Apresentamos um protocolo para desenvolver culturas organoides epiteliais a partir do dente humano. Os organoides são robustamente expansíveis e recapitulam as células-tronco epiteliais do dente, incluindo sua capacidade de diferenciação de ameloblast. O modelo organoide único fornece uma ferramenta promissora para estudar a biologia dentário humano (células-tronco) com perspectivas para abordagens regenerativas dentárias.
Os dentes são de fundamental importância na vida não só para a mastigação alimentar e a fala, mas também para o bem-estar psicológico. O conhecimento sobre desenvolvimento dentário humano e biologia é escasso. Em particular, pouco se sabe sobre as células-tronco epiteliais do dente e sua função. Conseguimos desenvolver um novo modelo organoide a partir do tecido dentário humano (ou seja, folículo dentário, isolado dos dentes do siso extraído). Os organoides são robustos e expansíveis a longo prazo e recapitulam o compartimento de células-tronco do dente humano proposto em termos de expressão de marcador, bem como atividade funcional. Em particular, os organoides são capazes de desdobrar um processo de diferenciação ameloblast como ocorre in vivo durante a amelogênese. Este modelo organoide único fornecerá uma ferramenta poderosa para estudar não apenas o desenvolvimento dentário humano, mas também a patologia dentária, e pode abrir caminho para a terapia regenerativa dentária. Substituir dentes perdidos por um dente biológico baseado neste novo modelo organoide pode ser uma alternativa atraente para a implantação padrão atual de materiais sintéticos.
Os dentes têm papéis essenciais na mastigação alimentar, fala e bem-estar psicológico (autoimagem). O dente humano consiste em tecidos altamente mineralizados de densidade e durezavariadas 1. O esmalte dentário, o principal componente da coroa dentária, é o tecido mineralizado mais alto do corpo humano. Durante a formação do esmalte (amelogênese), quando os dentes se desenvolvem, as células-tronco epiteliais dentárias (DESCs) se diferenciam em células formadoras de esmalte (ameloblasts). Uma vez formado, o esmalte raramente é reparado ou renovado devido à perda apoptótica dos ameloblastas no início da erupção dentária1. A restauração do tecido esmalte danificado, causado por trauma ou doença bacteriana, é atualmente realizada com materiais sintéticos; no entanto, estes são incomodados com deficiências importantes como microleakage, osseointegração e ancoragem inferiores, vida útil finita e falta de reparo totalmente funcional2. Assim, uma cultura robusta e confiável de DESCs humanos com capacidade para gerar ameloblasts e potencial para produzir tecido mineralizado seria um grande avanço no campo regenerativo dental.
O conhecimento sobre fenótipo e função biológica do DESC humano são escassos 3,4,5. Curiosamente, foram propostos DESCs de dentes humanos para existir nos Repousos de Célula Epitelial de Malassez (ERM), aglomerados celulares presentes dentro do folículo dentário (DF), que circunda dentes não rompidos, e permanece presente no ligamento periodontal ao redor da raiz uma vez que o dente entra em erupção1. Células ERM co-cultivadas com polpa dentária foram encontradas para se diferenciar em células semelhantes ao ameloblast e gerar tecido semelhante ao esmalte6. No entanto, estudos profundos sobre o papel específico das células ERM na geração de esmalte (re-) foram limitados devido à falta de modelos de estudo confiáveis7. Os sistemas atuais de cultura in vitro ERM são dificultados pela vida útil limitada e perda rápida de fenótipo nas condições 2D usadas standardmente 8,9,10,11,12. Assim, é fortemente necessário um sistema in vitro tratável para expandir, estudar e diferenciar deSCs humanos.
Durante a última década, uma técnica poderosa para cultivar células-tronco epiteliais in vitro foi aplicada com sucesso a vários tipos de tecidos epiteliais (humanos) para estudar sua biologia, bem como a doença 13,14,15,16. Essa tecnologia permite que as células-tronco epiteliais do tecido se auto-desenvolvam em construções de células 3D (ou seja, organoides) quando semeadas em uma matriz extracelular (ECM) -imitando andaimes (tipicamente, Matrigel) e cultivadas em um meio definido replicando a sinalização do nicho de células-tronco do tecido e/ou embriogênese. Os fatores típicos de crescimento necessários para o desenvolvimento organoide incluem fator de crescimento epidérmico (EGF) e ativadores de integração MMTV do tipo wingless (WNT) 14,15,16. Os organoides resultantes são caracterizados pela fidelidade duradoura na imitação das células-tronco epiteliais originais do tecido, bem como alta expansão, mantendo seu fenótipo e propriedades funcionais, superando assim a disponibilidade de tecido humano primário muitas vezes limitada como adquirido da clínica. Para estabelecer organoides, o isolamento das células-tronco epitelial do tecido heterogêneo (ou seja, compreendendo outros tipos de células, como células mesenquimais) antes da cultivo não é necessário, pois as células mesenquimais não se ligam ou prosperam no ECM, eventualmente resultando em organoides puramente epiteliais 13,16,17,18,19 . Esta tecnologia promissora e versátil levou ao desenvolvimento de modelos organoides múltiplos de vários tecidos epiteliais humanos. No entanto, os organoides derivados do dente humano, valiosos para o estudo profundo do desenvolvimento dentário, regeneração e doenças, ainda não foram estabelecidos20,21. Recentemente conseguimos desenvolver um novo modelo organoide a partir do tecido DF a partir de terceiros molares (dentes do siso) extraídos de pacientes adolescentes19.
Aqui, descrevemos o protocolo para desenvolver culturas organoides epiteliais a partir do dente humano adulto (ou seja, do DF do terceiro molar) (Figura 1A). Os organoides resultantes expressam marcadores de haste associados ao ERM, sendo expansíveis a longo prazo. Curiosamente, ao contrário da maioria dos outros modelos organoides, o EGF tipicamente necessário é redundante para o desenvolvimento e crescimento organoide robusto. Curiosamente, os organoides de caule apresentam propriedades de diferenciação de ameloblast, imitando características e processos do ERM/DESC que ocorrem in vivo. O novo e único modelo organoide descrito aqui permite explorar a biologia, plasticidade e capacidade de diferenciação do DESC e abre as portas para dar os primeiros passos em direção a abordagens regenerativas dentárias.
Este protocolo descreve a geração eficiente e reprodutível de organoides a partir do dente humano. Para nosso conhecimento, esta é a primeira metodologia para o estabelecimento de organoides de conceito atual (epitelial) a partir do tecido dentário humano. Os organoides são expansíveis a longo prazo e apresentam um fenótipo de caule epitelial dentário, duplicando DESCs previamente relatados no compartimento ERM do DF7. Além disso, os organoides replicam características funcionais de DES…
The authors have nothing to disclose.
Somos gratos a todos os membros da equipe da Cirurgia Oral e Maxilofacial (MKA) da UZ Leuven, bem como aos pacientes, por sua ajuda inestimável na coleta de terceiros molares recém-extraídos. Também gostaríamos de agradecer ao Dr. Reinhilde Jacobs e à Dra. Este trabalho foi apoiado por subvenções da KU Leuven (BOF) e FWO-Flanders (G061819N). L.H. é um Ph.D. Fellow (1S84718N).
1.5 mL Microcentrifuge tube | Eppendorf | 30120.086 | |
15 mL Centrifuge tube | Corning | 430052 | |
2-Mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M-6250 | |
48-well flat bottom plates | Corning | 3548 | |
50 mL Centrifuge tube | Corning | 430290 | |
A83-01 | Sigma-Aldrich | SML0788 | |
Agarose | Lonza | 50004 | |
Albumin Bovine (cell culture grade) | Serva | 47330.03 | |
AMELX antibody | Santa Cruz | sc-365284 | |
Amphotericin B | Gibco | 15200018 | |
B27 (without vitamin A) | Gibco | 12587-010 | |
Cassette | VWR | 7202191 | |
Catalase from bovine liver | Sigma-Aldrich | C100 | |
CD44 antibody | Abcam | ab34485 | |
Cell strainer, 40 µm | Falcon | 352340 | |
Cholera Toxin | Sigma-Aldrich | C8052 | |
Citric acid | Sigma-Aldrich | C0759 | |
CK14 antibody | Thermo Fisher Scientific | MA5-11599 | |
Collagenase IV | Gibco | 17104-019 | |
Cover glass | VWR | 6310146 | |
Cryobox | Thermo Scientific | 5100-0001 | |
Cryovial | Thermo Fisher Scientific | 375353 | |
Dimethylsulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich | D2650 | |
Dispase II | Sigma-Aldrich | D4693 | |
DMEM 1:1 F12 without Fe | Invitrogen | 074-90715A | |
DMEM powder high glucose | Gibco | 52100039 | |
Dnase | Sigma-Aldrich | D5025-15KU | |
Donkey serum | Sigma-Aldrich | D9663 – 10ML | |
Embedding workstation, 220 to 240 Vac | Thermo Fisher Scientific | 12587976 | |
Ethanol absolute, ≥99.8% (EtOH) | Fisher Chemical | E/0650DF/15 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Sigma-Aldrich | F7524 | |
FGF10 | Peprotech | 100-26 | |
FGF2 (= basic FGF) | R&D Systems | 234-FSE-025 | |
FGF8 | Peprotech | AF-100-25 | |
GenElute Mammaliam Total RNA Miniprep Kit | Sigma-Aldrich | RTN350-1KT | Includes 1% β-mercaptoethanol dissolved in lysis buffer |
Glass Pasteur pipette | Niko Mechanisms | 170-40050 | |
Glycine | VWR | 101194M | |
HEPES | Sigma-Aldrich | H4034 | |
IGF-1 | PeproTech | 100-11 | |
InSolution Y-27632 (ROCK inhibitor, RI) | Sigma-Aldrich | 688001 | |
Insulin from bovine pancreas | Sigma-Aldrich | I6634 | |
ITGA6 antibody | Sigma-Aldrich | HPA012696 | |
L-Glutamine | Gibco | 25030024 | |
Matrigel (growth factor-reduced; phenol red-free) | Corning | 15505739 | |
Microscope slide | Thermo Fisher Scientific | J1800AMNZ | |
Millex-GV Syringe Filter Unit, 0.22 μm | Millipore | SLGV033R | |
Minimum essential medium eagle (αMEM) | Sigma-Aldrich | M4526 | |
mouse IgG (Alexa 555) secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | A-31570 | |
N2 | Gibco | 17502-048 | |
N-acetyl L-cysteine | Sigma-Aldrich | A7250 | |
Nicotinamide | Sigma-Aldrich | N0636 | |
Noggin | PeproTech | 120-10C | |
P63 antibody | Abcam | ab124762 | |
Pap Pen | Sigma-Aldrich | Z377821-1EA | Marking pen |
Paraformaldehyde (PFA), 16% | Merck | 8.18715 | |
Penicillin G sodium salt | Sigma-Aldrich | P3032 | |
Penicillin-streptomycin (Pen/Strep) | Gibco | 15140-122 | |
Petri dish | Corning | 353002 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | Gibco | 10010-015 | |
Pipette (P20, P200, P1000) | Eppendorf or others | 2231300006 | |
Plastic transfer pipette (3.5 mL) | Sarstedt | 86.1171.001 | |
Rabbit IgG (Alexa 488) secondary antibody | Thermo Fisher Scientific | A21206 | |
RSPO1 | PeproTech | 120-38 | |
SB202190 (p38i) | Biotechne (Tocris) | 1264 | |
Scalpel (surgical blade) | Swann-Morton | 207 | |
SHH | R&D Systems | 464-SH-200 | |
Silicone molds (Heating block) | VWR | 720-1918 | |
Sodium Chloride (NaCl) | BDH | 102415K | |
Sodium Hydrogen Carbonate (NaHCO3) | Merck | 106329 | |
Sodium-pyruvate (C3H3NaO3) | Sigma-Aldrich | P-5280 | |
SOX2 antibody | Abcam | ab92494 | |
StepOnePlus | Thermo Fisher Scientific | Real-Time PCR System | |
Stericup-GP, 0.22 µm | Millipore | SCGPU02RE | |
Steriflip-GP Sterile Centrifuge Tube Top Filter Unit, 0.22 μm | Millipore | SCGP00525 | |
Sterile 1000 μL pipette tips with filter | Greiner | 740288 | |
Sterile 20 μL pipette tips with filter | Greiner | 774288 | |
Sterile 200 μL pipette tips with and without filter | Greiner | 739288 | |
Sterile H2O | Fresenius | B230531 | |
Streptomycin sulfate salt | Sigma-Aldrich | S6501 | |
Superscript III first-strand synthesis supermix | Invitrogen | 11752-050 | Reverse transcription kit |
Tissue processor | Thermo Scientific | 12505356 | |
Transferrin | Serva | 36760.01 | |
Triton X-100 | Sigma | T8787-50ML | |
TrypLE express | Gibco | 12605-010 | |
Vectashield mounting medium+DAPI | Labconsult NV | H-1200 | Antifade mounting medium with DAPI |
WNT3a | Biotechne (Tocris) | 5036-WN-500 | |
Xylenes, 99%, for biochemistry and histology | VWR | 2,89,75,325 |