يوضح هذا البروتوكول الخطوات المختلفة التي ينطوي عليها جرح قرنية كتكوت جنيني في البيض. يمكن تحليل القرنيات المجددة أو المستعادة بالكامل بحثا عن إمكانات التجدد باستخدام تقنيات خلوية وجزيئية مختلفة بعد إجراء الجرح.
تظهر جروح القرنية الجنينية في الفرخ قدرة ملحوظة على التجدد الكامل والسريع ، في حين تعاني القرنيات المصابة البالغة من فقدان الشفافية بسبب الندوب الليفية. يتم استعادة سلامة أنسجة القرنيات الجنينية المصابة بشكل جوهري مع عدم وجود ندبة يمكن اكتشافها. نظرا لسهولة الوصول إليه وسهولة التلاعب به ، يعد جنين الفرخ نموذجا مثاليا لدراسة إصلاح جرح القرنية بدون ندبة. يوضح هذا البروتوكول الخطوات المختلفة التي ينطوي عليها جرح قرنية الفرخ الجنيني في البيض. أولا ، يتم وضع البيض في العصور الجنينية المبكرة للوصول إلى العين. ثانيا ، يتم إجراء سلسلة من التلاعب الفيزيائي في البويضة للأغشية خارج الجنين لضمان الحفاظ على الوصول إلى العين خلال مراحل لاحقة من التطور ، تتوافق مع وقت تشكيل الطبقات الخلوية الثلاث للقرنية. ثالثا ، يتم إجراء جروح القرنية الخطية التي تخترق الطبقة الظهارية الخارجية والسدى الأمامي باستخدام سكين جراحي مجهري. يمكن تحليل عملية التجديد أو القرنيات المستعادة بالكامل بحثا عن إمكانات التجدد باستخدام تقنيات خلوية وجزيئية مختلفة بعد إجراء الجرح. وقد كشفت الدراسات التي أجريت حتى الآن باستخدام هذا النموذج أن القرنيات الجنينية المصابة تظهر تنشيط تمايز الخلايا القرنية، وتخضع لإعادة تشكيل منسقة لبروتينات ECM إلى بنيتها الكلية ثلاثية الأبعاد الأصلية، وتصبح معصبة بشكل كاف بواسطة الأعصاب الحسية القرنية. في المستقبل ، يمكن تحليل التأثير المحتمل للعوامل الداخلية أو الخارجية على عملية التجدد في القرنيات الشافية باستخدام تقنيات البيولوجيا التنموية ، مثل تطعيم الأنسجة ، أو الكهربية ، أو العدوى الفيروسية الرجعية ، أو زرع الخرز. تحدد الاستراتيجية الحالية الفرخ الجنيني كنموذج تجريبي حاسم لتوضيح العوامل الجزيئية والخلوية التي تنسق التئام جروح القرنية بدون ندوب.
القرنية هي النسيج الشفاف والخارجي للعين الذي ينقل وينكسر الضوء الذي يؤدي إلى حدة البصر. في القرنية البالغة ، يؤدي تلف أو عدوى سدى القرنية إلى استجابة سريعة وقوية لالتئام الجروح تتميز بانتشار الخلايا القرنية ، والتليف ، وزيادة الالتهاب الذي يؤدي إلى موت الخلايا المبرمج الناجم عن السيتوكين ، وتوليد الخلايا الليفية العضلية الإصلاحية ، وإعادة تشكيل المصفوفة خارج الخلية (ECM) بشكل عام 1,2 . بعد الإصابة ، يؤدي إصلاح أنسجة القرنية هذا إلى أنسجة ندبية غير شفافة تقلل من شفافية القرنية وتمنع مرور الضوء ، وبالتالي تشوه الرؤية ، وفي الحالات الشديدة ، تؤدي إلى عمى القرنية3. وبالتالي ، هناك حاجة واضحة لتطوير نماذج حيوانية موثوقة لمعالجة تعقيدات التئام الجروح وتحديد العوامل الخلوية والجزيئية المسؤولة عن إغلاق الجروح وتجديد الأنسجة.
حتى الآن ، استخدمت معظم الدراسات التي تدرس التئام جروح القرنية نماذج حيوانية بعد الولادة4 أو البالغين1،2،5،6،7. في حين أن هذه الدراسات قد أدت إلى تقدم كبير في فهم استجابة التئام جروح القرنية والآليات الكامنة وراء تكوين الندبات ، فإن أنسجة القرنية التالفة في نماذج الشفاء هذه تفشل في التجدد الكامل ، مما يحد من فائدتها لتحديد العوامل الجزيئية والآليات الخلوية المسؤولة عن تلخيص كامل لمورفولوجيا القرنية وهيكلها بعد الإصابة. على النقيض من ذلك ، فإن جروح الجنين الناتجة بسكين في قرنية الفرخ الجنينية تمتلك قدرة جوهرية على الشفاء التام بطريقة خالية من الندوب8. على وجه التحديد ، تظهر قرنية الفرخ الجنينية تجديدا غير ليفي مع التلخيص الكامل لبنية المصفوفة خارج الخلية وأنماط التعصيب 8,9.
يصف هذا البروتوكول سلسلة من الخطوات التي ينطوي عليها جرح قرنية كتكوت جنيني في البيض. أولا ، يتم وضع البيض في الأعمار الجنينية المبكرة لتسهيل الوصول إلى الجنين. ثانيا ، يتم إجراء سلسلة من التلاعب الفيزيائي في البويضة للأغشية خارج الجنين لضمان الحفاظ على الوصول إلى العين خلال مراحل لاحقة من التطور ، تتوافق مع وقت تشكل الطبقات الخلوية الثلاث للقرنية ويكون الجرح مطلوبا. ثالثا ، يتم إجراء شقوق القرنية المركزية الخطية التي تخترق ظهارة القرنية وفي السدى الأمامي باستخدام سكين جراحي مجهري. يمكن تحليل عملية التجديد أو القرنيات المستعادة بالكامل بحثا عن إمكانات التجدد باستخدام تقنيات خلوية وجزيئية مختلفة بعد إجراء الجرح.
الفرخ هو نظام نموذجي مثالي لدراسة إصلاح جرح القرنية الجنيني الخالي من الندوب. على عكس الثدييات ، يمكن الوصول بسهولة إلى الفرخ طوال فترة التطوير باستخدام استراتيجيات ovo 8 أو ex ovo 24. قرنية الفرخ الجنينية أكبر بكثير من قرنية القوارض ، مع ما يقرب من 50 ٪ من حجم ?…
The authors have nothing to disclose.
تم دعم هذا العمل من خلال منحة التطوير الفني والعلمي من خلال جامعة إلينوي ويسليان إلى TS وبتمويل جزئي من NIH-R01EY022158 (PL).
18 G hypodermic needle | Fisher Scientific | 14-826-5D | |
30 degree angled microdissecting knife | Fine Science Tools | 10056-12 | |
4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Molecular Probes | D1306 | |
5 mL syringe | Fisher Scientific | 14-829-45 | |
Alexa Fluor labelled secondary antibodies | Molecular Probes | ||
Calcium chloride dihydrate (CaCl2-H20) | Sigma | C8106 | |
Chicken egg trays | GQF | O246 | |
Dissecting Forceps, Fine Tip, Serrated | VWR | 82027-408 | |
Dissecting scissors, sharp tip | VWR | 82027-578 | |
Iris 1 x 2 Teeth Tissue Forceps, Full Curved | VWR | 100494-908 | |
Kimwipes | Sigma | Z188956 | |
Microdissecting Scissors | VWR | 470315-228 | |
Mouse anti-fibronectin (IgG1) | Developmental Studies Hybridoma Bank | B3/D6 | |
Mouse anti-laminin (IgG1) | Developmental Studies Hybridoma Bank | 3H11 | |
Mouse antineuron-specific β-tubulin (Tuj1, IgG2a) | Biolegend | 801213 | |
Mouse anti-tenascin (IgG1) | Developmental Studies Hybridoma Bank | M1-B4 | |
Paraformaldehyde | Sigma | 158127 | |
Penicillin/Streptomycin | Sigma | P4333 | |
Potassium chloride (KCl) | Sigma | P5405 | |
Sodium chloride (NaCl) | Fisher Scientific | BP358 | |
Sportsman 1502 egg incubator | GQF | 1502 | |
Tear by hand packaging (1.88 inch width) | Scotch | n/a |