Um protocolo para processar a cópula gerbil jovem e envelhecida imunolabelando as estruturas sinápticas e células ciliadas anciavelmente, saciando a autofluorescência no tecido envelhecido, dissecando e estimando o comprimento da cóclea, e quantificando as sinapses em pilhas de imagens obtidas com imagens confocalas.
A perda de sinapses de fita que conectam células ciliares internas e fibras nervosas auditivas diferentes é considerada uma das causas da perda auditiva relacionada à idade. O método mais comum para detectar a perda de sinapses de fita é o imunolabeling porque permite a amostragem quantitativa de vários locais tonotópicos em uma cóclea individual. No entanto, as estruturas de interesse estão enterradas no interior da cóclea óssea. Gerbils são usados como modelo animal para perda auditiva relacionada à idade. Aqui, protocolos de rotina para fixação, montagens inteiras de gerbil coclear de imunolabeling, imagens confocal e números e volumes de sinapse de fita quantificando são descritos. Além disso, destacam-se os desafios particulares associados à obtenção de bons materiais de indivíduos valiosos do envelhecimento.
Gerbils são eutanizados e ou perfundidos cardiovascularmente, ou suas bípricas timpânicas são cuidadosamente dissecadas para fora do crânio. A cóclea é aberta no ápice e base e diretamente transferida para o fixador. Independentemente do método inicial, a cóclea é postfixada e posteriormente descalcificada. O tecido é então rotulado com anticorpos primários contra estruturas pré e postiáticas e células ciliadas. Em seguida, a cóclea é incubada com anticorpos com marca de fluorescência secundária que são específicos contra seus respectivos primários. A cóclea de gerbils envelhecidos é então tratada com uma quencher de autofluorescência para reduzir a fluorescência de fundo tipicamente substancial dos tecidos dos animais mais velhos.
Finalmente, a cóclea é dissecada em segmentos 6-11. Todo o comprimento coclear é reconstruído de tal forma que locais cocleares específicos podem ser determinados de forma confiável entre os indivíduos. Pilhas de imagens confocal, adquiridas sequencialmente, ajudam a visualizar células ciliadas e sinapses nos locais escolhidos. As pilhas confocal são desconvolvadas, e as sinapses são contadas manualmente usando ImageJ, ou a quantificação mais extensa de estruturas sinápticas é realizada com procedimentos de análise de imagem escritos sob medida no Matlab.
A perda auditiva relacionada à idade é uma das doenças mais prevalentes do mundo que afeta mais de um terço da população mundial com 65 anos oumais de 1 ano. As causas subjacentes ainda estão em debate e estão sendo investigadas ativamente, mas podem incluir a perda das sinapses especializadas que conectam células ciliadas internas (IHCs) com diferentes fibras nervosas auditivas2. Estas sinapses de fita compreendem uma estrutura pré-sináptica que tem vesículas preenchidas com o glutamato neurotransmissor amarrado a ele, bem como receptores de glutamato α-amino-3-hidroxi-5-metil-4-isoxazolepropionic ácido (AMPA)receptores de glutamato 3,4,5. No gerbil, ~20 fibras nervosas auditivas diferentes entram em contato com um IHC 6,7,8. As fibras no IHC voltadas para o modiólus se opõem a grandes fitas sinápticas, enquanto as fibras que se conectam no lado do pilar do IHC enfrentam pequenas fitas sinápticas (ou seja, em gatos9, gerbils7, cobaias10 e ratos 3,11,12,13,14). Além disso, no gerbil, o tamanho das fitas pré-sinápticas e as manchas de glutamato postsintáptico estão correlacionados positivamente 7,14. As fibras que se opõem a grandes fitas no lado modiolar do IHC são pequenas de calibre e têm baixas taxas espontâneas e limiares elevados15. Há evidências de que as fibras de baixa taxa espontânea são mais vulneráveis à exposição ao ruído10 e drogas ototóxias16 do que fibras de baixo limiar espontâneos, que estão localizadas no lado pilar dos IHCs15.
A perda de sinapses de fita é o mais antigo evento degenerativo na perda auditiva relacionada à idade neural coclear, enquanto a perda de células de gânglio espiral e suas diferentes fibras nervosas auditivas fica atrásde 17,18. Correlações eletrofisiológicas incluem gravações de respostas auditivas do troncocerebral 17 e potenciais de ação composta8; entretanto, não refletem as sutilezas da perda de sinapse, uma vez que as fibras de baixa taxa espontânea não contribuem para essas medidas16. Métricas eletrofisiológicas mais promissoras são o índice neural derivado de massa19 e a resposta ao tempo peristimulus20. No entanto, estes só são confiáveis se o animal não tiver outras patologias cocleares, além da perda auditiva de fibras nervosas, que afetam a atividade das fibras nervosas auditivas restantes8. Além disso, os limiares avaliados comportamentalmente no gerbil não foram correlacionados com os números da sinapse21. Portanto, a quantificação confiável das sinapses de fita sobreviventes e, assim, o número de fibras nervosas auditivas funcionais só é possível mediante o exame direto do tecido coclear.
O gerbil mongol (Meriones unguiculatus) é um modelo animal adequado para estudar a perda auditiva relacionada à idade. Tem uma vida útil curta, tem audição de baixa frequência semelhante aos humanos, é fácil de manter, e mostra semelhanças com patologias humanas relacionadas à perda auditiva relacionada à idade 2,22,23,24. Os gerbils são considerados idosos quando chegam aos 36 meses de idade, o que está perto do fim de sua média de vida22. É importante ressaltar que uma perda relacionada à idade das sinapses de fita tem sido demonstrada em gerbils criados e envelhecidos em ambientes tranquilos 8,21.
Aqui, é apresentado um protocolo para imunolabel, dissecar e analisar cócleas de gerbils de diferentes idades, de adultos jovens a idosos. Anticorpos direcionados contra componentes da presinapse (CtBP2), patches de receptor de glutamato postânaptic (GluA2) e IHCs (myoVIIa). Aplica-se um quencher de autofluorescência que reduz o fundo em cóclea envelhecida e deixa o sinal de fluorescência intacto. Além disso, é dada uma descrição de como dissecar a cóclea para examinar tanto o epitélio sensorial quanto a estria vascularis. O comprimento coclear é medido para permitir a seleção de locais cocleares distintos que correspondem às melhores frequências específicas25. A quantificação dos números da sinapse é realizada com o software disponível livremente ImageJ26. A quantificação adicional de volumes e locais de sinapse dentro do HC individual é realizada com software personalizado escrito no Matlab. Este software não é disponibilizado publicamente, pois os autores não têm recursos para fornecer documentação profissional e suporte.
Com o método descrito neste protocolo, é possível imunolabel IHCs e estruturas sinápticas em cócleas de gerbils jovens adultos e idosos, identificar supostas sinapses funcionais por co-localização de elementos pré e post-sinápticos, alocá-los para IHCs individuais e quantificar seu número, volume e localização. Os anticorpos utilizados nesta abordagem também rotularam células ciliadas externas (OHCs; myoVIIa) e suas fitas pré-sinápticas. Além disso, uma alternativa viável para a imunolabelagem de ambo…
The authors have nothing to disclose.
Os autores reconhecem Lichun Zhang por ajudar a estabelecer o método e a Unidade de Serviço de Microscopia de Fluorescência, Carl von Ossietzky University of Oldenburg, para o uso das instalações de imagem. Esta pesquisa foi financiada pela Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, German Research Foundation) sob a Estratégia de Excelência da Alemanha – EXC 2177/1.
Albumin Fraction V biotin-free | Carl Roth | 0163.2 | |
anti-CtBP2 (IgG1 monoclonal mouse) | BD Biosciences, Eysins | 612044 | |
anti-GluA2 (IgG2a monoclonal mouse) | Millipore | MAB39 | |
anti-mouse (IgG1)-AF 488 | Molecular Probes Inc. | A21121 | |
anti-MyosinVIIa (IgG polyclonal rabbit) | Proteus Biosciences | 25e6790 | |
Blade Holder & Breaker – Flat Jaws | Fine Science Tools | 10052-11 | |
Bonn Artery Scissors – Ball Tip | Fine Science Tools | 14086-09 | |
Coverslip thickness 1.5H, 24 x 60 mm | Carl Roth | LH26.1 | |
Disposable Surgical Blade | Henry Schein | 0473 | |
donkey anti-rabbit (IgG)-AF647 | Life Technologies-Molecular Probes | A-31573 | |
Dumont #5 – Fine Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
Dumont #5SF Forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | |
Ethanol, absolute 99.8% | Fisher Scientific | 12468750 | |
Ethylenediaminetetraacetic acid | Carl Roth | 8040.2 | |
Excel | Microsoft Corporation | ||
Feather Double Edge Blade | PLANO | 112-9 | |
G19 Cannula | Henry Schein | 9003633 | |
goat anti-mouse (IgG2a)-AF568 | Invitrogen | A-21134 | |
Heparin | Ratiopharm | N68542.04 | |
Huygens Essentials | Scientific Volume Imaging | ||
ImageJ | Fiji | ||
Immersol, Immersion oil 518F | Carl Zeiss | 10539438 | |
Intrafix Primeline Classic, 150 cm (mit Datamatrix Code auf der Sterilverpackung) | Braun | 4062957E | |
ISM596D | Ismatec | peristaltic pump | |
KL 1600 LED | Schott | 150.600 | light source for stereomicroscope |
Leica Application suite X | Leica Microsystem CMS GmbH | ||
Leica TCS SP8 system | Leica Microsystem CMS GmbH | ||
Matlab | The Mathworks Inc. | ||
Mayo Scissors Tungston Carbide ToghCut | Fine Science Tools | 14512-17 | |
Mini-100 Orbital-Genie | Scientific Industries | SI-M100 | for use in cold environment |
Narcoren (pentobarbital) | Boehringer Ingelheim Vetmedica GmbH | ||
Nikon Eclipse Ni-Ei | Nikon | ||
NIS Elements | Nikon Europe B.V. | ||
Paraformaldehyde | Carl Roth | 0335.3 | |
Petri dish without vents | Avantor VWR | 390-1375 | |
Phosphate-buffered saline: | |||
Disodium phosphate | AppliChem | A1046 | |
Monopotassium phosphate | Carl Roth | 3904.1 | |
Potassium chloride | Carl Roth | 6781.1 | |
Sodium chloride | Sigma Aldrich | 31434-M | |
Screw Cap Containers | Sarstedt | 75.562.300 | |
Sodium azide | Carl Roth | K305.1 | |
Student Adson Forceps | Fine Science Tools | 91106-12 | |
Student Halsted-Mosquito Hemostat | Fine Science Tools | 91308-12 | |
Superfrost Adhesion Microscope Slides | Epredia | J1800AMNZ | |
Triton X | Carl Roth | 3051.2 | |
TrueBlack Lipofuscin Autofluorescence Quencher | Biotium | 23007 | |
Vannas Spring Scissors, 3mm | Fine Science Tools | 15000-00 | |
Vectashield Antifade Mounting Medium | Vector Laboratories | H-1000 | |
Vibrax VXR basic | IKA | 0002819000 | |
VX 7 Dish attachment for Vibrax VXR basic | IKA | 953300 | |
Wild TYP 355110 (Stereomicroscope) | Wild Heerbrugg | not available anymore |