L’esaurimento extracellulare del glucosio marcato fluorescentemente è correlato all’assorbimento del glucosio e potrebbe essere utilizzato per lo screening ad alto rendimento dell’assorbimento del glucosio negli organi asportati e nelle colture cellulari.
L’epidemia mondiale in corso di diabete aumenta la domanda per l’identificazione di fattori ambientali, nutrizionali, endocrini, genetici ed epigenetici che influenzano l’assorbimento del glucosio. La misurazione della fluorescenza intracellulare è un metodo ampiamente utilizzato per testare l’assorbimento di glucosio marcato fluorescentemente (FD-glucosio) nelle cellule in vitro o per l’imaging di tessuti che consumano glucosio in vivo. Questo test valuta l’assorbimento del glucosio in un punto temporale scelto. L’analisi intracellulare presuppone che il metabolismo del glucosio FD sia più lento di quello del glucosio endogeno, che partecipa alle reazioni cataboliche e anaboliche e alla segnalazione. Tuttavia, il metabolismo dinamico del glucosio altera anche i meccanismi di assorbimento, che richiederebbero misurazioni cinetiche dell’assorbimento del glucosio in risposta a diversi fattori. Questo articolo descrive un metodo per misurare l’esaurimento extracellulare di FD-glucosio e convalida la sua correlazione con l’assorbimento intracellulare di FD-glucosio in cellule e tessuti ex vivo. La deplezione extracellulare del glucosio può essere potenzialmente applicabile per studi cinetici e dose-dipendenti ad alto rendimento, nonché per l’identificazione di composti con attività glicemica e dei loro effetti specifici per i tessuti.
La domanda di misurazione dell’assorbimento di glucosio aumenta insieme alla necessità critica di affrontare un aumento epidemico di una moltitudine di malattie dipendenti dal metabolismo del glucosio. I meccanismi alla base delle malattie metaboliche degenerative, dei disturbi neurologici e cognitivi1, delle malattie infiammatorie2 e infettive3, del cancro 4,5, così come dell’invecchiamento6, dipendono dal metabolismo del glucosio per l’energia e il suo stoccaggio, i processi anabolici, le proteine e la modificazione genica, la segnalazione, la regolazione dei geni e la sintesi e la replicazione degli acidi nucleici 7,8,9 . Il diabete mellito (DM) è direttamente correlato al malfunzionamento della regolazione dell’assorbimento del glucosio. La DM è uno spettro di malattie croniche come il diabete mellito di tipo 1, -2 e -3, il diabete gestazionale, il diabete ad esordio maturo dei giovani e altri tipi di questa malattia indotti da fattori ambientali e / o genetici. Nel 2016, il primo rapporto globale dell’OMS sul diabete ha dimostrato che il numero di adulti che vivono con il DM più diffuso è quasi quadruplicato dal 1980 a 422 milioni di adulti10, e questo numero di pazienti DM è aumentato esponenzialmente negli ultimi decenni. Solo nel 2019, una stima di 1,5 milioni di morti è stata causata direttamente da10 DM. Questo drammatico aumento è dovuto all’aumento del DM di tipo 2 e alle condizioni che lo guidano, tra cui sovrappeso e obesità10. La pandemia di COVID-19 ha rivelato un aumento di due volte della mortalità nei pazienti con DM rispetto alla popolazione generale, suggerendo il ruolo profondo ma poco compreso del metabolismo del glucosio nella difesa immunitaria3. La prevenzione, la diagnosi precoce e il trattamento del DM, dell’obesità e di altre malattie richiedono l’ottimizzazione delle misurazioni dell’assorbimento del glucosio da parte di diversi tessuti e l’identificazione dei fattori ambientali11, nutrizionali12, endocrini13,genetici 14 ed epigenetici15 che influenzano l’assorbimento del glucosio.
Nella ricerca, l’assorbimento intracellulare e/o tissutale di glucosio è comunemente misurato da glucosio marcato fluorescentemente (FD-glucosio) in vitro 16,17,18 e in vivo19. Fd-glucosio è diventato un metodo preferito rispetto a metodi più precisi che utilizzano glucosio20 marcato radioattivamente, analisi analitica di spettroscopiadi massa 21, metabolomica22, metodi di risonanza magnetica nucleare23 e tomografia ad emissione di positroni / tomografia computerizzata (PET / CT) 5,24. A differenza dell’assorbimento di FD-glucosio, i metodi analitici che richiedono più materiale biologico possono comportare una preparazione del campione in più fasi, strumenti costosi e analisi di dati complessi. Misurazioni efficaci e poco costose dell’assorbimento di glucosio FD in colture cellulari sono state utilizzate in esperimenti proof-of-concept e potrebbero richiedere la convalida con altri metodi.
La base dell’applicazione di FD-glucosio per gli studi sull’assorbimento del glucosio è il ridotto metabolismo del glucosio FD rispetto al glucosio endogeno25. Tuttavia, sia il glucosio endogeno che il glucosio FD sono distribuiti dinamicamente tra tutti i compartimenti cellulari per l’uso nei processi anabolici, catabolici e di segnalazione. La compartimentazione e l’elaborazione dipendente dal tempo25 del glucosio FD interferiscono con le misurazioni di fluorescenza e rappresentano i principali fattori limitanti per l’uso di questo test in esperimenti di screening ad alto rendimento, analisi cinetica, coltura cellulare 3D, co-colture ed esperimenti di espianto tissutale. Qui, forniamo dati che dimostrano un’alta correlazione tra l’esaurimento extracellulare di FD-glucosio e il suo assorbimento intracellulare, suggerendo l’esaurimento extracellulare di FD-glucosio come misura surrogata per l’assorbimento intracellulare di glucosio. La misurazione della deplezione extracellulare del glucosio è stata applicata per convalidare le differenze tessuto-specifiche nell’assorbimento del glucosio nei topi trattati con insulina e un farmaco sperimentale18 per fornire una prova di principio di questo metodo.
L’attuale protocollo descrive le misurazioni intracellulari ed extracellulari (Figura 1) dell’assorbimento di FD-glucosio nelle cellule 3T3-L1. Le sezioni del protocollo 1-7 spiegano la coltura e la crescita delle cellule per 48 ore; fame cellulare, stimolazione e misurazioni extracellulari di base; e misure post-stimolazione di FD-glucosio extracellulare e misurazioni intracellulari di FD-glucosio e proteine. La sezione 8 del protocollo descrive la misurazione ex vivo dell’assorbimento extracellulare di FD-glucosio in tessuti sezionati da topi ob/ob in presenza e assenza di insulina e composto di aminoacidi 2 (AAC2) descritti altrove18.
Il confronto diretto della deplezione extracellulare di FD-glucosio con l’assorbimento di glucosio intracellulare normalizzato nella coltura cellulare ha mostrato un’alta correlazione, suggerendo che l’esaurimento extracellulare del glucosio potrebbe essere una misura surrogata per la valutazione dell’assorbimento del glucosio. La misurazione del glucosio FD extracellulare può utilizzare una vasta gamma di concentrazioni di glucosio FD, anche 0,5-2,5 μg FD-glucosio / mL sembrano fornire l’intervallo ottimale. Il glucos…
The authors have nothing to disclose.
Il progetto è stato sostenuto da Ralph e Marian Falk Medical Research Catalyst Award e Kathleen Kelly Award. Altri supporti includevano il National Center for Research Resources UL1RR025755 e NCI P30CA16058 (OSUCCC), la roadmap NIH per la ricerca medica. Il contenuto è di esclusiva responsabilità degli autori e non rappresenta le opinioni ufficiali del National Center for Research Resources o del NIH.
3T3-L1 mouse fibroblasts | ATCC | CL-173 | Cell line |
96-well plates | Falcon | 353227 | Plastic ware |
B6.V-Lepob/J male mice | Jackson Laboratory | stock number 000632 | Mice |
BioTek Synergy H1 modular multimode microplate reader (Fisher Scientific, US) | Fisher Scientific, US | B-SHT | Device |
Bovine serum | Gibco/ThermoFisher | 161790-060 | Cell culture |
Calf serum | Gibco/ThermoFisher | 26010-066 | Cell culture |
Cell incubator | Forma | Series II Water Jacket | Device |
Diet (mouse/rat diet, irradiated) | Envigo | Teklad LM-485 | Diet |
Dimethylsulfoxide (DMSO) | Sigma LifeScience | D2650-100mL | Reagent |
Dulbecco's Modified Eagle Medium | Gibco/ThermoFisher | 11965-092 | Cell culture |
Ethanol | Sigma Aldrich | E7023-500mL | Reagent |
Fluorescent 2-deoxy-2-[(7-nitro-2,1,3-benzoxadiazol-4-yl) amino]-D-glucose) | Sigma | 72987-1MG | Assay |
Glucose-free and phenol red-free DMEM | Gibco/ThermoFisher | A14430-01 | Cell culture |
Human insulin 10 mg/mL | MilliporeSigma, Cat N 91077C | Cat N 91077C | Reagent |
Isoflurane, 5% | Henry Schein | NDC 11695-6776-2 | Anestaetic |
Penicillin/streptomycin (P/S) | Gibco/ThermoFisher | 15140-122 | Cell culture |
Phosphate buffered solution | Sigma-Aldrich | DA537-500 mL | Cell culture |
Pierce bicinchoninic acid (BCA) protein assay | ThermoFisher | Cat N23225 | Assay |
Radioimmunoprecipitation assay lysis buffer | Santa Cruz Biotechnology | sc-24948 | Assay |
Trypsin-EDTA (0.05%) | Gibco/ThermoFisher | 25300-054 | Cell culture |