wird. MIA induziert Phänotypen in einem umgekehrten U-Muster; Nachkommen zeigen die größten Verhaltens- und molekularen Aberrationen, wenn Muttertiere mäßig immunreaktiv sind und das Ausmaß der mütterlichen Entzündung einen kritischen Bereich erreicht, aber nicht überschreitet8. Hier wird eine detaillierte Methode vorgestellt, wie sowohl belastbare als auch anfällige Nachkommen mit divergierenden Verhaltensphänotypen als Folge der Injektion von Poly(I:C) in der Mitte der Schwangerschaft zuverlässig erzeugt werden können.

Protocol

Alle Protokolle werden mit Genehmigung des Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der University of California-Davis durchgeführt. 1. Tierische Vorbereitung Halten Sie beim Erwerb von Tieren die folgenden Parameter konsistent, um eine maximale Reproduzierbarkeit zu gewährleisten.Anbieter und Standort des Anbieters: Wie bereits berichtet, zeigen Wildtyp-C57BL/6J-Mäuse je nach Anbieter unterschiedliche Reaktionen auf die gleiche Dosis von Poly(I…

Representative Results

Nicht alle Tiere, die 30 mg/kg Poly(I:C) bei E12.5 ausgesetzt waren, zeugen Nachkommen mit konsistenten Verhaltensauffälligkeiten 8,31. Obwohl sowohl 30 mg/kg als auch 40 mg/kg Poly(I:C) zuverlässig Krankheitsverhalten bei Muttertieren hervorrufen, einschließlich verminderter Aktivität, unterkühlter Reaktionen und Gewichtsverlust, und auch signifikante Erhöhungen von IL-6 verursachen, wird nur eine Untergruppe von Würfen, die MIA ausgesetzt sind, Verhalten…

Discussion

Eine Infektion der Mutter verändert den Verlauf der Gehirnentwicklung beim Menschen und sowohl bei Nagetieren als auch bei nichtmenschlichen Primaten 4,5,7. Hier wird ein Verfahren zur Induktion von MIA in Mäusen zu einem Zeitpunkt in der Mitte der Schwangerschaft unter Verwendung von Poly(I:C) skizziert. Diese Methode beinhaltet die Bewertung von BIR vor der Schwangerschaft, was die Reproduzierbarkeit erhöht und die Möglich…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken Dr. Myka Estes für ihre Beharrlichkeit bei der Behandlung der Variabilität im MIA-Modell der Maus und allen Mitwirkenden in Estes et al.8 für ihre Arbeit, die zur Entwicklung des hier beschriebenen Methodenprotokolls geführt hat. Die hier berichtete Forschung wurde von NIMH 2P50 MH106438-06 (A.K.M.) und NIMH T32MH112507 (K.P.) unterstützt.

Materials

0.9% NaCl physiological endotoxin free saline Sigma-Aldrich 7647-14-5 Control and vehicle for Poly(I:C)
35mm petri dish Thomas Scientific 1219Z45 Used to hold oil during tail bleed
7.5% TGX gels Bio-rad 4561084 Optional
Ancare Nestlets Fisher Scientific NC9365966 Optional
anti-β-tubulin Millipore MAB3408 Optional
Bio-Plex Pro Mouse Cytokine Standards Group I Bio-rad 171I50001
Bio-Plex Pro Reagent Kit with Flat Plate Bio-rad 171304070M
Bovine Serum Albumin ThermoFisher 23209 Optional
Centrifuge Eppendorf 5810R Optional
Covidien Monoject 1/2 mL Insulin Syringe with 28G x 1/2 in. Needle Spectrum 552-58457-083
Dithiothreitol Sigma-Aldrich D9779-10G Optional
Environmental enrichment Bio-serv K3327 and K3322 Optional
Ethovision Noldus Ethovision Optional
Fluorsecent-tagged seondary ntibodies Li-cor 925-32213 and 925-68072 Optional
Food-grade edible oil (like olive, canola or grapeseed) Various vendors Use to lubricate tail during tail bleeds
HBSS ThermoFisher 14060040 Optional
High molecular weight polyinositic:polycytidilic acid Invivogen #tlrl-pic-5 Used to establish females' BIR
Humane Mouse Restrainer AIMS 1000 Used to restrain mouse during tail bleeds
Image Studio Software Licor 5.2 Optional
Laemmli buffer Bio-rad 1610737EDU Optional
Luminex200 ThermoFisher APX10031
Microvette CB300 300μl Serum capillary tube Sarstedt 16.440.100
Mixed molecular weight polyinositic:polycytidilic acid Sigma-Aldrich #P0913 Gestational induction of MIA
monoclonal anti-MEF2A AbCam ab76063 Optional
monoclonal anti-STAT3 Cell signaling 12640S Optional
Observer Noldus Observer Optional
Odyssey blocking buffer (TBS) Li-cor 927-50003 Optional
Odyssey CLx imaging system Li-cor 9140 Optional
Omnipure PBS Millipore 65054L Optional
Pierce BCA Protein Assay Kit ThermoFisher 23227 Optional
polyclonal anti_TH Pel-Freez P4101-150 Optional
PVDF membrane Bio-rad 162-0177 Optional
Qsonica Sonicator Q500 Fisher Scientific 15-338-282 Optional
Quick blood stopper Petco 17140
Seal-Rite 1.5 ml microcentrifuge tube, natural non-sterile USA Scientific 1615-5500
Soldering stand Amazon B08Y12QC73 Used to hold capillary tube during tail bleeds
Sunflower seeds Bio-serv S5137-1 Use to increase breeding efficiency
The Bio-Plex Pro Mouse IL-6 set, Bio-rad 171G5007M
Tris base Fisher Scientific BP152-1 Optional
Tween 20 Bio-rad 23209 Optional

References

  1. Adams, W., Kendell, R. E., Hare, E. H., Munk-Jørgensen, P. Epidemiological evidence that maternal influenza contributes to the aetiology of schizophrenia. An analysis of Scottish, English, and Danish data. The British Journal of Psychiatry: The Journal of Mental Science. 163 (4), 522-534 (1993).
  2. Brown, A. S., et al. Serologic evidence of prenatal influenza in the etiology of schizophrenia. Archives of General Psychiatry. 61 (8), 774-780 (2004).
  3. Brown, A. S., Derkits, E. J. Prenatal infection and schizophrenia: a review of epidemiologic and translational studies. The American Journal of Psychiatry. 167 (3), 261-280 (2010).
  4. Patterson, P. H. Immune involvement in schizophrenia and autism: etiology, pathology and animal models. Behavioural Brain Research. 204 (2), 313-321 (2009).
  5. Patterson, P. H. Maternal infection and immune involvement in autism. Trends in Molecular Medicine. 17 (7), 389-394 (2011).
  6. Estes, M. L., McAllister, A. K. Immune mediators in the brain and peripheral tissues in autism spectrum disorder. Nature Reviews. Neuroscience. 16 (8), 469-486 (2015).
  7. Estes, M. L., McAllister, A. K. Maternal immune activation: Implications for neuropsychiatric disorders. Science. 353 (6301), 772-777 (2016).
  8. Estes, M. L., et al. Baseline immunoreactivity before pregnancy and poly(I:C) dose combine to dictate susceptibility and resilience of offspring to maternal immune activation. Brain, Behavior and Immunity. 88, 619-630 (2020).
  9. Kentner, A. C., et al. Maternal immune activation: reporting guidelines to improve the rigor, reproducibility, and transparency of the model. Neuropsychopharmacology. 44 (2), 245-258 (2019).
  10. Zhou, Y., et al. TLR3 activation efficiency by high or low molecular mass poly I:C. Innate Immunity. 19 (2), 184-192 (2013).
  11. Hsiao, E. Y., Patterson, P. H. Activation of the maternal immune system induces endocrine changes in the placenta via IL-6. Brain, Behavior and Immunity. 25 (4), 604-615 (2011).
  12. Smith, S. E., Li, J., Garbett, K., Mirnics, K., Patterson, P. H. Maternal immune activation alters fetal brain development through interleukin-6. The Journal of Neuroscience. 27 (40), 10695-10702 (2007).
  13. Choi, G. B., et al. The maternal interleukin-17a pathway in mice promotes autism-like phenotypes in offspring. Science. 351 (6276), 933-939 (2016).
  14. Meyer, U. Neurodevelopmental resilience and susceptibility to maternal immune activation. Trends in Neurosciences. 42 (11), 793-806 (2019).
  15. Laroche, J., Gasbarro, L., Herman, J. P., Blaustein, J. D. Reduced behavioral response to gonadal hormones in mice shipped during the peripubertal/adolescent period. Endocrinology. 150 (5), 2351-2358 (2009).
  16. Aguila, H. N., Pakes, S. P., Lai, W. C., Lu, Y. S. The effect of transportation stress on splenic natural killer cell activity in C57BL/6J mice. Laboratory Animal Science. 38 (2), 148-151 (1988).
  17. Landi, M. S., Kreider, J. W., Lang, C. M., Bullock, L. P. Effects of shipping on the immune function in mice. American Journal of Veterinary Research. 43 (9), 1654-1657 (1982).
  18. Menees, K. B., et al. Sex- and age-dependent alterations of splenic immune cell profile and NK cell phenotypes and function in C57BL/6J mice. Immunity & Ageing. 18 (1), 3 (2021).
  19. Shaw, A. C., Goldstein, D. R., Montgomery, R. R. Age-dependent dysregulation of innate immunity. Nature Reviews Immunology. 13 (12), 875-887 (2013).
  20. Starr, M. E., Saito, M., Evers, B. M., Saito, H. Age-associated increase in Cytokine production during systemic inflammation-II: the role of IL-1beta in age-dependent IL-6 upregulation in adipose tissue. The Journals of Gerontology. Series A, Biological Sciences and Medical Sciences. 70 (12), 1508-1515 (2015).
  21. Bruce, M., et al. Acute peripheral immune activation alters cytokine expression and glial activation in the early postnatal rat brain. Journal of Neuroinflammation. 16 (1), 200 (2019).
  22. Mader, S. L., Libal, N. L., Pritchett-Corning, K., Yang, R., Murphy, S. J. Refining timed pregnancies in two strains of genetically engineered mice. Lab Animal. 38 (9), 305-310 (2009).
  23. Heyne, G. W., et al. A simple and reliable method for early pregnancy detection in inbred mice. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 54 (4), 368-371 (2015).
  24. Hutchinson, E., Avery, A., VandeWoude, S. Environmental enrichment for laboratory rodents. ILAR Journal. 46 (2), 148-161 (2005).
  25. Bayne, K. Environmental enrichment and mouse models: Current perspectives. Animal Models and Experimental Medicine. 1 (2), 82-90 (2018).
  26. Toth, L. A., Kregel, K., Leon, L., Musch, T. I. Environmental enrichment of laboratory rodents: the answer depends on the question. Comparative Medicine. 61 (4), 314-321 (2011).
  27. Sparling, J. E., Barbeau, K., Boileau, K., Konkle, A. T. M. Environmental enrichment and its influence on rodent offspring and maternal behaviours, a scoping style review of indices of depression and anxiety. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 197, 172997 (2020).
  28. Xiao, R., Ali, S., Caligiuri, M. A., Cao, L. Enhancing effects of environmental enrichment on the functions of natural killer cells in mice. Frontiers in Immunology. 12, 695859 (2021).
  29. Girbovan, C., Plamondon, H. Environmental enrichment in female rodents: considerations in the effects on behavior and biochemical markers. Behavioural Brain Research. 253, 178-190 (2013).
  30. Mueller, F. S., Polesel, M., Richetto, J., Meyer, U., Weber-Stadlbauer, U. Mouse models of maternal immune activation: Mind your caging system. Brain, Behavior, and Immunity. 73, 643-660 (2018).
  31. Mueller, F. S., et al. neuroanatomical, and molecular correlates of resilience and susceptibility to maternal immune activation. Molecular Psychiatry. 26 (2), 396-410 (2021).
  32. Nyffeler, M., Meyer, U., Yee, B. K., Feldon, J., Knuesel, I. Maternal immune activation during pregnancy increases limbic GABAA receptor immunoreactivity in the adult offspring: implications for schizophrenia. Neuroscience. 143 (1), 51-62 (2006).
  33. Babri, S., Doosti, M. H., Salari, A. A. Strain-dependent effects of prenatal maternal immune activation on anxiety- and depression-like behaviors in offspring. Brain, Behavior, and Immunity. 37, 164-176 (2014).
  34. Vigli, D., et al. Maternal immune activation in mice only partially recapitulates the autism spectrum disorders symptomatology. Neuroscience. 445, 109-119 (2020).
  35. Malkova, N. V., Yu, C. Z., Hsiao, E. Y., Moore, M. J., Patterson, P. H. Maternal immune activation yields offspring displaying mouse versions of the three core symptoms of autism. Brain, Behavior, and Immunity. 26 (4), 607-616 (2012).
  36. Shin Yim, Y., et al. Reversing behavioural abnormalities in mice exposed to maternal inflammation. Nature. 549 (7673), 482-487 (2017).
  37. Ito, H. T., Smith, S. E., Hsiao, E., Patterson, P. H. Maternal immune activation alters nonspatial information processing in the hippocampus of the adult offspring. Brain, Behavior, and Immunity. 24 (6), 930-941 (2010).
  38. Zuckerman, L., Weiner, I. Maternal immune activation leads to behavioral and pharmacological changes in the adult offspring. Journal of Psychiatric Research. 39 (3), 311-323 (2005).
  39. Mueller, F. S., Polesel, M., Richetto, J., Meyer, U., Weber-Stadlbauer, U. Mouse models of maternal immune activation: Mind your caging system. Brain, Behavior, and Immunity. 73, 643-660 (2018).
  40. Careaga, M., Murai, T., Bauman, M. D. Maternal immune activation and autism spectrum disorder: from rodents to nonhuman and human primates. Biological Psychiatry. 81 (5), 391-401 (2017).
  41. Lazic, S. E., Essioux, L. Improving basic and translational science by accounting for litter-to-litter variation in animal models. BMC Neuroscience. 14, 37 (2013).
  42. Spencer, S. J., Meyer, U. Perinatal programming by inflammation. Brain, Behavior, and Immunity. 63, 1-7 (2017).
  43. Mouihate, A., Kalakh, S. Maternal Interleukin-6 hampers hippocampal neurogenesis in adult rat offspring in a sex-dependent manner. Developmental Neuroscience. 43 (2), 106-115 (2021).
  44. Zhang, Z., van Praag, H. Maternal immune activation differentially impacts mature and adult-born hippocampal neurons in male mice. Brain, Behavior, and Immunity. 45, 60-70 (2015).

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Cite This Article
Prendergast, K., McAllister, A. K. Generating a Reproducible Model of Mid-Gestational Maternal Immune Activation using Poly(I:C) to Study Susceptibility and Resilience in Offspring. J. Vis. Exp. (186), e64095, doi:10.3791/64095 (2022).

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