Summary

Yetişkin Sivrisineklerde Oral Beslenme ve Mikroenjeksiyon ile Deneysel Viral Enfeksiyon

Published: July 28, 2022
doi:

Summary

Oral beslenme ve intratorasik enjeksiyon enfeksiyonunu içeren bu metodoloji, midgut ve / veya tükürük bezi bariyerlerinin arbovirüs enfeksiyonu üzerindeki etkisini etkili bir şekilde değerlendirebilir.

Abstract

Omurgalılar için bulaşıcı patojenler olan sivrisinek kaynaklı virüsler (MBV’ler), birçok sivrisinek türü tarafından yayılmakta ve halk sağlığı için ciddi bir tehdit oluşturmaktadır. Yutulduktan sonra, virüsler potansiyel olarak tükürük bezlerine yayılabilecekleri hemolenfe ulaşmak için sivrisinek midgut bariyerinin üstesinden gelmelidir. Bir sivrisinek ısırdığında, bu virüsler yeni omurgalı konakçılara yayılır. Benzer şekilde, sivrisinek farklı virüsleri alabilir. Genel olarak, virüslerin sadece küçük bir kısmı tükürük bezlerine bağırsak yoluyla girebilir. Bu virüslerin bezlere bulaşma etkinliği, farklı sivrisinek türlerinde bulunan iki fiziksel bariyerden etkilenir: midgut bariyerleri ve tükürük bezleri bariyerleri. Bu protokol, Aedes aegypti’nin tükürük bezlerinde oral beslenme ve intratorasik enjeksiyon enfeksiyonunu takiben virüs tespiti için bir yöntem sunmaktadır. Ayrıca, bağırsakların ve / veya tükürük bezlerinin viral yayılmayı engelleyip engellemediğini belirlemek, Aedes aegypti tarafından iletilen MBV’lerin risk değerlendirmelerine yardımcı olabilir.

Introduction

Heterojen bir RNA virüsü grubu olan sivrisinek kaynaklı virüsler (MBV’ler), sivrisinek vektörlerinde kalabilir ve daha sonra omurgalı konakçılara yayılabilir1. Klinik olarak önemli MBV’ler büyük ölçüde Flaviviridae, Togaviridae, Reoviridae ve Peribunyavividae 2,3 olmak üzere dört virüs ailesine dağılmıştır. Son yıllarda, bu virüsler tüm dünyada rapor edilmiş ve halk sağlığı sorunlarına neden olmuştur. En iyi bilinen MBV’lerden biri olan Dang virüsü (DENV), son 20 yılda 100’den fazla ülkede en yaygın olarak ortaya çıkan veya yeniden ortaya çıkan arbovirüs haline gelmiştir4. İç kesimlerde Zika virüsünün (ZIKV) keşfinden bu yana, kıtanın hemen hemen tüm tropikal ve subtropikal ülkeleri ve bölgeleri insan ZIKV enfeksiyonlarını bildirmiştir5. Virüs bulaşma riskini değerlendirmek için son yıllarda yapılan çok sayıda çalışma, bu virüsler için sivrisinek vektör yeterliliğine odaklanmıştır 6,7. Sonuç olarak, vektör kaynaklı hastalıkları etkili bir şekilde önlemek ve kontrol etmek kritik öneme sahiptir.

Laboratuvarda en kolay yetiştirilen sivrisineklerden biri olan Aedes aegypti (Ae. aegypti), DENV, ZIKV, Chikungunya virüsü (CHIKV) ve sarı humma virüsünün (YFV)8 önemli bir vektörüdür. Uzun bir süre boyunca, Ae. aegypti sadece Afrika kıtasında ve Güneydoğu Asya’da bulundu, ancak son yıllarda neredeyse tüm kıtaları sömürgeleştirdi9. Dahası, Ae. aegypti’nin küresel bolluğu sürekli olarak büyümekte ve yüzyılın sonuna kadar tahminen% 20’lik bir artış göstermektedir10. Çin’de 2004’ten 2009’a kadar, daha yüksek günlük sıcaklıklar nedeniyle DENV için Ae ae. aegypti vektör yeterliliğinde belirgin bir artış oldu11. Ae. aegypti’nin patojenik vektör olarak statüsü Çin’de önemli ölçüde artmıştır. Sonuç olarak, bu zorlukları ele almak için, Ae. aegypti’nin virüsleri iletme vektör yeterliliğini araştırmak gerekir.

Bir hematofagus eklembacaklı olarak, dişi sivrisinek omurgalı bir konağın derisini deler ve kanla beslenir. Sivrisinekler zaman zaman virüs bulaşmış konakçılardan virüs alır ve daha sonra virüsleri yeni bir konakçıya aktarır. Bu nedenle, vektör yeterliliğini belirlemek için, sivrisinekler laboratuvar ortamında bir besleme sistemi aracılığıyla arbovirüsler içeren yapay bir kan unu ile beslenir12. Bireysel sivrisinekler, enfeksiyondan birkaç gün sonra kafalara, vücutlara ve tükürük salgılarına ayrılır. Virüs enfeksiyonunu, yayılımını ve bulaşma oranlarını ölçmek için, virüs titreleri kantitatif ters transkripsiyon PCR (qRT-PCR) veya plak testi ile tespit edilmiştir. Bununla birlikte, tüm sivrisinekler midgut enfeksiyonları ve kan beslemeyi takiben bir virüsü bir sonraki konakçıya aktarma kapasitesi geliştirmez. Patojenlerin vücuda nüfuz etmesini önleyen ve doğuştan gelen bağışıklıklarında hayati bir rol oynayan sivrisineklerin fizyolojik bariyerleri ile bağlantılıdır13. Midgut bariyerleri, özellikle midgut enfeksiyonu bariyeri (MIB) ve midgut kaçış bariyeri (MEB), virüsün vektörü sistemik olarak enfekte edip edemeyeceğini ve yayıldığı etkinliği etkiler. Tükürük bezi enfeksiyonu ve kaçış bariyerleri de sergileyen tükürük bezleri gibi diğer dokuların enfeksiyonlarının analizini engeller13,14. Vektördeki midgutların ve tükürük bezlerinin enfeksiyonunu daha iyi karakterize etmek için, Ae’de arbovirüsün oral beslenmesi ve intratorasik aşılaması için ayrıntılı bir protokol. aegypti burada sunulmuştur. Bu protokol, Aedes spp.’deki DENV ve ZIKV enfeksiyonu gibi çeşitli sivrisinek vektörlerinde ek arbovirüs enfeksiyonlarına uygulanabilir ve uygulanabilir bir prosedür olduğu kanıtlanabilir.

Protocol

1. Virüs ve sivrisineklerin hazırlanması Virüslerin hazırlanmasıNOT: Tüm süreçler biyogüvenlik seviye 2 (BSL-2) laboratuvarında gerçekleştirilmiştir. Kullanılan biyogüvenlik kontaminasyonu seviyesi, patojenin risk değerlendirmesi ve ülkelere ve bölgelere özgü düzenlemeler tarafından belirlenmelidir. İşlem bir biyogüvenlik kabininde yapılmalıdır.1 x 106 C6/36 hücrelerini bir T75 kültür şişesine aşılayın. Şişeyi,% 10 ısıyla inaktive …

Representative Results

Enfekte sivrisineklerde yapay kan besleme (viral son titre 6.4 x 106 PFU/mL idi) ve intratorasik enjeksiyon (viral doz 340 PFU idi) yoluyla EBIV dağılımını incelemek için, enfeksiyondan 10 gün sonra sivrisineklerin tükürük, kafa ve bağırsaklarındaki viral RNA’lar (dpi) belirlendi. Ae. aegypti için, intratorasik olarak aşılanmış dişi sivrisineklerin bağırsaklarındaki, kafalarındaki ve tükürüklerindeki EBIV virüs titresi, oral enfekte dişi…

Discussion

Bu yöntemin amacı, oral beslenme ve intratorasik aşılama yoluyla vektör yeterliliğini değerlendirerek sivrisinek kaynaklı bir virüsün kapsamlı bir risk değerlendirmesini sağlamaktır.

Oral beslenme deneyinde, engorged-sivrisineklerin toplanması ve operatörler için ciddi bir risk oluşturan yeni bir kaba aktarılması gerekir. Bunun nedeni, enfekte olmamış sivrisinekler de dahil olmak üzere herhangi bir sivrisineğin bir enfeksiyon kaynağı olabileceğidir1…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma Wuhan Bilim ve Teknoloji Planı Projesi (2018201261638501) tarafından desteklenmiştir.

Materials

Aedes aegypti  Rockefeller strain
Automated nucleic acid extraction system  NanoMagBio S-48
BHK-21 cells National Virus Resource Center, Wuhan Institute of Virology
Buckets
C6/36 cells  National Virus Resource Center, Wuhan Institute of Virology
Carbon dioxide spray gun  wuhan Yihong YHDFPCO2
Centrifugal machine Himac  CF16RN
CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System  Bio-Rad CFX96 Touch
Ebinur Lake virus Cu20-XJ isolation
Formaldehyde  Wuhan Baiqiandu B0003
Glove box 
Glucose Hushi 10010518
Immersion oil  Cargille 16908-1
Insect incubator Memmert HPP750T7
Low Temperature Tissue Homogenizer Grinding Machine  Servicebio KZ-III-F
Magnetic Virus Genome Extraction Kit NanoMagBio NMG0966-16
mesh cages (30 x 30 x 30 cm) Huayu HY-35
methylcellulose Calbiochem 17851
mice feedstuff powder  BESSN BS018
Microelectrode Puller WPI PUL-1000 PUL-1000 is a microprocessor controlled horizontal puller for making glass micropipettes or microelectrodes used in intracellular recording, patch clamp studies, microperfusion or microinjection.
Mosquito net meshes 
Nanoject III Programmable Nanoliter Injector Drummond 3-000-207
One Step TB Green PrimeScript PLUS RT-PCR Kit  Takara RR096A
PBS, pH 7.4 Gibco C10010500BT
Penicillin/streptomycin Gibco 151140-122
Petri dishes 
Plastic cupes (7 oz)  Hubei Duoanduo
Plastic cups (24 oz)  Anhui shangji PET32-Tub-1
Plastic disposable droppers Biosharp BS-XG-O3L-NS
Refrigerator (-80 °C) sanyo MDF-U54V
Replacement Glass Capillaries Drummond 3-000-203-G/X
RPMI medium 1640  Gibco C11875500BT
Screw cap storage tubes (2 mL ) biofil  FCT010005
Shallow dishes 
Sponge
Sterile defibrillated horse blood Wuhan Purity Biotechnology CDHXB413
T75 culture flask Corning 430829
The artificial mosquito feeding system  Hemotek Hemotek PS6
The dissecting microscope  ZEISS  stemi508
The ice plates
The mosquito absorbing machine  Ningbo Bangning
The pipette tips  Axygen TF
Trypsin-EDTA (0.25%) Gibco 25200056
Tweezers Dumont 0203-5-PO

References

  1. Yu, X., Zhu, Y., Xiao, X., Wang, P., Cheng, G. Progress towards Understanding the Mosquito-Borne Virus Life Cycle. Trends in Parasitology. 35 (12), 1009-1017 (2019).
  2. Sukhralia, S., et al. From dengue to Zika: the wide spread of mosquito-borne arboviruses. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 38 (1), 3-14 (2019).
  3. Kuhn, J. H., et al. Taxonomic update of phylum Negarnaviricota (Riboviria: Orthornavirae), including the large orders Bunyavirales and Mononegavirales. Archives of Virology. 166 (12), 3513-3566 (2021).
  4. Bhatt, S., et al. The global distribution and burden of dengue. Nature. 496 (7446), 504-507 (2013).
  5. Kindhauser, M. K., Allen, T., Frank, V., Santhana, R. S., Dye, C. Zika: the origin and spread of a mosquito-borne virus. Bull World Health Organ. 94 (9), 675-686 (2016).
  6. Wei, Y., et al. Vector Competence for DENV-2 Among Aedes albopictus (Diptera: Culicidae) Populations in China. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 11, (2021).
  7. Morales-Vargas, R. E., Misse, D., Chavez, I. F., Kittayapong, P. Vector Competence for Dengue-2 Viruses Isolated from Patients with Different Disease Severity. Pathogens. 9 (10), (2020).
  8. Naslund, J., et al. Emerging Mosquito-Borne Viruses Linked to Aedes aegypti and Aedes albopictus: Global Status and Preventive Strategies. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. 21 (10), 731-746 (2021).
  9. Lwande, O. W., et al. Globe-Trotting Aedes aegypti and Aedes albopictus: Risk Factors for Arbovirus Pandemics. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. 20 (2), 71-81 (2020).
  10. Liu-Helmersson, J., Brannstrom, A., Sewe, M. O., Semenza, J. C., Rocklov, J. Estimating Past, Present, and Future Trends in the Global Distribution and Abundance of the Arbovirus Vector Aedes aegypti Under Climate Change Scenarios. Fronters in Public Health. 7, 148 (2019).
  11. Cai, W., et al. The 2021 China report of the Lancet Countdown on health and climate change: seizing the window of opportunity. Lancet Public Health. 6 (12), 932-947 (2021).
  12. Chan, K. K., Auguste, A. J., Brewster, C. C., Paulson, S. L. Vector competence of Virginia mosquitoes for Zika and Cache Valley viruses. Parasites & Vectors. 13 (1), 188 (2020).
  13. Kumar, A., et al. Mosquito Innate Immunity. Insects. 9 (3), (2018).
  14. Franz, A. W., Kantor, A. M., Passarelli, A. L., Clem, R. J. Tissue Barriers to Arbovirus Infection in Mosquitoes. Viruses. 7 (7), 3741-3767 (2015).
  15. Xia, H., et al. Characterization of Ebinur Lake Virus and Its Human Seroprevalence at the China-Kazakhstan Border. Frontiers in Microbiology. 10, (2020).
  16. Baer, A., Kehn-Hall, K. Viral Concentration Determination Through Plaque Assays: Using Traditional and Novel Overlay Systems. Jove-Journal of Visualized Experiments. (93), e52065 (2014).
  17. Xu, M. Y., Liu, S. Q., Deng, C. L., Zhang, Q. Y., Zhang, B. Detection of Zika virus by SYBR green one-step real-time RT-PCR. Journal of Virological Methods. 236, 93-97 (2016).
  18. Yang, C., et al. Vector competence and transcriptional response of Aedes aegypti for Ebinur Lake virus, a newly mosquito-borne orthobunyavirus. bioRxiv. , (2022).
  19. Britton, S., et al. Laboratory-acquired dengue virus infection–a case report. PLOS Neglected Tropical Diseases. 5 (11), 1324 (2011).
  20. Weger-Lucarelli, J., et al. Vector Competence of American Mosquitoes for Three Strains of Zika Virus. PLOS Neglected Tropical Diseases. 10 (10), 0005101 (2016).
  21. Elizondo-Quiroga, D., et al. Vector competence of Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus from the metropolitan area of Guadalajara, Jalisco, Mexico for Zika virus. Scientific reports. 9 (1), 16955 (2019).

Play Video

Cite This Article
Wang, F., Yang, C., Wang, S., Wu, Q., Ochieng, C., Yuan, Z., Xia, H. Experimental Viral Infection in Adult Mosquitoes by Oral Feeding and Microinjection. J. Vis. Exp. (185), e63830, doi:10.3791/63830 (2022).

View Video