Настоящий протокол описывает модель повреждения легких у мышей, использующих олеиновую кислоту для имитации острого респираторного дистресс-синдрома (ОРДС). Эта модель увеличивает медиаторы воспаления при отеке и снижает податливость легких. Олеиновая кислота используется в форме соли (олеата), так как эта физиологическая форма позволяет избежать риска эмболии.
Острый респираторный дистресс-синдром (ОРДС) представляет значительную угрозу для тяжелобольных пациентов с высоким уровнем летальности. Воздействие загрязняющих веществ, сигаретный дым, инфекционные агенты и жирные кислоты могут вызвать ОРДС. Животные модели могут имитировать сложный патомеханизм ОРДС. Однако у каждого из них есть ограничения. Примечательно, что олеиновая кислота (ОА) повышена у пациентов в критическом состоянии с вредным воздействием на легкие. ОА может вызывать повреждение легких эмболией, разрушая ткани, изменяя pH и ухудшая клиренс отека. Модель ОА-индуцированного поражения легких напоминает различные особенности ОРДС с повреждением эндотелия, повышенной альвеолярной проницаемостью, воспалением, образованием мембранного гиалина и гиалиновой гибелью клеток. При этом индукция повреждения легких описывается путем введения ОА (в форме соли) непосредственно в легкие и внутривенно мыши, поскольку это физиологическая форма ОА при рН 7. Таким образом, инъекция ОА в солевой форме является полезной животной моделью для изучения повреждения легких/ОРДС, не вызывая эмболии и не изменяя рН, тем самым приближаясь к тому, что происходит у пациентов в критическом состоянии.
Ashbaugh et al.1 в 1967 году впервые описали острый респираторный дистресс-синдром (ОРДС) и с тех пор претерпели множество пересмотров. Согласно берлинскому определению, ОРДС – это воспаление легких, которое приводит к острой дыхательной недостаточности и гипоксемии (PaO2/FiO 2 > 300 мм рт. ст.) из-за дисбаланса вентиляции и перфузии, диффузного двустороннего альвеолярного повреждения (DAD) и инфильтрата, увеличения массы легких и отека 2,3. Легочная паренхима представляет собой сложную клеточную среду, состоящую из эпителиальных, эндотелиальных и других клеток. Эти клетки образуют барьеры и структуры, отвечающие за газообмен и гомеостаз в альвеолах3. Наиболее распространенными клетками в эпителиальном барьере являются альвеолярные клетки I типа (AT1) с большей площадью поверхности для газообмена и управления жидкостью с помощью Na/K-АТФазы. Кроме того, альвеолярные клетки II типа (AT2) вырабатывают поверхностно-активное вещество, снижающее поверхностное натяжение в альвеолах4. Под ними эндотелиальные клетки образуют полупроницаемый барьер, отделяющий легочное кровообращение от интерстиция. Его функции включают обнаружение стимулов, координацию воспалительных реакций и клеточную трансмиграцию5. Эндотелиальные клетки также регулируют газообмен, сосудистый тонус и коагуляцию5. Таким образом, нарушения функции эндотелия и эпителия могут усугубить провоспалительный фенотип, вызывая повреждение легких, приводящее к ОРДС5.
Риск развития ОРДС связан с бактериальной и вирусной пневмонией или косвенными факторами, такими как нелегочный сепсис, травма, переливание крови и панкреатит6. Эти условия вызывают высвобождение молекулярных паттернов, ассоциированных с патогенами (PAMP) и молекулярных паттернов, связанных с повреждением (DAMP), индуцируя провоспалительные цитокины и хемокины, такие как TNF-α, IL-1β, IL-6 и IL-85. TNF-α связан с деградацией сосудисто-эндотелиального кадгерина (VE-кадгерина) при нарушении эндотелиального барьера и инфильтрации лейкоцитов в паренхиму легких. Нейтрофилы являются первыми клетками, которые мигрируют, привлекаемые IL-8 и LTB4 5,7,8. Нейтрофилы дополнительно увеличивают образование провоспалительных цитокинов, активных форм кислорода (АФК)9 и внеклеточных ловушек нейтрофилов (НВЛ), что приводит к дополнительному повреждению эндотелия и эпителия10. Повреждение эпителия вызывает воспаление и активацию Toll-подобных рецепторов в клетках AT2 и резидентных макрофагах, индуцируя высвобождение хемокинов, привлекающих воспалительные клетки в легкие. Кроме того, выработка цитокинов, таких как интерферон-β (INFβ), вызывает рецепторы, индуцирующие апоптоз (TRAIL), связанные с TNF, что приводит клетки ATII к апоптозу, ухудшая жидкость и ионный кларенс4. Нарушение структуры эндотелиального и эпителиального барьеров способствует притоку жидкости, белков, эритроцитов и лейкоцитов в альвеолярное пространство, вызывая отеки. При установлении отека изменяется легочное усилие для поддержания дыхания и газообмена11. Гиперкапния и гипоксемия индуцируют гибель клеток и нарушение транспорта натрия, усугубляя альвеолярный отек из-за плохой способности клиренса10. ОРДС также имеет повышенный уровень IL-17A, связанный с дисфункцией органов, повышенным процентом альвеолярных нейтрофилов и альвеолярной проницаемостью9.
В последние годы наблюдается постоянный прогресс в исследованиях патофизиологии, эпидемиологии и лечения ОРДС12,13. Тем не менее, ОРДС является гетерогенным синдромом, несмотря на прогресс в терапевтических исследованиях, приводящий к оптимизации искусственной вентиляции легких и инфузионной терапии. Таким образом, по-прежнемунеобходимо более эффективное прямое фармакологическое лечение, а исследования на животных могут помочь раскрыть механизмы ОРДС и мишени для вмешательства.
Современные модели ОРДС не способны полностью воспроизвести патологию. Таким образом, исследователи часто выбирают ту модель, которая могла бы лучше соответствовать их интересам. Например, модель индукции липополисахаридов (ЛПС) индуцирует ОРДС путем эндотоксического шока, вызванного в основном TLR414. Индукция HCl имитирует аспирацию кислоты, и повреждение является нейтрофильным14. С другой стороны, текущая модель олеата натрия индуцирует повреждение эндотелия, которое увеличивает проницаемость сосудов и отек. Кроме того, использование олеата натрия вместо олеиновой кислоты в жидкой форме позволяет избежать риска эмболии и изменения рНкрови 15.
Модели животных для ОРДС
Доклинические исследования на животных моделях помогают понять патологию и имеют важное значение для новых исследований методов лечения ОРДС. Идеальная животная модель должна обладать характеристиками, сходными с клинической ситуацией, и хорошей воспроизводимостью механизмов заболевания с соответствующими патофизиологическими особенностями каждой стадии заболевания, его эволюциии репарации. Для доклинической оценки острого повреждения легких при ОРДС используется несколько животных моделей. Однако, поскольку все модели имеют ограничения, они не могут полностью воспроизвести патологию человека 6,14,16. ОРДС, индуцированный олеиновой кислотой, применяется у различных видов животных17. У свиней18, овец19 исобак 20, которым была введена инъекция ОА, наблюдаются многочисленные клинические признаки заболевания с дисфункцией альвеолярно-капиллярной мембраны и повышенной проницаемостью с белковой и клеточной инфильтрацией.
Например, при ОА в дозе 1,25 мкМ внутривенно вводится заблокированный трансэпителиальный транспорт, приводящий к альвеолярному отеку15. В качестве альтернативы, в модели in vitro с использованием клеток А549, ОА в концентрации 10 мкМ не изменял эпителиальный натриевый канал (eNAC) или экспрессию Na/K-АТФазы. Тем не менее, ОА, по-видимому, ассоциируется с обоими каналами, непосредственно подавляя их активность21. Внутривенное введение ОА в дозе 0,1 мл/кг вызывало застой и отек легочной ткани, уменьшало альвеолярные пространства с утолщенными альвеолярными перегородками и увеличивало количество воспалительных и эритроцитов22. Кроме того, ОА индуцировал апоптоз и некроз в эндотелиальных и эпителиальных клетках легкого15. Введение раствора трис-олеата интратрахеально мышам усиливало инфильтрацию нейтрофилов и отек уже через 6 ч после стимуляции23. Инъекция ОА через 24 ч повышала уровень провоспалительных цитокинов (т.е. TNF-α, IL-6 и IL-1β)23. Кроме того, внутривенное (орбитальное сплетение) введение 10 мкМ трис-олеата ингибирует легочную активность Na/K-АТФазы, аналогично уабаину при 10-3 мкМ, селективному ингибитору фермента. Кроме того, ОА индуцирует воспаление с клеточной инфильтрацией, образованием липидных тел и выработкой лейкотриена В4 (ЛТБ4) и простагландина Е2 (ПГЕ2)22,24. Таким образом, ОРДС, индуцированный олеиновой кислотой, вызывает отек, кровоизлияние, инфильтрацию нейтрофилов, повышение активности миелопероксидазы (МПО) и АФК24. Таким образом, введение ОА является хорошо зарекомендовавшей себя моделью повреждения легких22,25. Все результаты, представленные в этой статье, в которых ОА представляет собой форму соли, олеат натрия.
Выбор правильной модели ОРДС имеет важное значение для проведения доклинических исследований, и лицо, проводящее оценку, должно учитывать все возможные переменные, такие как возраст, пол, методы введения и другие6. Выбранная модель должна воспроизводить заболевание на осн…
The authors have nothing to disclose.
Это исследование было профинансировано Институтом Освальдо Круза, Фондом Освальдо Круза (FIOCRUZ), Грантом 001 Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES), Programa de Biotecnologia da Universidade Federal Fluminense (UFF), Федеральным университетом Рио-де-Жанейро (UNIRIO), Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro (FAPERJ), и Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq). Рисунки 1 и 2 созданы с помощью BioRender.com.
Anesthetic vaporizer | SurgiVet | model 100 | |
Braided slik thread with needle number 5 | Shalon medical | N/A | |
Cabinet vivarium | Insight | Model EB273 | |
Centrifuge | Eppendorf | 5430/5430R | |
Cytofunnel | ThermoFisher | 11-025-48 | |
Drontal puppy | Bayer | N/A | |
Hank's balanced Salts | Sigma-Aldrich | H4981 | |
Heatpad | tkreprodução | TK-500 | |
Hydrocloric Acid | Sigma-Aldrich | 30721 | |
Insulin syringe Ultrafine | BD | 328322 | |
Isoforine 1mL/mL | Cristália | N/A | |
Ketamine | Syntec | N/A | |
May-Grunwald-Giemsa | Sigma-Aldrich | 205435 | |
Micro BCA Protein Assay Kit | ThermoFisher | 23235 | |
Microscope PrimoStar | Carl Zeiss | ||
Mouse IL-1 beta duoSet ELISA | R&D system | DY401 | |
Mouse IL-6 duoSet ELISA | R&D system | DY406 | |
Mouse TNF-alpha duoSet ELISA | R&D system | DY410 | |
Neubauer chamber improved bright-line | Global optics | ||
Oleic Acid (99%) | Sigma-Aldrich | O1008 | |
Osmium tetroxide solution (4%) | Sigma-Aldrich | 75632 | |
Peripheral Intravenous Catherter 20 G | BD Angiocath | 388333 | |
Prism 8 (graphic and statistic software) | Graphpad | N/A | |
Prostaglandin E2 ELISA Kit -Monoclonal | Cayman Chemical | 514010 | |
Shandon Cytospin 3 | ThermoFisher | N/A | |
Sodium hydroxide | Merck | 1,06,49,81,000 | |
Spectrophotometer | Molecular Devices | SpectraMax ABS plus | |
Swiss webster mice | ICTB/FIOCRUZ | N/A | |
Syringe 1 mL | BD | 990189 | |
Tris-base | Bio Rad | 161-0719 | Electrophoresis purity reagent |
Türk's solution | Sigma-Aldrich | 93770 | |
Xilazine | Syntec | N/A |