מיקרוסקופיה דינמית דיפרנציאלית (DDM) משלבת תכונות של פיזור אור דינמי ומיקרוסקופיה. כאן מוצג התהליך של שימוש ב- DDM כדי לאפיין רשתות שלד ציטוסקטון משוחזרות על ידי כימות הדינמיקה התת-מפוזרת והכלוב של חלקיקים ברשתות וימנטין והתנועה הבליסטית של מרוכבים פעילים המונעים על ידי מיוזין אקטין-מיקרוטובול.
תאים יכולים לזחול, לרפא את עצמם ולכוון את קשיחותם בשל השלד הדינמי להפליא שלהם. ככזה, שחזור רשתות של ביופולימרים שלדיים ציטוסקטליים עשוי להוביל לשורה של חומרים פעילים וניתנים להתאמה. עם זאת, הנדסת חומרים כאלה עם תכונות מכווננות במדויק דורשת מדידה כיצד הדינמיקה תלויה בהרכב הרשת ובשיטות הסינתזה. כימות דינמיקה כזו מאותגר על ידי וריאציות על פני מרחב הזמן, המרחב והניסוח של רשתות מרוכבות. הפרוטוקול כאן מתאר כיצד טכניקת ניתוח פורייה, מיקרוסקופיה דינמית דיפרנציאלית (DDM), יכולה לכמת את הדינמיקה של רשתות ביופולימרים ומתאימה במיוחד למחקרים של רשתות ציטוסקלטון. DDM עובד על רצפי זמן של תמונות שנרכשו באמצעות מגוון של שיטות מיקרוסקופיה, כולל קונפוקליות לסריקת לייזר, פלואורסצנציה בשדה רחב והדמיית שדה בהיר. מתוך רצפי תמונה כאלה, ניתן לחלץ זמני דה-קארלציה אופייניים של תנודות צפיפות על פני טווח של וקטורים של גלים. כמו כן, פותחה חבילת Python ידידותית למשתמש בקוד פתוח לביצוע ניתוח DDM. באמצעות חבילה זו, ניתן למדוד את הדינמיקה של רכיבי שלד ציטוסקלטון מסומנים או של חלקיקי עוקבים מוטבעים, כפי שהודגם כאן עם נתונים של רשתות נימה מתווכת (vimentin) ורשתות אקטין-מיקרוטובול פעילות. משתמשים ללא ניסיון קודם בתכנות או בעיבוד תמונה יוכלו לבצע DDM באמצעות חבילת תוכנה זו ותיעוד משויך.
השלד הציטוסקלטון הוא רשת של חוטי חלבון המשתרעת על פני הציטופלסמה של תאים אאוקריוטים, ומחברת את פני התא לגרעין. יש לו תכונות חומר ייחודיות, המספקות הגנה מכנית מפני עומסים מכניים גדולים וחוזרים על עצמם, אך גם מניעות שינויים דינמיים בצורת התא1. רשתות שלד ציטו-שלד משוחזרות יכולות להוליד מגוון של התנהגויות דינמיות מעניינות, החל מכליאה של חלקיקים משובצים וכלה בתנועה בליסטית המונעת על ידי מנועים מולקולריים 2,3,4,5,6,7,8,9,10,11 . שיטות לניתוח הדינמיקה של רשתות כאלה כוללות מעקב אחר התנועה של מיקרו-ספירות עוקבות מוטבעות 6,7,12,12,13,14, ניתוח תמונה למעקב אחר גודלם של צבירים צפופי חלבונים לאורך זמן8, פיזור אור דינמי15, וולוצימטריה של תמונת חלקיקים 4,16,17,18,19 חישוב הצפיפות הספקטרלית של תמונות לאורך זמן19, וניתוח קימוגרף20., ככל שמתבצעים מחקרים נוספים על רשתות שלד ציטו-שלד משוחזרות, בין אם כדי להבין את המכניקה התאית או את החומר הפעיל, יש צורך יותר ויותר בשיטות חזקות, בלתי משוחדות וניתנות לשחזור לאפיון הדינמיקה. מיקרוסקופיה דינמית דיפרנציאלית (DDM)21,22, טכניקה חדשה יחסית ששימשה לחקר דינמיקת שלד ציטוסקלטון, היא טכניקה כזו המכמתת ביעילות את הדינמיקה עם מעט פרמטרים המוגדרים על ידי המשתמש. עם חבילת התוכנה המתוארת כאן, חוקרים עם ניסיון מועט בתכנות או ניתוח תמונות יוכלו למנף את DDM לעבודתם שלהם.
DDM היא טכניקת ניתוח תמונה לחילוץ הדינמיקה של הדגימה. בדומה למעקב אחר חלקיקים או לוולוצימטריה של תמונות חלקיקים, DDM דורש סדרת זמן של תמונות (לעתים קרובות אלפי תמונות), המתועדות בדרך כלל באמצעות מיקרוסקופ. שלא כמו מעקב אחר חלקיקים, תכונות בודדות או חרוזי מעקב אינם צריכים להיות מקומיים (או אפילו להיות ניתנים למיקום) בתמונה. בניגוד הן למעקב אחר חלקיקים והן לולוסיומטריה של תמונת חלקיקים, משחזרים את דינמיקת ההרכב עם DDM עם מעט יחסית פרמטרים שצוינו על ידי המשתמש. עם DDM, תמונות מנותחות במרחב פורייה כדי לקבוע את זמן הדעיכה של תנודות צפיפות על פני טווח של מספרי גלים, q, כאשר q = 2πu, ו– u הוא גודל התדרים המרחביים, . אחד מהם מקבל מידע דמוי פיזור אך עם תמונות בחלל האמיתי שנרכשו על מיקרוסקופ 21,22,23. לכן, ניתן לנצל את השיטות השונות ליצירת ניגודיות של מיקרוסקופיה, כגון פלואורסצנציה בשדה רחב22,24, פלואורסצנציה קונפוקלית25,מקוטבת 26, שדה כהה27, או פלואורסצנציה של יריעות בהירות28 מיקרוסקופיות. יתר על כן, תמונות המשמשות לניתוח DDM עשויות לשמש למעקב אחר חלקיקים או לוולוצימטריה של תמונות חלקיקים כדי לספק מידע משלים.
שילוב זה של תכונות החל מפיזור אור דינמי ומיקרוסקופיה אופטית הופך את DDM לטכניקה רבת עוצמה ורב-תכליתית. מאז התיאור הראשון שלה על ידי Cerbino ו- Trappe בשנת 200821, שם הודגם DDM כדי למדוד את הדיפוזיה של חלקיקים קולואידיים של 73 ננומטר, DDM שימש למדידת קולואידים זורמים29, צבירה קולואידית30,31, צמיגות של גבישים נוזליים נמטיים26, הדינמיקה של ג’לים קולואידיים32, קצף גס33, ננו-חלקיקים בסביבות סגורות34, 35,36,37, תנועתיות חיידקית 38,39,40,41, דיפוזיה של צבירי חלבונים בעלי פיזור חלש 42, גלים נימיים בממשקי נוזלים43 ומערכות אחרות. מי שמחפש רשימה מלאה יותר של פרסומים המשתמשים ב- DDM יכול לעיין במאמרי סקירה יסודיים בנושא 22,23,44,45.
DDM שימש גם כדי לחקור את הדינמיקה של רשתות ביולוגיות. Drechsler et al. השתמשו ב- DDM כדי למדוד את הדינמיקה של אקטין בביציות דרוזופילה חיות46. Burla et al. כימתו את הדינמיקה של חלקיקי עוקבים ברשתות של חומרים מרוכבים היאלורונן והיאלורונן-קולגן47. מספר שימושים ב-DDM כדי לחקור את הדינמיקה של חלקיקי עוקבים ברשתות שלד ציטו-שלד משוחזרות 9,10, הובלת מולקולות דנ”א ברשתות כאלה48,49, והדינמיקה של רשתות משוחזרות פעילות תועדו גםהם 11,50,51. יתרון של DDM במדידת הדינמיקה במערכות כאלה הוא שחלקיקים או מולקולות בודדים אינם צריכים להיות מקומיים ומעקב. כך, למשל, ניתן למדוד את הדינמיקה של מולקולות דנ”א בסביבות צפופות באמצעות DDM למרות הקושי לעקוב אחר מולקולות קטנות ולא כדוריות כאלה. יתר על כן, באמצעות מיקרוסקופיה פלואורסצנטית, ניתן להשתמש בתיוג רב-צבעים כדי למדוד באופן סלקטיבי את הדינמיקה של מרכיבים בודדים בתרכובת מורכבת.
כדי לבצע DDM, רצף של תמונות נלקח לאורך זמן, I(x,y,t). עבור זמן השהיה נתון, Δt, נמצאים כל (או תת-קבוצה) של זוגות תמונות המופרדים על-ידי זמן השהיה זה. התמרת פורייה בריבוע של ההפרש של כל זוג,
מחושבים וממוצעים יחד. כמות זו, , היא ממוצעת רדיאלית, בתנאי שהדינמיקה היא איזוטרופית. זה מניב את מטריצת DDM (המכונה גם פונקציית מבנה התמונה), . תהליך זה מוצג באופן גרפי באיור 1. כדי לקבוע את הדינמיקה של המדגם ממטריצת DDM זו, ההנחה היא שמטריצת DDM תקבל את הצורה
כאשר A היא המשרעת, התלויה בפרטי המיקרוסקופ ובמבנה הדגימה, B הוא הרקע, התלוי ברעש בתמונות, ו– f (q, Δt) היא פונקציית פיזור הביניים (ISF), המכילה מידע על הדינמיקה21,22. במקרים פשוטים,
כאשר τ הוא זמן דעיכה או דה-קורלציה אופייני. ISF כזה שימש במספר מחקרים המשתמשים ב- DDM על מערכות ארגודיות כמו מתלים קולואידיים מדוללים 21,24,27,37,40,52. עם זאת, צורות אחרות של ISF ניתן להשתמש כדי מודל סוגים שונים של דינמיקה. לדוגמה, ניתן להשתמש בהרחבת קומולנט כדי למדל את ה- ISF עבור דגימות פולידיספרזה כ-
כאשר μ הוא מדד של הפולידיספציה42,53; אם תנודות הצפיפות דועכות בשני מצבים נפרדים ניתן להשתמש ב- ISF כמו
26, 54, 55, 56, 57;
ISFs אחרים יכולים לשמש לשחייה מיקרו-אורגניזמים או חלקיקים פעילים אחרים 38,39,40,41,58,59.
איור 1: סקירה כללית של ניתוח DDM. מזמן סדרת התמונות, מחושבת התמרת פורייה של הפרשי תמונה כדי לחשב את מטריצת ה- DDM. ניתן להתאים את מטריצת ה- DDM למודל כדי לקבוע את סולם הזמן של תנודות צפיפות על פני טווח של ערכי q . אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של נתון זה.
כאן מתואר השימוש בחבילת תוכנת ניתוח DDM שפותחה ב- Python, PyDDM. חבילת תוכנה זו מתבססת על העבודה שנעשתה על ידי מעבדות המחקר שלנו ומחקרים אחרים שפורסמו במהלך השנים האחרונות. המניעים העיקריים ליצירת חבילת תוכנה זו כוללים את הצורך ב- (1) מעקב ואחסון מטא-נתונים ופרמטרים המשמשים בניתוח; (2) תיעוד יסודי עם דוגמאות מפורטות של ניתוח מתחילתו ועד סופו; ו-(3) דרך קלה להשתמש במודלים מתמטיים שונים (או ליצור חדשים) להתאמת הנתונים (לדוגמה, הוספת מודלים של ISF, כגון אלה שפותחו לאחרונה עבור חוטים פעילים60, תהיה פשוטה). קיימות גם חבילות תוכנה אחרות לניתוח DDM, אם כי לא כולן מתועדות היטב וכתובות בשפת תכנות בקוד פתוח. לדוגמה, יש קוד C++ עם מחשוב על מעבדים גרפיים (https://github.com/peterlu/ConDDM)25, קוד C++ המשתמש בהמרות פורייה בזמן כדי להאיץ חישובים (https://github.com/giovanni-cerchiari/diffmicro)61, גרסאות MATLAB ו- Python (https://github.com/MathieuLeocmach/DDM)40, קוד MATLAB (https://sites.engineering.ucsb.edu/~helgeson/ddm.html)27, וקוד MATLAB עם כימות אי-ודאות ( https://github.com/UncertaintyQuantification/DDM-UQ)62. מכיוון שחבילת PyDDM זו מתועדת היטב ומספקת גמישות רבה באופן החישוב והניתוח של מטריצת ה-DDM, היא יכולה בתקווה להיות שימושית לחוקרים המעוניינים ליישם DDM ללא קשר לרקע שלהם בתכנות או בניתוח תמונות.
הפרוטוקול מראה כיצד ניתן להשתמש בחבילת תוכנה זו כדי לכמת את הדינמיקה של רשתות ציטוסקלטון משוחזרות במבחנה . זה נעשה על ידי שימוש בשתי קבוצות שונות של נתוני הדמיה: (1) תמונות של חלקיקי עוקבים תת-מיקרוניים המשובצים ברשת וימנטין שצולמה במיקרוסקופיה של שדה בהיר ו-(2) תמונות של חוטי אקטין ומיקרוטובול מסומנים פלואורסצנטיים ברשת מרוכבת מסתבכת עם פעילות מונעת מיוזין שצולמה במיקרוסקופיה קונפוקלית בסריקת לייזר. הניתוחים של שני מערכי נתונים אלה מדגישים עוצמות בולטות של DDM, כולל יכולתו לנתח תמונות שצולמו במגוון אופנות הדמיה (למשל, שדה בהיר או פלואורסצנציה קונפוקלית), כדי לחלץ דינמיקה ממעקבים מוטבעים או מחוטים מסומנים, ולכמת מגוון של דינמיקות (למשל, תת-מפוזרות ומוגבלות או בליסטיות).
חבילת התוכנה המתוארת כאן משתמשת ב- DDM כדי לנתח תנודות צפיפות שנצפו בתמונות שנרכשו באמצעות מיקרוסקופ אופטי. תוצאות מייצגות מהנתונים של חלקיקי עוקבים המוטמעים ברשתות וימנטין הוצגו לראשונה. ניתוח של נתונים כאלה יכול לשמש כדי לאפיין את גודל הרשת ואת נוקשותה של הרשת באופן דומה לאופן שבו נעשה שימוש במעקב אחר חלקיקים בודדים במחקרים רבים בעבר של רשתות שלד ציטוסקלטון 6,12,13. יתרון של שימוש ב-DDM על פני מעקב אחר חלקיקים בודדים הוא ש-DDM אינו דורש שהחלקיקים יהיו מקומיים. לכן, אפילו בתמונות שבהן צפיפות החלקיקים גבוהה מדי או החלקיקים קטנים מכדי למקם אותם ולעקוב אחריהם, DDM עדיין יכול לקבוע את הדינמיקה. המקום שבו מעקב אחר חלקיקים בודדים יהיה יתרון הוא כאשר בוחנים את השתנות החלקיק לחלקיק. עם DDM, מוצאים את הדינמיקה הממוצעת של ההרכב, בעוד שעם מעקב אחר חלקיקים בודדים, ניתן לחשב הן את ה-MSD של חלקיק בודד והן את ה-MSD הממוצע של אנסמבל. עם זאת, ניתן להשתמש ב- DDM כדי לחקור דינמיקה הטרוגנית על ידי ניתוח מספר אזורי עניין בתוך שדה ראייה גדול.
לאחר מכן, תוצאות מייצגות מנתונים של חוטים המסומנים באופן פלואורסצנטי ברשת פעילה המורכבת משני סוגי חוטי שלד ציטוסקטליים המסומנים באופן שונה הוצגו11. עם נתונים אלה, התנועה הבליסטית אופיינה ללא צורך בתכונות מקומיות כלשהן בתוך התמונה. מכיוון ש-DDM מחלץ את הדינמיקה הממוצעת של האנסמבל עם מעט קלטי משתמשים, הוא הופך את ההשוואה בין סדרות תמונות שנרכשו עם תנאים שונים לפשוטה (למשל, השוואת דגימות עם יחסים שונים של אקטין למיקרוטובולים או דגימות עם ריכוזים שונים של מיוזין, כפי שנעשהב-50). בנוסף, באמצעות הדמיה פלואורסצנטית, אנו יכולים לחקור את הדינמיקה של רכיבים שונים של רשת באמצעות תיוג צבעוני. זה נעשהב-11,50, שם הדינמיקה של אקטין ושל מיקרוטובולים נותחה בנפרד ברשת מרוכבת אקטין-מיקרוטובול פעילה באמצעות הדמיה צבעונית. בסעיף התוצאות הייצוגיות כאן הוצגו רק התוצאות מערוץ המיקרוטובול, אך בעבודה קודמת השווינו את הדינמיקה של חוטי המיקרוטובול והאקטין11.
נציין כי תוצאות מייצגות אלה מציגות תת-דיפוזיה פסיבית או תנועה בליסטית אקטיבית. חשוב לציין, ניתן להשתמש ב- DDM כדי לנתח מערכות שבהן יש הצלבה בסוג הדינמיקה בסקאלות זמן ביניים או אורך. כדוגמאות, Kurzthaler et al. השתמשו ב- DDM עם מערכת של קולואידים פעילים של Janus כדי לחקור תנועה מכוונת פעילה בקני מידה של זמן קצר ואקראיזציה של הכיוון בסולמות זמן ארוכים יותר59; Giavazzi et al. השתמשו ב-DDM עם קצף גס ומצאו קרוסאובר בדינמיקה המתאימה לסולם האורך של בועה33; ו-Cho et al. השתמשו ב-DDM עם ג’לים קולואידיים ומצאו שלושה משטרים הניתנים להבחנה בקני מידה שונים באורך שונה, החל מאשכולות הפרקטל ועד לרשת32 כולה.
הנתונים שנכללו בסעיף התוצאות הייצוגיות נרכשו באמצעות מיקרוסקופיית ברייטפילד ומיקרוסקופיה קונפוקלית לסריקת לייזר. עם זאת, כפי שצוין קודם לכן, ניתן להשתמש ב- DDM עם שיטות הדמיה רבות. עם כל שיטת הדמיה, משתמשים צריכים לשקול הגדרות אופטיות כגון מידת החתך האופטי או עומק השדה. רמה גבוהה של חתך אופטי עשויה להפחית את האות מעצמים מחוץ למיקוד, אך לא ניתן יהיה למדוד במדויק את הדינמיקה על פני צירי זמן גדולים יותר מציר הזמן שבו אובייקטים יזוזו מעומק השדה25,28. דיון מעמיק יותר באופן שבו עומק השדה התלוי ב-q משפיע על ניתוח DDM ניתן למצואב-22. עבור הדמיית שדה בהיר, ייתכן שהמשתמשים יצטרכו גם לקחת בחשבון את עובי הדגימה. בעוד שעבור דגימות פיזור חלשות, דגימות עבות יותר עשויות לספק יותר אות42, דגימות עכורות עשויות לדרוש שינוי של הניתוח כך שיתחשב בפיזור מרובה81. לבסוף, עבור שיטות הדמיה שאינן אינווריאנטיות של מרחב ליניארי (כלומר, כאשר העוצמה שנרשמה על ידי המצלמה של אובייקט תלויה היכן אותו אובייקט נמצא במישור הדגימה x-y), ייתכן שיהיה צורך להסביר את שונות המרחב הליניארי, כפי שהודגם עם שדה כהה DDM27.
עבור אלה שמתחילים עם DDM, אנו מבקשים להדגיש את החשיבות של התחשבות ברזולוציה המרחבית והזמנית. כאשר בוחנים את זמני הדעיכה שנקבעו כפונקציה של מספר גלים, חשוב לסמן את גבולות הרזולוציה של האדם (כלומר, זמני ההשהיה המרביים והמינימום ומספר הגלים המרבי, כפי שנעשה באיור 5). יש לחשוב היטב על מגבלות אלה לפני איסוף הנתונים, כך שניתן יהיה לבחור את העדשה האובייקטיבית האופטימלית, גודל התמונה, קצב הפריימים ומשך הסרט. השיקול החשוב הנוסף הוא כיצד להעריך את פרמטר הרקע B. בספרות נעשה שימוש בשיטות רבות להערכת הרקע, וההשפעות של הערכת יתר או הערכת חסר של B תוארו בפרסומים קודמים62,77. כפי שניתן לראות באיור 10, PyDDM מאפשר למשתמשים ליישם שיטות שונות להערכת B, ואנו מציעים למשתמשים חדשים לנסות את השיטות האלה ולהעריך אילו מתאימות לשימוש.
חוזקה של חבילה זו היא התיעוד וההדרכה היסודיים שלה הכוללים נתונים לדוגמה, אחסון וארגון של מטא-נתונים כדי לעקוב אחר אופן ביצוע הניתוחים, והגמישות כיצד לנתח את מטריצת ה- DDM (מודלים מתאימים שונים, שיטות מרובות להערכת פרמטר הרקע B, היכולת למצוא את ה- MSD). עם זאת, ישנם היבטים מרובים לקוד זה שניתן לשפר. נכון לעכשיו, הקוד לא הותאם למהירות חישוב מהירה. שיטות להאצת החישוב דווחועל 61,62, ואלה ייושמו במהדורות עתידיות. בנוסף, אנו מתכננים ליישם שיטות שדווחו לאחרונה כדי להעריך טוב יותר את אי הוודאות ולהשתמש בסימולציות להנחיית משתמשים למודל ISF62 המתאים. לשיפורים אחרים, אנו מקווים שמשתמשים ייצרו איתנו קשר עם הצעות.
The authors have nothing to disclose.
חלקים ממחקר זה מומנו על ידי פרס R15 של המכונים הלאומיים לבריאות (פרס המכון הלאומי למדעי הרפואה הכלליים לא. R15GM123420, הוענק ל- R.M.R.-A. ו-R.J.M.), פרס חוקר קוטרל מטעם תאגיד המחקר לקידום המדע (פרס מס’ 27459, מוענק ל-R.J.M.), ומענק מחקר מטעם קרן ויליאם מ. קק (הוענק ל-R.M.R-A.). GHK מודה תודה על תמיכה כספית ממועצת המחקר ההולנדית (NWO; מספר פרויקט VI.C.182.004 של תוכנית הכישרונות של NWO).
CMOS camera, Orca-Flash 4.0 | Hamatsu | ||
F-127 Pluronic | Sigma Aldrich | ||
Jupyter Notebook | |||
Nanodrop | Thermo Fisher | ||
Nikon Ti-Eclipse microscope | Nikon | ||
PLL-PEG-bio | SuSos AG, Dübendorf, Switzerland | ||
Polystyrene beads | Sigma Aldrich | ||
Protein dialysis mini-cassette | Thermo Fisher | ||
PyDDM | University of San Diego | N/A | Open source software available from https://github.com/rmcgorty/PyDDM |