Summary

Uso della bisezione per ridurre il DNA mitocondriale nell'ovocita bovino

Published: July 06, 2022
doi:

Summary

Qui, presentiamo un protocollo per ridurre significativamente il numero di copie del DNA mitocondriale in un ovocita bovino (P < 0,0001). Questo metodo utilizza la centrifugazione e la bisezione per ridurre sostanzialmente i mitocondri degli ovociti e può consentire una maggiore possibilità di sviluppo negli embrioni di trasferimento nucleare delle cellule somatiche interspecie ricostruiti.

Abstract

Il trasferimento nucleare di cellule somatiche interspecie (iSCNT) può essere utilizzato per salvare specie in via di estinzione, ma esistono due distinte popolazioni di DNA mitocondriale (mtDNA) all’interno dell’embrione ricostruito: una all’interno dell’ooplasma ricevente e una all’interno della cellula somatica donatrice. Questa eteroplasmia mitocondriale può portare a problemi di sviluppo nell’embrione e nel feto. I protocolli di clonazione fatti a mano includono la bisezione degli ovociti, che può essere utilizzata per ridurre il numero di copie del mtDNA, riducendo il grado di eteroplasmia mitocondriale in un embrione ricostruito. La centrifugazione di ovociti bovini maturi denudati ha prodotto una frazione densa di mitocondri visibile a un polo dell’ovocita. Le zonae pellucidae degli ovociti sono state rimosse mediante esposizione a una soluzione di pronasi. La bisezione è stata eseguita utilizzando una microlama per rimuovere la frazione mitocondriale visibile. qPCR è stato utilizzato per quantificare il mtDNA presente in campioni di DNA estratti da ovociti interi e ooplasti tagliati in due, fornendo un confronto dei numeri di copie del mtDNA prima e dopo la bisezione. I numeri di copia sono stati calcolati utilizzando i valori di soglia del ciclo, la formula della linea di regressione di una curva standard e un rapporto che includeva le rispettive dimensioni dei prodotti MTDNA PCR e dei prodotti PCR genomici. Un ovocita bovino aveva un numero medio di copie di mtDNA (deviazione standard ±) di 137.904 ± 94.768 (n = 38). Un ooplasto impoverito di mitocondri aveva un numero medio di copie di mtDNA di 8.442 ± 13.806 (n = 33). Le copie medie di mtDNA presenti in un ooplasto ricco di mitocondri erano 79.390 ± 58.526 copie di mtDNA (n = 28). Le differenze tra queste medie calcolate indicano che la centrifugazione e la successiva bisezione possono ridurre significativamente il numero di copie di mtDNA presenti nell’ooplasto impoverito di mitocondri rispetto all’ovocita originale (P < 0,0001, determinato da ANOVA unidirezionale). La riduzione del mtDNA dovrebbe diminuire il grado di eteroplasmia mitocondriale in un embrione ricostruito, favorendo eventualmente lo sviluppo embrionale e fetale standard. L'integrazione con estratto mitocondriale dalla cellula somatica donatrice può anche essere essenziale per ottenere uno sviluppo embrionale di successo.

Introduction

Il trasferimento nucleare di cellule somatiche (SCNT) include la fusione di un ovocita enucleato da un animale e una cellula somatica da un animale della stessa specie. Nella maggior parte dei casi, l’ovocita e la cellula somatica provengono dalla stessa specie e i tassi di natalità vivi sono inferiori al 6%1. Alcune ricerche prevedono l’uso di SCNT interspecie (iSCNT), che include la fusione di una cellula somatica e di un ovocita che provengono da due specie diverse. In questi studi, i tassi di natalità vivi sono ancora più bassi rispetto a SCNT, in genere inferiori all’1%1. Tuttavia, iSCNT ha la capacità di essere utilizzato come metodo per salvare le specie in via di estinzione, poiché le cellule somatiche di questi animali sono più accessibili delle loro cellule germinali1. Gli ovociti riceventi utilizzati in iSCNT sono spesso specie domestiche o di laboratorio comuni, come mucche, maiali e topi. Alcuni tentativi fatti finora hanno prodotto con successo giovani vivi, sebbene la prole prodotta sia stata costituita da animali intragenerici (le specie di ovociti riceventi e le specie di cellule donatrici erano membri dello stesso genere)2,3,4. I modelli intergenerici (che utilizzano un ovocita e una cellula somatica di animali di generi diversi) non hanno ancora prodotto animali vivi e la maggior parte degli embrioni ricostruiti arresta allo stadio di 8-16 cellule dello sviluppo in vitro 5,6,7,8. Una possibile spiegazione di questo arresto dello sviluppo embrionale è l’insorgenza di eteroplasmia mitocondriale negli embrioni, la presenza di più di un tipo di DNA mitocondriale (mtDNA) in una singola cellula. L’eteroplasmia può portare a problemi come l’inefficienza dello sviluppo o il fallimento nell’embrione o nell’animale vivo1. La patogenesi può anche verificarsi più tardi nel corso della vita dell’animale9. Sebbene questo problema sia presente anche nella prole SCNT, la componente interspecifica all’interno degli embrioni iSCNT aggrava il problema.

Quando il mtDNA embrionale proviene da due specie diverse, i mitocondri ovocitari riceventi, che rappresentano la maggioranza, non funzionano in modo efficiente o efficace con il nucleo1,10 della cellula donatrice. Maggiori lacune tassonomiche tra le due specie utilizzate in iSCNT probabilmente intensificano questo problema; la prole viva intragenerica prodotta (bos gaurus e bos indicus che utilizza ovociti Bos taurus), così come la prole prodotta tramite SCNT tradizionale (ad esempio la prole Ovis aries che utilizza ovociti Ovis aries) si sono dimostrate chimere (mtDNA di due individui era presente in questi animali 11,12,13). Tuttavia, si sono sviluppati molto più lontano degli embrioni SCNT intergenerici14,15. Lo scambio di informazioni tra i mitocondri ovocitari e il nucleo della cellula donatrice potrebbe avere più successo nell’embrione intragenerico che nell’embrione intergenerico16.

La quantità di mtDNA in un ovocita bovino maturo è circa 100 volte maggiore della quantità trovata in una cellula somatica12. Ridurre questo rapporto potrebbe incoraggiare i mitocondri delle cellule somatiche a proliferare all’interno dell’embrione ricostruito, consentendo a una maggiore popolazione di mitocondri produttivi di essere presente16. Questo potrebbe a sua volta fornire più energia per soddisfare i requisiti dell’embrione in via di sviluppo15. I precedenti tentativi fatti per ridurre il numero di copie del mtDNA dell’ovocita o dell’embrione includono l’applicazione chimica, la micromanipolazione e l’integrazione dell’ovocita o dell’embrione con mitocondri aggiuntivi della specie cellulare donatrice 16,17,18,19,20. Tuttavia, l’applicazione chimica (come la 2′,3′-dideossicitidina) non è ideale per lo sviluppo embrionale e ha ridotto il numero di copie di mtDNA degli ovociti di circa la metà18. La precedente riduzione del mtDNA ovocitario mediante micromanipolazione ha rimosso solo una media del 64% del mtDNA17 dell’ovocita. Sebbene l’integrazione di mitocondri di cellule donatrici possa essere un’opzione praticabile, il suo uso non ha ancora prodotto un animale intergenerico vivo all’interno degli studi iSCNT21.

L’uso della bisezione per ridurre il numero di copie di mtDNA degli ovociti non è stato ancora utilizzato negli studi pubblicati. La bisecting degli ovociti con l’intenzione di fondere gli ooplasti con una cellula somatica è la premessa della clonazione fatta a mano (HMC), che in genere utilizza la bisezione come metodo per rimuovere il corpo polare e la piastra di metafase dall’ovocita della metafase II (MII). HMC ha prodotto con successo prole in diverse specie, tra cui capre, bovini, suini, pecore e cavalli 22,23,24,25,26, ma in genere non include una fase di centrifugazione prima della bisezione. L’integrazione della centrifugazione ad alta velocità dell’ovocita consente l’isolamento dei mitocondri (e quindi del mtDNA) in un polo dell’ovocita, che può quindi essere diviso in due utilizzando una microlama per rimuovere quelle frazioni densamente denshe di mitocondri. Due ooplasti impoveriti di mitocondri possono quindi essere fusi con una cellula somatica, come nel caso dell’HMC, per formare un embrione ricostruito che contiene molto meno mtDNA delle specie ovocitarie.

La domanda a cui tentiamo di rispondere con questo protocollo è come ridurre il mtDNA nell’ovocita bovino al fine di produrre un embrione ricostruito vitale che contenga meno mtDNA eteroplasmatico. In questo protocollo, gli ovociti sono stati centrifugati e tagliati in due. I numeri di copie di ooplast e mtDNA di ovociti intatti sono stati calcolati per determinare l’efficacia di questa tecnica nel ridurre il numero di copie di mtDNA dell’ovocita bovino.

Protocol

Il seguente protocollo segue le linee guida per la cura e l’etica degli animali fornite dalla Utah State University. 1. Preparazione dei media Prima della manipolazione degli ovociti, preparare le seguenti soluzioni, come descritto nella Tabella 1: 400 μL di soluzione di ialuronidasi, 500 μL di mezzi T2, 1.020 μL di media T20 e 800 μL di mezzi T10. Dividere il supporto T10 in due pozzetti di una piastra a quattro pozzetti, 400 μL per p…

Representative Results

I risultati quantitativi della PCR (qPCR) vengono utilizzati per determinare le quantità relative di mtDNA presenti in ciascun ooplasto. La reazione descritta è progettata per amplificare la regione 12S del mtDNA bovino. Se la bisezione ha avuto successo, i campioni di ovociti interi e ooplasti densi di mitocondri avranno valori di Ct simili. I campioni di ooplasti ridotti con mitocondri avranno valori di Ct più elevati rispetto ai campioni degli altri due gruppi. Di s…

Discussion

I metodi precedentemente utilizzati per ridurre il numero di copie di mtDNA negli ovociti hanno i loro rispettivi svantaggi. La rimozione basata sulla micromanipolazione dei mitocondri dagli ovociti riduce il numero di copie del mtDNA in media del 64%27. Un metodo unico, precedentemente utilizzato per l’enucleazione, prevede l’uso di pipette Pasteur di piccolo diametro e la scissione di un ovocita privo di zona pellucida al confine tra una microgoccia di media e l’olio minerale circostante. Insiem…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori desiderano ringraziare i loro colleghi della Utah State University, i ricercatori di Scienze Riproduttive dello Zoo di San Diego e la Dott.ssa Rebecca Krisher di Genus PLC.

Materials

1.5 mL centrifuge tubes Fisher Scientific 5408129
60 mm dish Sigma-Aldrich D8054
Centrifuge Eppendorf 5424
Cytochalasin B Sigma-Aldrich C6762
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich F2442
M199 Media Sigma-Aldrich M4530
Mineral Oil Sigma-Aldrich M8410
Mini Centrifuge SCILOGEX D1008
mtDNA Primer: Forward (12S) GGGCTACATTCTCTACACCAAG
mtDNA Primer: Reverse (12S) GTGCTTCATGGCCTAATTCAAC
NanoDrop Spectrophotometer Thermo Scientific ND2000
Opthalmic Scalpel with Aluminum Handle PFM Medical 207300633 Microblade for bisection
Protease/pronase Sigma-Aldrich P5147
QIAamp DNA Micro Kit Qiagen 56304
QuantStudio™ 3 – 96-Well 0.2-mL ThermoFisher A28567
Search plate Fisher Scientific FB0875711A
SYBR Green qPCR Master Mix ThermoFisher K0221 qPCR master mix
Synthetic Oviductal Fluid with HEPES (HSOF)
ThermoPlate Tokai Hit TPi-SMZSSX Heating stage

References

  1. Loi, P., Modlinski, J. A., Ptak, G. Interspecies somatic cell nuclear transfer: A salvage tool seeking first aid. Theriogenology. 76 (2), 217-228 (2011).
  2. Wani, N. A., Vettical, B. S., Hong, S. B. First cloned Bactrian camel (camelus bactrianus) calf produced by interspecies somatic cell nuclear transfer: A step towards preserving the critically endangered wild Bactrian camels. PLOS ONE. 12 (5), 0177800 (2017).
  3. Oh, H. J., et al. Cloning endangered gray wolves (canis lupus) from somatic cells collected postmortem. Theriogenology. 70 (4), 638-647 (2008).
  4. Srirattana, K., et al. Full-term development of gaur-bovine interspecies somatic cell nuclear transfer embryos: Effect of trichostatin a treatment. Cellular Reprogramming. 14 (3), 248-257 (2012).
  5. Kwon, D. K., et al. Blastocysts derived from adult fibroblasts of a rhesus monkey (macaca mulatta) using interspecies somatic cell nuclear transfer. Zygote. 19 (3), 199-204 (2011).
  6. Lee, E., et al. Production of cloned sei whale (Balaenoptera borealis) embryos by interspecies somatic cell nuclear transfer using enucleated pig oocytes. Journal of Veterinary Science. 10 (4), 285 (2009).
  7. Lorthongpanich, C., Laowtammathron, C., Chan, A. W., Kedutat-Cairns, M., Parnpai, R. Development of interspecies cloned monkey embryos reconstructed with bovine enucleated oocytes. Journal of Reproduction and Development. 54 (5), 306-313 (2008).
  8. Hong, S. G., et al. Production of transgenic canine embryos using interspecies somatic cell nuclear transfer. Zygote. 20 (1), 67-72 (2011).
  9. Stewart, J. B., Chinnery, P. F. The dynamics of mitochondrial DNA heteroplasmy: Implications for human health and disease. Nature Reviews Genetics. 16 (9), 530-542 (2015).
  10. Takeda, K. Mitochondrial DNA transmission and confounding mitochondrial influences in cloned cattle and pigs. Reproductive Medicine and Biology. 12 (2), 47-55 (2013).
  11. Lanza, R. P., et al. Cloning of an endangered species (Bos Gaurus) using interspecies nuclear transfer. Cloning. 2 (2), 79-90 (2000).
  12. Evans, M. J., et al. Mitochondrial DNA genotypes in nuclear transfer-derived cloned sheep. Nature Genetics. 23 (1), 90-93 (1999).
  13. Meirelles, F. V., et al. Complete replacement of the mitochondrial genotype in a Bos indicus calf reconstructed by nuclear transfer to a Bos taurus oocyte. Genetics. 158 (1), 351-356 (2001).
  14. Beyhan, Z., Iager, A. E., Cibelli, J. B. Interspecies nuclear transfer: Implications for embryonic stem cell biology. Cell Stem Cell. 1 (5), 502-512 (2007).
  15. Lagutina, I., Fulka, H., Lazzari, G., Galli, C. Interspecies somatic cell nuclear transfer: advancements and problems. Cellular Reprogramming. 15 (5), 374-384 (2013).
  16. Jiang, Y., et al. Interspecies somatic cell nuclear transfer is dependent on compatible mitochondrial DNA and reprogramming factors. PLoS ONE. 6 (4), 14805 (2011).
  17. Chiaratti, M. R., et al. Embryo mitochondrial DNA depletion is reversed during early embryogenesis in cattle. Biology of Reproduction. 82 (1), 76-85 (2010).
  18. Spikings, E. C., Alderson, J., John, J. C. Regulated mitochondrial DNA replication during oocyte maturation is essential for successful porcine embryonic development. Biology of Reproduction. 76 (2), 327-335 (2007).
  19. Cagnone, G. L., et al. Restoration of normal embryogenesis by mitochondrial supplementation in pig oocytes exhibiting mitochondrial DNA deficiency. Scientific Reports. 6 (1), 1-15 (2016).
  20. Spikings, E. C., Alderson, J., John, J. C. Regulated mitochondrial DNA replication during oocyte maturation is essential for successful porcine embryonic development. Biology of Reproduction. 76 (2), 327-335 (2007).
  21. Ferreira, A. F., et al. Does supplementation with mitochondria improve oocyte competence? A systematic review. Reproduction. 161 (3), 269-287 (2021).
  22. Bhat, M. H., et al. Live birth of a pashmina goat kid after transfer of handmade cloned embryos. Journal of Reproduction and Development. , (2019).
  23. Tecirlioglu, R. T., et al. Birth of a cloned calf derived from a vitrified hand-made cloned embryo. Reproduction, Fertility and Development. 15 (7), 361 (2003).
  24. Zhang, P., et al. Handmade cloned transgenic piglets expressing the nematode fat-1 gene. Cellular Reprogramming. 14 (3), 258-266 (2012).
  25. Zhang, P., et al. Handmade cloned transgenic sheep rich in omega-3 fatty acids. PLOS ONE. 8 (2), 55941 (2013).
  26. Lagutina, I., et al. Somatic cell nuclear transfer in horses: Effect of oocyte morphology, embryo reconstruction method and donor cell type. Reproduction. 130 (4), 559-567 (2005).
  27. Chiaratti, M. R., et al. Embryo mitochondrial DNA depletion is reversed during early embryogenesis in cattle. Biology of Reproduction. 82 (1), 76-85 (2010).
  28. Hosseini, S. M., et al. and efficient method of manual oocyte enucleation using a pulled pasteur pipette. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Animal. 49 (8), 569-575 (2013).
  29. Zampolla, T., Spikings, E., Rawson, D., Zhang, T. Cytoskeleton proteins F-actin and tubulin distribution and interaction with mitochondria in the granulosa cells surrounding stage III zebrafish (danio rerio) oocytes. Theriogenology. 76 (6), 1110-1119 (2011).
  30. International Union for Conservation of Nature. The IUCN Red List of Threatened Species. International Union for Conservation of Nature. , (2021).
  31. Berg, D. K., Li, C., Asher, G., Wells, D. N., Oback, B. Red deer cloned from antler stem cells and their differentiated progeny. Biology of Reproduction. 77 (3), 384-394 (2007).
  32. Gómez, M. C., et al. Birth of African wildcat cloned kittens born from domestic cats. Cloning and Stem Cells. 6 (3), 247-258 (2004).
  33. Lanza, R. P., et al. Cloning of an endangered species (Bos gaurus) using interspecies nuclear transfer. Cloning. 2 (2), 79-90 (2000).

Play Video

Cite This Article
Adams, L., Liu, Y., Durrant, B., Ruggeri, E., Young, C., Krisher, R., Polejaeva, I. Use of Bisection to Reduce Mitochondrial DNA in the Bovine Oocyte. J. Vis. Exp. (185), e64060, doi:10.3791/64060 (2022).

View Video