Summary

מכשיר מיקרופלואידי להפרדת תאים סרטניים שאינם גרורתיים (MCF-7) ושאינם סרטניים (MCF-10A) באמצעות דיאלקטרופורזה AC

Published: August 11, 2022
doi:

Summary

תאי סרטן השד מפגינים תכונות דיאלקטריות שונות בהשוואה לתאי אפיתל שדיים שאינם סרטניים. הועלתה השערה כי בהתבסס על הבדל זה בתכונות הדיאלקטריות, ניתן להפריד בין שתי האוכלוסיות למטרות אימונותרפיה. כדי לתמוך בכך, אנו מדגמים מכשיר מיקרופלואידי למיון תאי MCF-7 ו-MCF-10A.

Abstract

התקנים דיאלקטרופורטיים מסוגלים לזהות ולתפעל תאים סרטניים באופן נטול תוויות, חסכוני, חזק ומדויק תוך שימוש בעקרון הקיטוב של התאים הסרטניים בנפח הדגימה על ידי הפעלת שדה חשמלי חיצוני. מאמר זה מדגים כיצד ניתן להשתמש בפלטפורמה מיקרופלואידית למיון רציף בתפוקה גבוהה של תאי סרטן שד שאינם גרורתיים (MCF-7) ותאי אפיתל שד שאינם סרטניים (MCF-10A) באמצעות דיאלקטרופורזה הידרודינמית (HDEP) מתערובת התאים. על ידי יצירת שדה חשמלי בין שתי אלקטרודות הממוקמות זו לצד זו עם מרווח בגודל מיקרון ביניהן בשבב מיקרופלואידי HDEP, ניתן לדחוף תאי אפיתל שדיים שאינם סרטניים (MCF-10A), המציגים DEP שלילי בתוך הערוץ הראשי, בעוד שתאי סרטן השד הלא גרורתיים עוקבים אחר מסלולם ללא השפעה כאשר הם תלויים בתווך התא בשל מוליכות גבוהה יותר ממוליכות הממברנה. כדי להדגים תפיסה זו, בוצעו סימולציות לערכים שונים של מוליכות בינונית, ומיון התאים נחקר. נערך מחקר פרמטרי, ומוליכות מתאימה של תערובת תאים נמצאה 0.4 S/m. על ידי שמירה על מוליכות בינונית קבועה, נקבע תדר AC הולם של 0.8 מגה-הרץ, המעניק יעילות מיון מקסימלית, על ידי שינוי תדר השדה החשמלי. באמצעות השיטה המודגמת, לאחר בחירת מוליכות בינונית התלויה של תערובת התאים המתאימה ותדירות ה- AC המיושם, ניתן להשיג יעילות מיון מקסימלית.

Introduction

גידול ממאיר המתפתח בתוך ומסביב לרקמת השד הוא גורם שכיח לסרטן השד אצל נשים ברחבי העולם, וגורם לבעיה בריאותית קריטית1. גידולי שד לפני גרורות יכולים להיות מטופלים באמצעות ניתוח אם הם מזוהים בשלב מוקדם, אך אם מתעלמים מהם, הם יכולים להיות בעלי השלכות חמורות על חיי המטופלת על ידי התפשטות לריאות, למוח ולעצמות. לטיפולים המוצעים בשלבים מאוחרים יותר, כגון קרינה וטיפולים מבוססי כימיקלים, יש תופעות לוואי קשות2. מחקרים אחרונים דיווחו כי אבחון מוקדם של סרטן השד מפחית את שיעור התמותה ב -60%3. לפיכך, חובה לפעול למען שיטות מותאמות אישית לגילוי מוקדם. לשם כך, חוקרים העובדים בתחומים שונים של מדע וטכנולוגיה השתמשו במיקרופלואידיקה כדי לפתח מכשירים לאבחון מוקדם של סרטן השד4. שיטות אלה כוללות מיקרו-כרומטוגרפיה של זיקה תאית, ממיינים של מיקרו-תאים המופעלים על-ידי מגנטית, לכידה והפרדה של תאים סרטניים מבוססי גודל, ודיאלקטרופורזה על השבב (DEP)5,6. טכניקות מיקרופלואידיות אלה המדווחות בספרות מאפשרות מניפולציה מדויקת של תאים, ניטור בזמן אמת ומיון של דגימות מוגדרות היטב, המשמשות כשלב ביניים ביישומים אבחוניים וטיפוליים רבים5. השילוב של מנגנוני מיון אלה עם microfluidics מציע מניפולציה גמישה ואמינה של תאי המטרה 7,8,9,10. אחד היתרונות העיקריים של אינטגרציה כזו הוא היכולת לעבוד עם דגימות נוזל בנפחי ננו למיקרוליטר וגם היכולת לתפעל את התכונות החשמליות של נוזל הדגימה. על ידי התאמת המוליכות של הנוזל התלוי בתוך התקנים מיקרופלואידיים, ניתן למיין את התאים הביולוגיים על סמך גודלם וההבדלים בתכונותיהם הדיאלקטריות11,12.

בין טכניקות אלה, DEP על השבב הוא המועדף לעתים קרובות כפי שהוא טכניקת מיון תאים ללא תווית המנצלת את התכונות החשמליות של דגימות ביולוגיות. דווח כי DEP מבצעת מניפולציות בדגימות ביולוגיות כגון DNA 13, RNA 14, חלבונים 15, חיידקים 16, תאי דם 17, תאי גידול במחזור הדם (CTCs)18 ותאי גזע 19. התקנים מיקרופלואידיים המשתמשים ב-DEP למיון דגימות ביולוגיות דווחו בהרחבה בספרות20. דווח על התקנים מיקרופלואידיים מבוססי מאגר DEP (rDEP) למיון תאי שמרים בני קיימא ולא בני קיימא המגנים על התאים מפני ההשפעות השליליות של תגובות אלקטרוכימיות21,22. Piacentini et al. דיווחו על סדרן תאים מיקרופלואידי קסטלי שהפריד בין תאי דם אדומים לטסיות דם ביעילות של 97%23. כמו כן, דווח כי התקני DEP על השבב עם פתחים אסימטריים ואלקטרודות משובצות ממיינים תאים בני קיימא ולא בני קיימא24. Valero ו- Demierre et al. שינו את סדרן התאים המיקרופלואידיים הקסטל על ידי הצגת שני מערכים של מיקרואלקטרודות משני צידי ערוץ25,26. זה עזר למקד את התאים במרכז הערוץ. Zeynep et al. הציגו מכשיר מיקרופלואידי מבוסס DEP להפרדה וריכוז של תאי סרטן שד MCF7 מלוקוציטים27. הם דיווחו על יעילות של מיצוי תאי MCF7 מלוקוציטים בין 74%-98% עם תדר של 1 מגה-הרץ ומתח מופעל הנע בין 10-12 וולטלאדם. טבלה משלימה 1 מייצגת השוואה איכותית וכמותית בין התקני מיון מיקרופלואידיים מבוססי DEP בהתבסס על התכנון, תצורת האלקטרודות ופרמטרים התפעוליים שלהם (תדר ומתח מופעלים).

לאחרונה, חוקרים ניסו למדוד את ההבדלים בהתנהגות הדיאלקטרית של תאי אפיתל שד (MCF-10A) ותאי סרטן שד לא גרורתיים (MCF-7) בתוך שבב מיקרופלואידי28,29. Jithin et al. אפיינו גם את התגובות הדיאלקטריות של קווי תאים סרטניים שונים באמצעות טכניקת בדיקה קואקסיאלית פתוחה עם תדרים בין 200 MHz ל-13.6 GHz30. הבדלים אלה בתגובות הדיאלקטריות של קווי התאים MCF-7 ו-MCF-10A יכולים להיות מנוצלים כדי להפריד ביניהם בזמן ריצה ויכולים להוביל לפיתוח מכשירי אבחון מותאמים אישית בשלב מוקדם.

במאמר זה אנו מדמים מיון מבוקר של תאי סרטן שד שאינם גרורתיים (MCF-7) ותאי אפיתל שד שאינם סרטניים (MCF-10A) באמצעות דיאלקטרופורזה AC. אזור השינוי בשדה החשמלי משפיע על המיון בתוך השבב המיקרופלואידי. הטכניקה המוצעת קלה ליישום ומאפשרת שילוב של טכניקת המיון בפריסות שבבים מיקרופלואידיות שונות. סימולציות של דינמיקת נוזלים חישובית (CFD) בוצעו כדי לחקור את ההפרדה בין תאי סרטן שד שאינם גרורתיים לבין תאי אפיתל שדיים שאינם סרטניים על ידי שינוי המוליכות של המדיום הנוזלי שבו היו תלויים התאים. בסימולציות אלה ניתן לראות כי על ידי שמירה על מוליכות קבועה ועל ידי שינוי התדירות המיושמת, ניתן לשלוט בהפרדת תאים סרטניים ותאים בריאים.

Protocol

הערה: הפרוטוקול כאן משתמש ב- COMSOL, תוכנת סימולציה של מולטיפיזיקה, כדי לדמות מיון מבוקר של תאי סרטן שד שאינם גרורתיים (MCF-7) ותאי אפיתל שד שאינם סרטניים (MCF-10A) באמצעות דיאלקטרופורזה AC. 1. תכנון שבב ובחירת פרמטרים פתח את תוכנת המולטיפיזיקה ובחר מודל ריק. לחץ ?…

Representative Results

חקירת הפרמטרים התפעוליים האופטימליים למיון יעיל מבוסס DEP של סרטן שד לא גרורתי (MCF-7) ותאי אפיתל שד שאינם סרטניים (MCF-10A)כדי להשיג הפרדה מוצלחת של סרטן שד לא גרורתי (MCF-7) ותאי אפיתל שד שאינם סרטניים (MCF-10A) עם תכונות דיאלקטריות מסתעפות כאשר הם עוברים דיאלקטרופורזה, גורמי K שלהם צריכים ל?…

Discussion

התקנים מיקרופלואידיים דווחו בעבר עבור תרבית תאים, לכידה ומיון 47,52,53. הייצור של התקנים אלה בחדר הנקי הוא תהליך יקר, והכרחי לכמת את התפוקה והיעילות של התקן מיקרופלואידי מוצע באמצעות סימולציות CFD. מחקר זה מציג תכנון וסימולציות של מכשיר מיקרו?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מחקר זה נתמך על ידי הוועדה להשכלה גבוהה של פקיסטן.

Materials

COMSOL COMSOL multiphysics simulation software

References

  1. Liang, L., et al. Microfluidic-based cancer cell separation using active and passive mechanisms. Microfluidics and Nanofluidics. 24 (4), 26 (2020).
  2. Damiati, S., Kompella, U. B., Damiati, S. A., Kodzius, R. Microfluidic devices for drug delivery systems and drug screening. Genes. 9 (2), 103 (2018).
  3. Pashayan, N., et al. Personalized early detection and prevention of breast cancer: ENVISION consensus statement. Nature Reviews Clinical Oncology. 17 (11), 687-705 (2020).
  4. Panesar, S., Neethirajan, S. Microfluidics: Rapid diagnosis for breast cancer. Nano-micro Letters. 8 (3), 204-220 (2016).
  5. Chen, J., Li, J., Sun, Y. Microfluidic approaches for cancer cell detection, characterization and separation. Lab on a Chip. 12 (10), 1753-1767 (2012).
  6. Beech, J. P., Holm, S. H., Adolfsson, K., Tegenfeldt, J. O. Sorting cells by size, shape and deformability. Lab on a Chip. 12 (6), 1048-1051 (2012).
  7. Kang, Y., Li, D. Electrokinetic motion of particles and cells in microchannels. Microfluidics and Nanofluidics. 6 (4), 431-460 (2009).
  8. Schmid, L., Weitz, D. A., Franke, T. Acoustic microfluidic fluorescence-activated cell sorter. Lab on a Chip. 14 (19), 3710-3718 (2014).
  9. Yu, B. Y., Elbuken, C., Shen, C., Huissoon, J. P., Ren, C. L. An integrated microfluidic device for the sorting of yeast cells using image processing. Scientific Reports. 8, 3550 (2014).
  10. Asiaei, S., Darvishi, V., Davari, M. H., Zohrevandi, D., Moghadasi, H. Thermophoretic isolation of circulating tumor cells, numerical simulation and design of a microfluidic chip. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 137 (3), 831-839 (2019).
  11. Song, Y., Li, M., Pan, X., Wang, Q., Li, D. Size-based cell sorting with a resistive pulse sensor and an electromagnetic pump in a microfluidic chip. Electrophoresis. 36 (3), 398-404 (2014).
  12. Giraud, G., et al. Dielectrophoretic manipulation of ribosomal RNA. Biomicrofluidics. 5 (2), 024116 (2011).
  13. Valero, A., Braschler, T., Demierre, N., Renaud, P. A miniaturized continuous dielectrophoretic cell sorter and its applications. Biomicrofluidics. 4 (2), 022807 (2010).
  14. Allahrabbi, N., Chia, Y. S. M., Saifullah, M. S. M., Lim, K. M., Lanry Yung, L. Y. A hybrid dielectrophoretic system for trapping of microorganisms from water. Biomicrofluidics. 9 (3), 034110 (2015).
  15. Vykoukal, D. M., Gascoyne, P. R. C., Vykoukal, J. Dielectric characterization of complete mononuclear and polymorphonuclear blood cell subpopulations for label-free discrimination. Integrative Biology: Quantitative Biosciences from Nano to Macro. 1 (7), 477-484 (2009).
  16. Shim, S., et al. Antibody-independent isolation of circulating tumor cells by continuous-flow dielectrophoresis. Biomicrofluidics. 7 (1), 11807 (2013).
  17. Jeon, H. J., Lee, H., Yoon, D. S., Kim, B. M. Dielectrophoretic force measurement of red blood cells exposed to oxidative stress using optical tweezers and a microfluidic chip. Biomedical Engineering Letters. 7 (4), 317-323 (2017).
  18. Song, H., et al. Continuous-flow sorting of stem cells and differentiation products based on dielectrophoresis. Lab on a Chip. 15 (5), 1320-1328 (2015).
  19. Tsai, S. L., Chiang, Y., Wang, M. H., Chen, M. K., Jang, L. S. Battery-powered portable instrument system for single-cell trapping, impedance measurements, and modeling analyses. Electrophoresis. 35 (16), 2392-2400 (2014).
  20. Chan, J. Y., et al. Dielectrophoresis-based microfluidic platforms for cancer diagnostics. Biomicrofluidics. 12 (1), 011503 (2018).
  21. Patel, S., et al. Microfluidic separation of live and dead yeast cells using reservoir-based dielectrophoresis. Biomicrofluidics. 6 (3), 34102 (2012).
  22. Yildizhan, Y., Erdem, N., Islam, M., Martinez-Duarte, R., Elitas, M. Dielectrophoretic separation of live and dead monocytes using 3D carbon-electrodes. Sensors. 17 (11), 2691-2704 (2017).
  23. Piacentini, N., Mernier, G., Tornay, R., Renaud, P. Separation of platelets from other blood cells in continuous-flow by dielectrophoresis field-flow-fractionation. Biomicrofluidics. 5 (3), 34122 (2011).
  24. Zhao, K., Duncker, B. P., Li, D. Continuous cell characterization and separation by microfluidic alternating current dielectrophoresis. Analytical Chemistry. 91 (9), 6304-6314 (2019).
  25. Valero, A., et al. Tracking and synchronization of the yeast cell cycle using dielectrophoretic opacity. Lab on a Chip. 11 (10), 1754-1760 (2011).
  26. Demierre, N., Braschler, T., Muller, R., Renaud, P. Focusing and continuous separation Of cells in a microfluidic device using lateral dielectrophoresis. International Solid-State Sensors, Actuators and Microsystems Conference. 430 (98), 1777-1780 (2007).
  27. Arslan, Z. C., Yalçın, Y. D., Külah, H. Label-free enrichment of MCF7 breast cancer cells from leukocytes using continuous flow dielectrophoresis. Electrophoresis. 43 (13-14), 1531-1544 (2022).
  28. Turcan, I., Olariu, M. A. Dielectrophoretic manipulation of cancer cells and their electrical characterization. ACS Combinatorial Science. 22 (11), 554-578 (2020).
  29. Park, J., et al. Sequential cell-processing system by integrating hydrodynamic purification and dielectrophoretic trapping for analyses of suspended cancer cells. Micromachines. 11 (1), 47 (2020).
  30. Hussein, M., et al. Breast cancer cells exhibits specific dielectric signature in vitro using the open-ended coaxial probe technique from 200 MHz to 13.6 GHz. Scientific Reports. 9, 4681 (2019).
  31. Fornes-Leal, A., Garcia-Pardo, C., Frasson, M., Pons Beltrán, V., Cardona, N. Dielectric characterization of healthy and malignant colon tissues in the 0.5-18 GHz frequency band. Physics in Medicine and Biology. 61 (20), 7334-7346 (2016).
  32. Çetin, B., Li, D. Dielectrophoresis in microfluidics technology. Electrophoresis. 32 (18), 2410-2427 (2011).
  33. Khan, S., Khulief, Y. A., Al-Shuhail, A. A. Effects of reservoir size and boundary conditions on pore-pressure buildup and fault reactivation during CO2 injection in deep geological reservoirs. Environmental Earth Sciences. 79, 294 (2020).
  34. Adams, T. N. G., Turner, P. A., Janorkar, A. V., Zhao, F., Minerick, A. R. Characterizing the dielectric properties of human mesenchymal stem cellsand the effects of charged elastin-like polypeptide copolymer treatment. Biomicrofluidics. 8 (5), 054109 (2014).
  35. Lo, Y. J., et al. Measurement of the Clausius-Mossotti factor of generalized dielectrophoresis. Applied Physics Letters. 104, 083701 (2014).
  36. Lo, Y. J., Lei, U. Measurement of the real part of the Clausius-Mossotti factor of dielectrophoresis for Brownian particles. Electrophoresis. 41 (1), 137-147 (2020).
  37. Ohta, A. T., et al. Optically controlled cell discrimination and trapping using optoelectronic Tweezers. IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics. 13 (2), 235-242 (2007).
  38. Sun, T., Morgan, H. Single-cell microfluidic Impedance cytometry. Microfluidics and Nanofluidics. 8 (4), 423-443 (2010).
  39. Weng, P. Y., et al. Size-dependent dielectrophoretic cross-over frequency of spherical particles. Biomicrofluidics. 10 (1), 1909-1921 (2016).
  40. Lu, Y. W., Sun, C., Kao, Y. C., Hung, C. L., Juang, J. Y. Dielectrophoretic cross-over frequency of single particles: Quantifying the effect of surface functional groups and electrohydrodynamic flow drag force. Nanomaterials. 10 (7), 1364 (2020).
  41. Henslee, E. A., Sano, M. B., Rojas, A. D., Schmelz, E. M., Davalos, R. V. Selective concentration of human cancer cells using contactless dielectrophoresis. Electrophoresis. 32 (18), 2523-2529 (2011).
  42. Chan, J. Y., et al. Dielectrophoresis-based microfluidic platforms for cancer diagnostics. Biomicrofluidics. 12 (1), 11503-11525 (2018).
  43. Gascoyne, P. R. C., Shim, S. Isolation of circulating tumor cells by dielectrophoresis. Cancers. 6 (1), 545-579 (2014).
  44. Liang, W., et al. Determination of dielectric properties of cells using ac electrokinetic-based microfluidic platform. Micromachines. 11 (5), 513-537 (2020).
  45. Frusawa, H., et al. Frequency-modulated wave dielectrophoresis of vesicles and cells periodic U-turns at the crossover frequency. Nanoscale Research Letters. 13 (169), 2583-2589 (2018).
  46. Wei, M. T., Junio, J., Ou-Yang, D. H. Direct measurements of the frequency-dependent dielectrophoresis force. Biomicrofluidics. 3 (1), 12003 (2009).
  47. Mustafa, A., Pedone, E., Marucci, L., Moschou, D., Lorenzo, M. D. A flow-through microfluidic chip for continuous dielectrophoretic separation of viable and non-viable human T-cells. Electrophoresis. 43 (3), 501-508 (2021).
  48. Wang, L., et al. Dual frequency dielectrophoresis with interdigitated sidewall electrodes for microfluidic flow-through separation of beads and cells. Electrophoresis. 30 (5), 782-791 (2021).
  49. Alazzam, A., Mathew, B., Alhammadi, F. Novel microfluidic device for the continuous separation of cancer cells using dielectrophoresis. Journal of Separation Science. 40 (5), 1193-1200 (2017).
  50. Yang, L., Banada, P. P., Bhunia, A. K., Bashir, R. Effects of dielectrophoresis on growth viability and immuno-reactivity of listeria monocytogenes. Journal of Biological Engineering. 2, 6 (2008).
  51. Matbaechi, H., Soltani, P., Hölzel, R., Wenger, C. Dielectrophoretic immobilization of yeast cells using CMOS integrated microfluidics. Micromachines. 11 (5), 501-518 (2020).
  52. Mustafa, A., Pedone, E., La Regina, A., Erten, A. A., Marucci, L. Development of a single layer microfluidic device for dynamic stimulation, culture and imaging of mammalian cells. bioRxiv. , (2022).
  53. Mustafa, A., et al. Enhanced dissolution of liquid microdroplets in the extensional creeping flow of a hydrodynamic trap. Langmuir. 32 (37), 9460-9467 (2016).
  54. Chang, H. F., Chou, S. E., Cheng, J. Y. Electric-field-induced neural precursor cell differentiation in microfluidic devices. Journal of Visualized Experiments. (170), e61917 (2021).

Play Video

Cite This Article
ur Rehman, A., Zabibah, R. S., Kharratian, S., Mustafa, A. Microfluidic Device for the Separation of Non-Metastatic (MCF-7) and Non-Tumor (MCF-10A) Breast Cancer Cells Using AC Dielectrophoresis. J. Vis. Exp. (186), e63850, doi:10.3791/63850 (2022).

View Video