O presente protocolo descreve modificações do microscópio eletrônico de transmissão (MET) com um sistema de iluminação de luz, a fabricação de células líquidas e observações in situ de TEM de interações induzidas pela luz entre células bacterianas e um fotossensibilizador. Os métodos de preparação da amostra, os danos causados pelo feixe de elétrons e as imagens também são discutidos.
O protocolo atual descreve as modificações da configuração do microscópio eletrônico de transmissão (MET) para observações induzidas pela luz in situ . Uma fibra óptica de vidro inserida na coluna de elétrons acima do polo da lente objetiva e um laser, uma fonte de luz ajustável, foram usados para fabricar o dispositivo. Depois que o iluminador foi calibrado usando um sistema de medição externo, ele permite ajustar a intensidade da iluminação às necessidades do processo observado. Este sistema de iluminação foi utilizado para visualizar fenômenos de terapia fotodinâmica antimicrobiana, que atualmente são objeto de intensa pesquisa. A amostra foi preparada detectando uma suspensão de bactérias em um substrato de carbono, grafeno ou nitreto de silício, borrando o excesso de solução, detectando a solução fotossensibilizadora, borrando o excesso de líquido novamente e, em seguida, montando a célula líquida com um segundo substrato ou filme de grafeno. O processo do experimento de imagem em si inclui a escolha do local certo para a observação com o uso de baixa ampliação e uma dose mínima de elétrons e, em seguida, a ativação cíclica da fonte de luz para capturar imagens subsequentes em intervalos especificados com a quantidade mínima de elétrons necessária. A dose de elétrons de cada exposição e o tempo e a intensidade da iluminação usada precisam ser cuidadosamente registrados devido à complexidade dos fenômenos observados, pois, ao mesmo tempo, o processo é impulsionado pela luz e pelo elétron. Depois que o experimento real é realizado, observações de controle adicionais devem ser feitas, nas quais as mesmas doses de elétrons são usadas, mas sem influência adicional da luz e doses menores de elétrons são usadas para doses mais altas de luz. Isso torna possível distinguir os efeitos microestruturais induzidos pela luz daqueles causados por elétrons nos campos da vida e da ciência dos materiais.
Fenômenos induzidos pela luz em alta resolução são interessantes em muitos campos, como nanoengenharia 1,2,3, catálise 4,5 e biofotônica6. Alguns desenhos originais que permitem tais experimentos podem ser encontrados na literatura, incluindo modificações dos suportes amostrais 1,4,7,8,9 e da fibra óptica acoplada ao microscópio 10,11.
A combinação de iluminação de luz, um ambiente líquido e microscopia eletrônica de transmissão (MET) oferece uma grande oportunidade para estudos detalhados e dinâmicos de processos fotoinduzidos. No entanto, a condição de alto vácuo dentro do microscópio é bastante desfavorável para muitos líquidos, especialmente soluções de água. O encapsulamento líquido, que o protege do meio ambiente, pode ser alcançado usando algumas técnicas baseadas principalmente em substratos de grafeno 12, nitreto de silício13 ou carbono14. Além das pesquisas em ciência dos materiais2, as chamadas células líquidas oferecem possibilidades para a realização de observações microscópicas não convencionais em espécimes biológicos próximos às suas condições nativas15. Tais observações são extremamente exigentes, especialmente para microrganismos vivos, como células bacterianas. O feixe de elétrons como radiação ionizante causa danos irreversíveis aos corpos de prova hidratados, de modo que a dose de elétrons deve ser especificada16. Isso é necessário para minimizar os efeitos desfavoráveis, controlar os danos e evitar artefatos confusos. A dose máxima ideal de elétrons que permite observações de células vivas ainda é um tópico questionável16, mas a dose de 30 e−/nm2 parece ser o valor limiar, pelo menos para as bactérias17.
Alguns dos assuntos de interesse para tais estudos microscópicos são processos durante a terapia fotodinâmica antimicrobiana (TAPA)18. Em suma, a terapia prossegue da seguinte forma. As células bacterianas são cercadas pelo líquido fotossensível chamado fotossensibilizador. Quando a iluminação da luz é dada em um comprimento de onda específico, as espécies citotóxicas reativas de oxigênio (ROS) são geradas a partir da transferência de energia ou carga das moléculas fotossensibilizadoras excitadas para o oxigênio naturalmente presente na solução. Patógenos expostos a ERO são rapidamente inativados com altíssima eficiência, sem efeitos colaterais19. A resposta à terapia varia para micróbios distintos – por exemplo, o impacto do mesmo fotossensibilizador pode ser bastante diferente para bactérias Gram-positivas e Gram-negativas20. Em geral, estabeleceu-se que o principal alvo das ERO são as estruturas externas das células, onde o dano resulta em distúrbios funcionais da membrana celular e, consequentemente, leva à morte de bactérias21,22. No entanto, danos aos ácidos nucleicos e proteínas também podem ser considerados uma causa de inativação18, por isso ainda não se sabe quais estruturas celulares são os principais alvos durante esse processo19. Uma compreensão mais profunda dos processos prejudiciais poderia ajudar a melhorar esta terapia definitiva. Em comparação com os métodos de microscopia de luz utilizados na pesquisa de APDT23, as técnicas de MET dão mais possibilidades de olhar para o mecanismo de APDT com maior resolução e ampliação24. O ETEM já foi utilizado com sucesso para observação celular durante a terapia em curso, o que nos permitiu estudar os danos bacterianos Gram-positivos e descrever detalhadamente as alterações ocorridas dentro da parede celular 6,25.
O protocolo atual apresenta uma configuração experimental adequada para imagens de alta resolução de inativação de bactérias induzidas por luz usando TEM, que requer um sistema adequado de iluminação de luz, o encapsulamento de células com um líquido e um rigoroso controle de dose de elétrons. A bactéria utilizada para a observação foi Staphylococcus aureus, e uma solução de azul de metileno foi utilizada como fotossensibilizador. A configuração especial de iluminação de luz compreende um laser semicondutor ajustável conectado diretamente à coluna do microscópio usando a fibra de luz. Este projeto fornece irradiação uniforme em toda a amostra devido à colocação quase paralela da fibra óptica ao eixo do microscópio. A luz monocromática de alta intensidade gerada pelo laser pode então ser usada para estudar vários efeitos fotoquímicos. A luz utilizada no experimento apresentou comprimento de onda igual a 660 nm, pois, na região visível, o azul de metileno apresenta picos de absorção de 613 nm e 664 nm26. O protocolo para encapsulamento de líquidos é baseado em substratos de carbono, o que torna o procedimento rápido e descomplicado. Finalmente, um método para observação de TEM in situ de baixa dose de células em líquido é apresentado. As dificuldades em relação à preparação da amostra, os efeitos da dose de elétrons sobre a amostra sensível e a interpretação razoável da imagem são discutidos.
A instalação e o comissionamento do iluminador exigem conhecimento básico de serviço e podem danificar o microscópio. A maneira mais simples de introduzir a luz no microscópio é conectar a fibra óptica a partir do topo da lente objetiva, onde geralmente há espaço para as bobinas de deflexão TEM e detectores adicionais. Mais espaço livre também pode ser esperado de dispositivos de entrada superior mais antigos, onde o mesmo local abriga a trava de vácuo da amostra e o mecanismo de instalação da amostra. Es…
The authors have nothing to disclose.
A pesquisa foi apoiada pela bolsa Miniatura (2019/03/X/NZ3/02100, Centro Nacional de Ciências, Polônia).
Carbon film on 200 mesh copper grid | Agar Scientific | AGS160 | The standard TEM grids for observations and liquid cell preparation |
Crossover Tweezers | Dumont | N5 | The tweezers are neecesarry for liquid cell preparation |
Photodiode Power Sensor | ThorLabs | S130C | The sensor used for light intensity measurement |
Polyimide-Coated Multimode Fiber | Thorlabs | FG400UEP | Must be built into the microscope using the on-site built adapter, according to the 10.1016/j.ultramic.2021.113388 |
Transmission Electron Microscope | Hitachi | H-800 | Can be replaced with any side-entry microscope, available for modification |
Tuneable Diode Laser | CNI | MRL-III-660D | The light wavelength must be chosen basing on photosensitizer's absorption spectrum |