Die Visualisierung der Myelinisierung ist ein wichtiges Ziel für viele Forscher, die das Nervensystem untersuchen. CARS ist eine Technik, die mit der Immunfluoreszenz kompatibel ist und nativ Lipide in Geweben wie dem Gehirn abbilden kann, die spezialisierte Strukturen wie Myelin beleuchten.
Die kohärente Anti-Stokes-Raman-Spektroskopie (CARS) ist eine Technik, die klassischerweise von Chemikern und Physikern eingesetzt wird, um ein kohärentes Signal von Signaturschwingungen von Molekülen zu erzeugen. Diese Schwingungssignaturen sind jedoch auch charakteristisch für Moleküle in anatomischem Gewebe wie dem Gehirn, was sie zunehmend nützlich und anwendbar für neurowissenschaftliche Anwendungen macht. Zum Beispiel kann CARS Lipide messen, indem es chemische Bindungen innerhalb dieser Moleküle spezifisch anregt, was die Quantifizierung verschiedener Aspekte des Gewebes ermöglicht, wie Myelin, das an der Neurotransmission beteiligt ist. Darüber hinaus kann CARS im Vergleich zu anderen Techniken, die typischerweise zur Quantifizierung von Myelin verwendet werden, auch so eingerichtet werden, dass sie mit immunfluoreszierenden Techniken kompatibel sind, was eine Co-Markierung mit anderen Markern wie Natriumkanälen oder anderen Komponenten der synaptischen Übertragung ermöglicht. Myelinisierungsveränderungen sind ein inhärent wichtiger Mechanismus bei demyelinisierenden Krankheiten wie Multipler Sklerose oder anderen neurologischen Erkrankungen wie dem Fragile-X-Syndrom oder Autismus-Spektrum-Störungen ist ein aufstrebendes Forschungsgebiet. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass CARS auf innovative Weise eingesetzt werden kann, um drängende Fragen in den Neurowissenschaften zu beantworten und Beweise für die zugrunde liegenden Mechanismen im Zusammenhang mit vielen verschiedenen neurologischen Erkrankungen zu liefern.
Aktionspotentiale sind die grundlegende Informationseinheit im Gehirn, und die Ausbreitung des Aktionspotentials durch Axone bildet eine Säule der Informationsverarbeitung 1,2,3. Neuronen erhalten typischerweise afferente Eingaben von mehreren anderen Neuronen und integrieren diese Eingaben innerhalb eines bestimmten engen Zeitfensters 4,5. Daher haben die Mechanismen der potenziellen Ausbreitung von Axonen eine signifikante Aufmerksamkeit von Forschern erhalten.
Bei der Ausbreitung durch ein Axon wird ein Aktionspotential wiederholt entlang des Axons regeneriert, um eine zuverlässige Ausbreitungzu gewährleisten 6. In den meisten Neuronen von Kieferwirbeltieren (Gnathostomen) sind die Axone von einer Hülle aus Myelin umgeben, einer lipidreichen Substanz, die von nahe gelegenen Oligodendrozyten oder Schwann-Zellen produziert wird, die Arten von Gliazellen sind (überprüft in 7,8). Diese Myelinhülle isoliert das Axon elektrisch, reduziert seine Kapazität und ermöglicht eine effiziente, schnelle und mit geringerem Energieverbrauch ausbreitende Ausbreitung des Aktionspotentials. Myelin bedeckt das Axon nicht gleichmäßig, aber es umhüllt das Axon in Segmente, die kurze Lücken zwischen ihnen haben, die sogenannten Knoten von Ranvier (überprüft in 9,10). Sowohl die Myelinisierungsdicke, die das Niveau der elektrischen Isolierung eines Axons steuert, als auch der Abstand der Knoten von Ranvier, die die Frequenz steuern, mit der Aktionspotentiale entlang eines Axons regeneriert werden, beeinflussen die Geschwindigkeit der Ausbreitung des Aktionspotentials (überprüft in11).
Es gibt eine große Menge an Literatur, die darauf hindeutet, dass die Myelinisierungsdicke die Geschwindigkeit der Aktionspotentialausbreitung in den Axonenbeeinflusst 12,13,14. Darüber hinaus können Veränderungen in der Axonmyelinisierung zu einer Reihe von ZNS-Defizitenführen 15,16,17,18,19,20,21. Es ist daher nicht verwunderlich, dass der Schwerpunkt vieler Forschungsbemühungen auf der Messung und Charakterisierung der Axonmyelinisierung liegt. Messungen der Myelindicke wurden am häufigsten mit Elektronenmikroskopie durchgeführt, einer Technik, die eine erhebliche Menge an Gewebevorbereitung erfordert und in Kombination mit Immunhistochemie schwierig zu verwenden ist. Es gibt jedoch auch eine schnellere und einfachere Technik zur Messung der Axonmyelinisierung, die auf der kohärenten Anti-Stokes-Raman-Spektroskopie (CARS) basiert. Ein CARS-Laser kann auf verschiedene Frequenzen abgestimmt werden, und wenn er auf Frequenzen abgestimmt ist, die geeignet sind, Lipide anzuregen, kann Myelin ohne zusätzliche Markierungen abgebildet werden22. Die Lipidbildgebung kann mit der Standard-Immunhistochemie kombiniert werden, so dass Lipide zusammen mit mehreren Fluoreszenzkanälen abgebildet werden können23. Die Bildgebung der Myelinisierung mit CARS ist signifikant schneller als die Elektronenmikroskopie und hat eine Auflösung, die, wenn auch niedriger als EM, ausreicht, um selbst kleine Unterschiede in der Myelinisierung in der gleichen Art von Axonen zu erkennen.
Eine wachsende Anzahl von Literatur betont die Rolle von Myelin in der Gehirnfunktion 13,16,21,28. Darüber hinaus wissen wir, dass sich die Myelinisierungsdicke und das Myelinisierungsmuster bei verschiedenen neurologischen Erkrankungen wie Multipler Sklerose (überprüft in29), Alterung (überprüft in 30), Autismus20, <sup class="xre…
The authors have nothing to disclose.
Unterstützt von NIH R01 DC 17924, R01 DC 18401 (Klug) und NIH 1R15HD105231-01, T32DC012280 und FRAXA (McCullagh). Die CARS-Bildgebung wurde im Advanced Light Microscopy Core-Teil des NeuroTechnology Center am Anschutz Medical Campus der University of Colorado durchgeführt, der teilweise von NIH P30 NS048154 und NIH P30 DK116073 unterstützt wurde.
Anesthetic: | |||
1 mL disposable syringe with needle 27 GA x 0.5" | Exel int | 260040 | |
Fatal + | Vortech | ||
Surgery: | |||
Spring Scissors – 8mm Cutting Edge | Fine Science Tools | 15024-10 | |
Standard tweezers | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Perfusion: | |||
4% Paraformaldehyde | Fisher Chemical | SF994 (CS) | |
Fine Scissors – Sharp | Fine Science Tools | 14063-11 | |
Kelly hemostats | Fine Science Tools | 13019-14 | |
Millipore H2O | |||
Needle tip, 23 GA x 1" | BD precision glide | 305193 | |
Phosphate buffered saline (PBS): | |||
Potassium chloride | Sigma | P9333 | |
Potassium phosphate monobase | Sigma | P5655 | |
pump with variable flow or equivalent | |||
Sodium chloride | Fisher Chemical | s271-1 | |
Sodiumphosphate dibasic | Sigma | S7907 | |
Dissection: | |||
50 mL vial with 4% PFA | |||
Bochem Chemical Spoon 180mm | Bochem | 230331000 | |
Fine Scissors – Sharp | Fine Science Tools | 14063-11 | |
Noyes Spring Scissors | Fine Science Tools | 15011-12 | |
Pair of fine (Graefe) tweezers | Fine Science Tools | 11050-10 | |
Shallow glass or plastic tray, approximately 10" x 10" | |||
Standard tweezers | Fine Science Tools | 11027-12 | |
Surgical Scissors – Blunt | Fine Science Tools | 14000-20 | |
Slicing: | |||
Agar, plant | RPI | 9002-18-0 | |
Vibratome | Leica | VT1000s | |
well plate | Alkali Sci. | TPN1048-NT | |
Staining: | |||
AB Media: | 1n 1,000 mL of Millipore H2O | ||
Phosphate buffered (PB): | |||
Potassium Phosphate Monobase | Sigma | P5655 | |
Sodium Phosohate Dibasic | Sigma | S7907 | |
BSA (Bovine serum albumin) | Sigma life science | A2153-100g | |
Sodium Chloride | Fisher Chemical | s271-1 | |
Triton X-100 | Sigma – Aldrich | x100-500ml | |
Nissl 435/455 | Invitrogen | N21479 | |
CARS: | |||
APE picoemerald laser | Angewandte Physik & Elektronik GmbH | ||
bandpass filter (420-520 nm) | Chroma Technology | HQ470/100m-2P | |
bandpass filter (500-530 nm) | Chroma Technology | HQ515/30m-2P | |
bandpass filters (640-680 nm) | Chroma Technology | HQ660/40m-2P | |
Confocal microscope | Olympus | FV1000 | |
Cut Transfer pipet | Fisher | 13-711-7M | |
dichroic longpass 565 nm | Chroma Technology | 565dcxr | |
dichroic longpass 585 nm | Chroma Technology | 585dcxr | |
dichroic shortpass 750 nm | Chroma Technology | T750spxrxt | |
glass bottom culture dish | MatTek | P35G-0-10-C | |
glass weight (10 mm x 10 mm boro rod) | Allen Scientific Glass Inc | ||
multiphoton shortpass emission filter 680 nm | Chroma Technology | ET680sp-2p8 | |
PBS |