Summary

نهج قائم على قياس الطيف الكتلي لتحديد فوسفاتيز فوسفوبروتين وتفاعلاتها

Published: April 29, 2022
doi:

Summary

هنا ، نقدم بروتوكولا لإثراء فوسفاتيز البروتين الفوسفوبروتين الداخلي المنشأ وبروتيناتها المتفاعلة من الخلايا والأنسجة وتحديدها وتحديدها كميا بواسطة البروتيوميات القائمة على قياس الطيف الكتلي.

Abstract

يتم تنظيم معظم العمليات الخلوية عن طريق فسفرة البروتين الديناميكية. أكثر من ثلاثة أرباع البروتينات مفسفرة ، وفوسفاتيز البروتين الفوسفوبروتيني (PPPs) تنسق أكثر من 90٪ من جميع عمليات إزالة الفوسفور الخلوية من السيرين / الثريونين. وقد تورط تحرير فسفرة البروتين في الفيزيولوجيا المرضية لمختلف الأمراض، بما في ذلك السرطان والتنكس العصبي. وعلى الرغم من نشاطها الواسع النطاق، فإن الآليات الجزيئية التي تتحكم في الشراكات بين القطاعين العام والخاص وتلك التي تسيطر عليها الشراكات بين القطاعين العام والخاص لا تتسم بخصائص كافية. هنا ، يتم وصف نهج بروتيني يسمى حبات مثبطات الفوسفاتيز وقياس الطيف الكتلي (PIB-MS) لتحديد وقياس PPPs ، وتعديلاتها بعد الترجمة ، ومفاعلاتها المتفاعلة في أقل من 12 ساعة باستخدام أي خط خلية أو أنسجة. يستخدم PIB-MS مثبطا غير انتقائي لتعادل القوة الشرائية ، microcystin-LR (MCLR) ، مثبتا على حبات السيفاروز لالتقاط وإثراء PPPpps الذاتية المنشأ والبروتينات المرتبطة بها (تسمى PPPome). لا تتطلب هذه الطريقة التعبير الخارجي للإصدارات الموسومة من PPPs أو استخدام أجسام مضادة محددة. يقدم PIB-MS طريقة مبتكرة لدراسة الشراكات بين القطاعين العام والخاص المحفوظة تطوريا وتوسيع فهمنا الحالي لإشارات إزالة الفسفرة.

Introduction

تتحكم فسفرة البروتين في معظم العمليات الخلوية ، بما في ذلك على سبيل المثال لا الحصر الاستجابة لتلف الحمض النووي ، وإشارات عامل النمو ، والمرور عبر الانقسام1،2،3. في خلايا الثدييات ، يتم فسفوريلات غالبية البروتينات في واحد أو أكثر من بقايا سيرين أو ثريونين أو التيروزين في وقت ما ، مع فوسفوسرين وفوسفوثريونين يشكلون حوالي 98 ٪ من جميع مواقع الفسفرة 2,3. في حين تمت دراسة الكينازات على نطاق واسع في الإشارات الخلوية ، فإن دور الشراكات بين القطاعين العام والخاص في تنظيم العمليات الخلوية الديناميكية لا يزال ناشئا.

يتم التحكم في ديناميكيات الفسفرة من خلال التفاعل الديناميكي بين الكينازات والفوسفاتيز. في خلايا الثدييات ، هناك أكثر من 400 كيناز بروتين يحفز فسفرة سيرين / ثريونين. أكثر من 90٪ من هذه المواقع يتم نزع الفوسفوريلات بواسطة فوسفاتيز البروتين الفوسفوبروتيني (PPPs) ، وهي عائلة صغيرة من الإنزيمات التي تتكون من PP1 و PP2A و PP2B و PP4-7 و PPT و PPZ 2,3. PP1 و PP2A مسؤولان عن غالبية إزالة الفوسفوسرين والفوسفوثريونين داخل الخلية2،3،4. أدى الاختلاف الملحوظ في العدد بين الكينازات والفوسفاتيز وعدم خصوصية الوحدات الفرعية الحفازة PPP في المختبر إلى الاعتقاد بأن الكينازات هي المحدد الرئيسي للفسفرة 2,3. ومع ذلك ، فقد أظهرت دراسات متعددة أن الفوسفاتيز يؤسس خصوصية الركيزة من خلال تكوين إنزيمات هولو متعددة الميريك5،6،7،8،9. على سبيل المثال ، PP1 هو غير متجانس يتكون من وحدة فرعية حفازة ، وفي وقت معين ، واحد من أكثر من 150 وحدة فرعية تنظيمية 6,7,8. على العكس من ذلك ، PP2A هو متغاير يتكون من سقالات (A) ، ووحدة تنظيمية (B) ، ووحدة فرعية حفازة (C) 2,3,9. هناك أربع عائلات متميزة من الوحدات الفرعية التنظيمية PP2A (B55 و B56 و PR72 و striatin) ، لكل منها جينات متعددة ، ومتغيرات الربط ، وأنماط التوطين2،3،9. وتسد الطبيعة المتعددة للشراكات بين القطاعين العام والخاص الفجوة في عدد الكينازات والوحدات الفرعية الحفازة لتعادل القوة الشرائية. ومع ذلك ، فإنه يخلق تحديات تحليلية لدراسة إشارات الشراكة بين القطاعين العام والخاص. لتحليل إشارات PPP بشكل شامل ، من الأهمية بمكان التحقيق في مختلف الإنزيمات الهولونية داخل الخلية أو الأنسجة. تم إحراز تقدم كبير في دراسة الكينومي البشري من خلال استخدام حبات مثبطات الكيناز ، التي يطلق عليها اسم حبات مثبطات الإرسال المتعددة أو الخرز ، وهي استراتيجية بروتينية كيميائية حيث يتم تجميد مثبطات الكيناز على الخرز ويستخدم قياس الطيف الكتلي لتحديد الكينازات المخصبة وتفاعلها10،11،12،13.

لقد أنشأنا نهجا مشابها لدراسة بيولوجيا الشراكة بين القطاعين العام والخاص. تتضمن هذه التقنية التقاط التقارب للوحدات الفرعية الحفازة PPP باستخدام الخرز مع مثبط PPP غير انتقائي غير متحرك يسمى microcystin-LR (MCLR) يسمى حبات مثبطات الفوسفاتيز (PIBs) 14,15. على عكس الطرق الأخرى التي تتطلب وضع علامات داخلية أو التعبير عن الوحدات الفرعية لتعادل القوة الشرائية الخارجية التي يمكن أن تغير نشاط البروتين أو توطينه ، يسمح PIB-MS بإثراء الوحدات الفرعية المحفزة لتعادل القوة الشرائية الذاتية المنشأ ، والوحدات الفرعية التنظيمية والسقالات المرتبطة بها ، والبروتينات المتفاعلة (تسمى PPPome) من الخلايا والأنسجة في نقطة زمنية معينة أو في ظل ظروف علاج محددة. يمنع MCLR PP1 و PP2A و PP4-6 و PPT و PPZ بتركيزات نانومولية ، مما يجعل PIBs فعالة للغاية في إثراء PPPome16. يمكن تحجيم هذه الطريقة لاستخدامها على أي مادة أولية من الخلايا إلى العينات السريرية. هنا ، نصف بالتفصيل استخدام PIBs وقياس الطيف الكتلي (PIB-MS) لالتقاط وتحديد وقياس PPPome الداخلي وحالات تعديله بكفاءة.

Figure 1
الشكل 1: ملخص مرئي لبروتوكول PIB-MS. في تجربة PIB-MS ، يمكن الحصول على عينات بأشكال مختلفة ، من الخلايا إلى الأورام. يتم جمع العينة وتحليلها وتجانسها قبل إثراء تعادل القوة الشرائية. للإثراء من أجل الشراكات بين القطاعين العام والخاص، يتم احتضان الليزات مع PIBs مع أو بدون مثبط PPP، مثل MCLR. ثم يتم غسل PIBs ، ويتم التخلص من PPPs في ظروف تمسخ. يتم إعداد العينات لتحليل الطيف الكتلي عن طريق إزالة المنظفات من خلال إثراء البروتين SP3 ، والهضم التربتيكي ، وإزالة الملح. يمكن بعد ذلك وضع علامة TMT اختياريا على العينات قبل تحليل مطياف الكتلة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

يتضمن PIB-MS تحلل وتوضيح الخلايا أو الأنسجة ، وحضانة الليزات باستخدام PIBs ، والاستخلاص ، وتحليل اللوات عبر النشاف الغربي أو النهج القائمة على قياس الطيف الكتلي (الشكل 1). يمكن استخدام إضافة MCLR المجاني كعنصر تحكم لتمييز روابط PIB المحددة عن الجهات الفاعلة غير المحددة. بالنسبة لمعظم التطبيقات ، يمكن استخدام نهج خال من الملصقات لتحديد البروتينات مباشرة في المراوغة. وفي الحالات التي تكون فيها هناك حاجة إلى مزيد من الدقة في التحديد الكمي أو تحديد الأنواع منخفضة الوفرة، يمكن استخدام مزيد من المعالجة باستخدام وسم العلامات الجماعية الترادفية (TMT) لزيادة التغطية وتقليل المدخلات.

Protocol

ملاحظة: يتم توليد PIBs كما هو موضح من قبل Moorhead et al. ، حيث يقترن 1 ملغ من microcystin وحوالي 6 مل من sepharose لتوليد PIBs بقدرة ربط تصل إلى 5 mg / mL17. 1. إعداد العينات ملاحظة: كمية البدء النموذجية ل PIB-MS هي 1 ملغ من البروتين الكلي لكل حالة. في هذه التجربة ، تم استخ?…

Representative Results

الشكل 2: تحديد روابط PIBs محددة . (أ) يمكن تحليل مجموعة متنوعة من أنواع الأنسجة أو الخلايا عبر PIB-MS. تمت معالجة خلايا HeLa في الثلاثي البيولوجي إما باستخدام DMSO أو MCLR المثبط ل PPP ، وت…

Discussion

PIB-MS هو نهج بروتينات كيميائية يستخدم لتحديد ملامح PPPome كميا من مصادر عينة مختلفة في تحليل واحد. تم القيام بالكثير من العمل باستخدام حبات مثبطات كيناز لدراسة الكينوم وكيف يتغير في السرطان والحالات المرضية الأخرى10،11،12،13.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تعترف A.N.K. بالدعم المقدم من NIH R33 CA225458 و R35 GM119455. نشكر مختبري Kettenbach و Gerber على مناقشتهما المفيدة.

Materials

Acetonitrile (ACN) Honeywell AH015-4 CAUTION: ACN is flammable and toxic; wear gloves, and work in a chemical fume hood.
Anhydrous Acetonitrile Sigma-Aldrich 271004-100ML CAUTION: ACN is flammable and toxic; wear gloves, and work in a chemical fume hood.
Benchtop centrifuge Eppendorf model no. 5424
Beta-glycerophosphoric acid, disodium salt pentahydrate Acros Organics 410991000
Centrifuge Eppendorf model no. 5810 R 15 amp version
Distilled water
DMSO Fisher Scientific BP231-100
Dounce tissue grinder Fisherbrand Pellet Pestles 12-141-363
Empore solid phase extraction disk, C18 CDS Analytical 76333-132
Eppendorf tubes, 1.5 mL Eppendorf 22363204 CRITICAL: Other tubes may leach polymer into sample, contaminating the analysis.
Eppendorf tubes, 2 mL Eppendorf 22363352 CRITICAL: Other tubes may leach polymer into sample, contaminating the analysis.
Extraction plate manifold Waters WAT097944
Falcon tubes, 50 mL VWR 21008
Generic blunt end needle and plunger
Generic magnetic separation rack
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Hydrogen chloride (HCl) VWR Chemicals BDH BDH3028 CAUTION: HCl is corrosive; wear gloves and work in a chemical fume hood.
Hydroxylamine solution 50% (wt/vol) Sigma-Aldrich 467804
Incubator, 65 °C VWR model no. 1380FM
Koptec Pure Ethanol, 200 Proof Decon Labs V1001
Methanol for HPLC (MeOH) Sigma-Aldrich 34860-4L-R CAUTION: MeOH is flammable and toxic; wear gloves, and work in a chemical fume hood.
Microcystin LR (MCLR) Cayman Chemical 10007188 CAUTION: MCLR is toxic; wear gloves when handling and avoid skin contact.
PBS, 1× without calcium and magnesium, pH 7.4 ± 0.1 Corning  21-040-CV
pH test strips, such as MilliporeSigma MColorpHast pH test strips and indicator papers Fisher Scientific M1095310001
PIBs For protocol for the generation of PIBs, see Moorhead et al., 2007.
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Scientific 23225
Pipette tips, 10 μL Eppendorf 22491504 CRITICAL: Other tips may leach polymer into samples, contaminating the analysis.
Pipette tips, 1000 μL Eppendorf 22491555 CRITICAL: Other tips may leach polymer into samples, contaminating the analysis.
Pipette tips, 200 μL Eppendorf 22491539 CRITICAL: Other tips may leach polymer into samples, contaminating the analysis.
plastic syringe, 10 mL BD 309604
Protease inhibitor cocktail III Research Products International P50700-1
Q Exactive Plus Hybrid Quadrupole-Orbitrap Mass Spectrometer, Oribtrap Fusion, Orbitrap Fusion Lumos, or Orbitrap Eclipse Tribrid Mass Spectrometer  Thermo Scientific
Refrigerated benchtop centrifuge Eppendorf model no. 5424 R
Rotator (Labquake Shaker Rotisserie) Thermo Scientific 13-687-12Q 8 rpm rotation
Sample collection plate, 96- well, 1 mL Waters WAT058957
SDS Fisher Scientific BP1311-1
Sequencing grade modified trypsin Promega V511C
Sodium azide EMD Chemicals SX0299-1 CAUTION: Sodium azide is explosive and toxic; wear gloves, work in a chemical fume hood and avoid contact with metals.
Sodium chloride (NaCl) Fisher Chemical S27110
Sonicator (Branson digital sonifier) model no. SFX 250
SPE C18 desalting plate Waters 186001828BA
SpeedBeads magnetic carboxylate modified particles (SP3 beads) Cytiva 6.51521E+13
Thermomixer Eppendorf model no. 5350
TMT10plex Isobaric Label Reagent Set plus TMT11-131C Label Reagent, 3 × 0.8 mg per tag ThermoFisher A37725
Trifluoroacetic acid (TFA) Honeywell T6508-25ML CAUTION: TFA is corrosive and will irritate skin on contact. Wear gloves and eye protection, and work in a chemical fume hood.
Tris Base Research Products International T60040
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284
Vacuum centrifuge and vapor trap Thermo Scientific model nos. SpeedVac SPD120 and RVT5105
Vortexer (Vortex-Genie 2) Scientific Industries
Water LC-MS Honeywell LC365-4

References

  1. Nilsson, J. Protein phosphatases in the regulation of mitosis. Journal of Cell Biology. 218 (2), 395-409 (2019).
  2. Brautigan, D. L. Protein Ser/Thr phosphatases–the ugly ducklings of cell signalling. The FEBS Journal. 280 (2), 324-345 (2013).
  3. Brautigan, D. L., Shenolikar, S. Protein serine/threonine phosphatases: keys to unlocking regulators and substrates. Annual Review of Biochemistry. 87, 921-964 (2018).
  4. Janssens, V., Goris, J. Protein phosphatase 2A: A highly regulated family of serine/threonine phosphatases implicated in cell growth and signalling. Biochemical Journal. 353, 417-439 (2001).
  5. Virshup, D. M., Shenolikar, S. From promiscuity to precision: protein phosphatases get a makeover. Molecular Cell. 33 (5), 537-545 (2009).
  6. Bollen, M., Peti, W., Ragusa, M. J., Beullens, M. The extended PP1 toolkit: designed to create specificity. Trends in Biochemical Sciences. 35 (8), 450-458 (2010).
  7. Qian, J., Winkler, C., Bollen, M. 4D-networking by mitotic phosphatases. Current Opinion in Cell Biology. 25 (6), 697-703 (2013).
  8. Heroes, E., et al. The PP1 binding code: a molecular-lego strategy that governs specificity. The FEBS Journal. 280 (2), 584-595 (2013).
  9. Eichhorn, P. J., Creyghton, M. P., Bernards, R. Protein phosphatase 2A regulatory subunits and cancer. Biochimica et Biophysica Acta. 1795 (1), 1-15 (2009).
  10. Bantscheff, M., et al. Quantitative chemical proteomics reveals mechanisms of action of clinical ABL kinase inhibitors. Nature Biotechnology. 25 (9), 1035-1044 (2007).
  11. Klaeger, S., et al. Chemical proteomics reveals ferrochelatase as a common off-target of kinase inhibitors. ACS Chemical Biology. 11 (5), 1245-1254 (2016).
  12. Duncan, J. S., et al. Dynamic reprogramming of the kinome in response to targeted MEK inhibition in triple-negative breast cancer. Cell. 149 (2), 307-321 (2012).
  13. Cooper, M. J., et al. Application of multiplexed kinase inhibitor beads to study kinome adaptations in drug-resistant leukemia. PLoS ONE. 8 (6), 66755 (2013).
  14. Lyons, S. P., et al. A quantitative chemical proteomic strategy for profiling phosphoprotein phosphatases from yeast to humans. Molecular and Cellular Proteomics. 17 (12), 2448-2461 (2018).
  15. Nasa, I., et al. Quantitative kinase and phosphatase profiling reveal that CDK1 phosphorylates PP2Ac to promote mitotic entry. Science Signaling. 13 (648), (2020).
  16. Swingle, M., Ni, L., Honkanen, R. E. Small-molecule inhibitors of ser/thr protein phosphatases: specificity, use and common forms of abuse. Methods in Molecular Biology. 365, 23-38 (2007).
  17. Moorhead, G. B. G., Haystead, T. A. J., MacKintosh, C. Synthesis and use of the protein phosphatase affinity matrices microcystin-sepharose and microcystin-biotin-sepharose. Methods in Molecular Biology. 365, 39-45 (2007).
  18. Brauer, B. L., Wiredu, K., Mitchell, S., Moorhead, G. B., Gerber, S. A., Kettenbach, A. N. Affinity-based profiling of endogenous phosphoprotein phosphatases by mass spectrometry. Nature Protocols. 16 (10), 4919-4943 (2021).
  19. Hughes, C. S., Moggridge, S., Müller, T., Sorensen, P. H., Morin, G. B., Krijgsveld, J. Single-pot, solid-phase-enhanced sample preparation for proteomics experiments. Nature Protocols. 14 (1), 68-85 (2019).
  20. Rappsilber, J., Mann, M., Ishihama, Y. Protocol for micro-purification, enrichment, pre-fractionation and storage of peptides for proteomics using StageTips. Nature Protocols. 2 (8), 1896-1906 (2007).
  21. Zecha, J., et al. TMT labeling for the masses: A robust and cost-efficient, in-solution labeling approach. Molecular and Cellular Proteomics. 18 (7), 1468-1478 (2019).
  22. Elias, J. E., Gygi, S. P. Target-decoy search strategy for increased confidence in large-scale protein identifications by mass spectrometry. Nature Methods. 4 (3), 207-214 (2007).
  23. Eng, J. K., Jahan, T. A., Hoopmann, M. R. Comet: an open-source MS/MS sequence database search tool. Proteomics. 13 (1), 22-24 (2013).
  24. Tyanova, S., et al. The Perseus computational platform for comprehensive analysis of (prote)omics data. Nature Methods. 13 (9), 731-740 (2016).
  25. Yu, S. H., Ferretti, D., Schessner, J. P., Rudolph, J. D., Borner, G. H. H., Cox, J. Expanding the Perseus software for omics data analysis With custom plugins. Current Protocols in Bioinformatics. 71 (1), 1-29 (2020).

Play Video

Cite This Article
Smolen, K. A., Kettenbach, A. N. A Mass Spectrometry-Based Approach to Identify Phosphoprotein Phosphatases and their Interactors. J. Vis. Exp. (182), e63805, doi:10.3791/63805 (2022).

View Video