Il presente protocollo descrive un modello di danno polmonare nei topi che utilizza acido oleico per imitare la sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS). Questo modello aumenta i mediatori dell’infiammazione sull’edema e diminuisce la compliance polmonare. L’acido oleico viene utilizzato sotto forma di sale (oleato) poiché questa forma fisiologica evita il rischio di embolia.
La sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS) è una minaccia significativa per i pazienti critici con un alto tasso di mortalità. L’esposizione agli inquinanti, il fumo di sigaretta, gli agenti infettivi e gli acidi grassi possono indurre ARDS. I modelli animali possono imitare il complesso meccanismo patotico dell’ARDS. Tuttavia, ognuno di essi ha dei limiti. In particolare, l’acido oleico (OA) è aumentato nei pazienti in condizioni critiche con effetti dannosi sul polmone. L’OA può indurre lesioni polmonari attraverso emboli, interrompendo il tessuto, alterando il pH e compromettendo la clearance dell’edema. Il modello di danno polmonare indotto da OA assomiglia a varie caratteristiche dell’ARDS con danno endoteliale, aumento della permeabilità alveolare, infiammazione, formazione di ialina di membrana e morte cellulare. In questo caso, l’induzione del danno polmonare è descritta iniettando l’OA (in forma di sale) direttamente nel polmone e per via endovenosa in un topo poiché è la forma fisiologica dell’OA a pH 7. Pertanto, l’iniezione di OA sotto forma di sale è un modello animale utile per studiare il danno polmonare/ARDS senza causare emboli o alterare il pH, avvicinandosi così a ciò che sta accadendo nei pazienti critici.
Ashbaugh et al.1, nel 1967, descrissero per la prima volta la sindrome da distress respiratorio acuto (ARDS) e da allora sono stati sottoposti a molteplici revisioni. Secondo la definizione di Berlino, l’ARDS è un’infiammazione polmonare che porta a un’insufficienza respiratoria acuta e all’ipossiemia (PaO 2 / FiO 2 > 300 mm Hg) a causa di uno squilibrio nel rapporto ventilazione/perfusione, danno alveolare bilaterale diffuso (DAD) e infiltrato, aumento del peso polmonare ed edema 2,3. Il parenchima polmonare è un ambiente cellulare complesso composto da cellule epiteliali, endoteliali e di altro tipo. Queste cellule formano barriere e strutture responsabili dello scambio gassoso e dell’omeostasi negli alveoli3. Le cellule più abbondanti all’interno della barriera epiteliale sono le cellule alveolari di tipo I (AT1) con una superficie più ampia per lo scambio gassoso e la gestione dei fluidi attraverso Na/K-ATPasi. Inoltre, le cellule alveolari di tipo II (AT2) producono tensioattivo, riducendo la tensione superficiale negli alveoli4. Al di sotto, le cellule endoteliali formano una barriera semipermeabile che separa la circolazione polmonare dall’interstizio. Le sue funzioni includono il rilevamento degli stimoli, il coordinamento delle risposte infiammatorie e la trasmigrazione cellulare5. Le cellule endoteliali regolano anche lo scambio gassoso, il tono vascolare e la coagulazione5. Pertanto, i disturbi della funzione endoteliale ed epiteliale possono esacerbare un fenotipo proinfiammatorio, causando danni polmonari che portano all’ARDS5.
Lo sviluppo dell’ARDS è associato al rischio di polmonite batterica e virale o a fattori indiretti come sepsi non polmonare, traumi, trasfusioni di sangue e pancreatite6. Queste condizioni causano il rilascio di pattern molecolari associati a patogeni (PAMP) e pattern molecolari associati al danno (DAMPs), inducendo citochine e chemochine proinfiammatorie come TNF-α, IL-1β, IL-6 e IL-85. Il TNF-α è legato alla degradazione della caderina vascolare-endoteliale (VE-caderina) nella rottura della barriera endoteliale e nell’infiltrazione dei leucociti nel parenchima polmonare. I neutrofili sono le prime cellule a migrare, attratte da IL-8 e LTB4 5,7,8. I neutrofili aumentano ulteriormente le citochine proinfiammatorie, le specie reattive dell’ossigeno (ROS)9 e la formazione di trappole extracellulari per neutrofili (NET) generando un danno endoteliale ed epiteliale extra10. Il danno epiteliale provoca l’infiammazione e l’attivazione dei recettori Toll-like nelle cellule AT2 e nei macrofagi residenti, inducendo il rilascio di chemochine che attirano le cellule infiammatorie nei polmoni4. Inoltre, la produzione di citochine come l’interferone-β (INFβ) provoca recettori che inducono l’apoptosi correlati al TNF (TRAIL), portando le cellule ATII all’apoptosi, compromettendo la chiarezza del fluido e degli ioni4. La rottura della struttura della barriera endoteliale ed epiteliale consente l’afflusso di liquidi, proteine, globuli rossi e leucociti nello spazio alveolare, causando edema. Con l’edema stabilitosi, lo sforzo polmonare per mantenere la respirazione e lo scambio di gas è alterato11. L’ipercapnia e l’ipossiemia inducono la morte cellulare e disturbi del trasporto del sodio, aggravando l’edema alveolare a causa della scarsa capacità di clearance10. L’ARDS ha anche livelli elevati di IL-17A, associati a disfunzione d’organo, aumento della percentuale di neutrofili alveolari e permeabilità alveolare9.
Negli ultimi anni sono stati compiuti progressi nella ricerca sulla fisiopatologia, l’epidemiologia e il trattamento dell’ARDS12,13. Tuttavia, l’ARDS è una sindrome eterogenea, nonostante i progressi della ricerca terapeutica che hanno portato alla ventilazione meccanica e all’ottimizzazione della fluidoterapia. Pertanto, è ancora necessario un trattamento farmacologico diretto più efficace10 e gli studi sugli animali possono aiutare a svelare i meccanismi dell’ARDS e gli obiettivi per l’intervento.
Gli attuali modelli di ARDS non sono in grado di replicare completamente la patologia. Pertanto, i ricercatori spesso scelgono il modello che potrebbe adattarsi meglio ai loro interessi. Ad esempio, il modello di induzione dei lipopolisaccaridi (LPS) induce ARDS per shock endotossico innescato principalmente da TLR414. L’induzione dell’HCl imita l’aspirazione acida e il danno è neutrofilo-dipendente14. D’altra parte, l’attuale modello di oleato di sodio induce danni endoteliali che aumentano la permeabilità vascolare e l’edema. Inoltre, l’utilizzo dell’oleato di sodio al posto dell’acido oleico in forma liquida evita i rischi di embolia e l’alterazione del pH15 del sangue.
Modelli di animali per ARDS
Gli studi preclinici in modelli animali aiutano a comprendere la patologia e sono essenziali per la ricerca di nuovi trattamenti per l’ARDS. Il modello animale ideale deve avere caratteristiche simili alla situazione clinica e una buona riproducibilità dei meccanismi della malattia con caratteristiche fisiopatologiche rilevanti di ogni stadio, evoluzione e riparazionedella malattia 14. Diversi modelli animali sono utilizzati per valutare il danno polmonare acuto nell’ARDS in fase preclinica. Tuttavia, poiché tutti i modelli hanno dei limiti, non riproducono completamente la patologia umana 6,14,16. L’ARDS indotta dall’acido oleico è utilizzata in diverse specie animali17. I suini18, gli ovini19 e i cani20 sottoposti a iniezione di OA presentano numerose caratteristiche cliniche della malattia con disfunzione della membrana alveolare-capillare e aumento della permeabilità con l’infiltrazione di proteine e cellule.
Ad esempio, l’OA a 1,25 μM iniettato per via endovenosa ha bloccato il trasporto transepiteliale portando all’edema alveolare15. In alternativa, nel modello in vitro che utilizzava cellule A549, l’OA a una concentrazione di 10 μM non ha modificato il canale epiteliale del sodio (eNAC) o l’espressione di Na/K-ATPasi. Tuttavia, l’OA sembra associarsi a entrambi i canali, inibendo direttamente la loro attività21. L’iniezione endovenosa di OA a 0,1 ml/kg ha causato congestione e gonfiore del tessuto polmonare, riduzione degli spazi alveolari con setti alveolari ispessiti e aumento della conta infiammatoria e dei globuli rossi22. Inoltre, l’OA ha indotto l’apoptosi e la necrosi nelle cellule endoteliali ed epiteliali del polmone15. L’iniezione di una soluzione di tris-oleato, per via intratracheale nei topi, ha migliorato l’infiltrazione dei neutrofili e l’edema già 6 ore dopo la stimolazione23. L’iniezione di OA a 24 ore ha aumentato i livelli di citochine proinfiammatorie (cioè TNF-α, IL-6 e IL-1β)23. Inoltre, l’iniezione endovenosa (plesso orbitale) di 10 μM di un tris-oleato inibisce l’attività polmonare Na/K-ATPasi, simile all’ouabaina a 10-3 μM, un inibitore enzimatico selettivo. Inoltre, l’OA induce infiammazione con infiltrazione cellulare, formazione di corpi lipidici e produzione di leucotriene B4 (LTB4) e prostaglandina E2 (PGE2)22,24. Pertanto, l’ARDS indotta dall’acido oleico genera edema, emorragia, infiltrazione di neutrofili, aumento dell’attività della mieloperossidasi (MPO) e ROS24. Pertanto, la somministrazione di OA è un modello consolidato per il danno polmonare22,25. Tutti i risultati presentati in questo articolo che hanno OA rappresentano la forma del sale, oleato di sodio.
La selezione del modello ARDS corretto è essenziale per condurre gli studi preclinici e il valutatore deve considerare tutte le possibili variabili, come l’età, il sesso, le modalità di somministrazione e altre6. Il modello scelto deve riprodurre la malattia sulla base di fattori di rischio quali sepsi, embolia lipidica, ischemia-riperfusione del sistema vascolare polmonare e altri rischi clinici14. Tuttavia, nessun modello animale utilizzato per l’ARDS può ricreare tut…
The authors have nothing to disclose.
Questa ricerca è stata finanziata dall’Instituto Oswaldo Cruz, dalla Fundação Oswaldo Cruz (FIOCRUZ), dalla Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) Grant 001, dal Programa de Biotecnologia da Universidade Federal Fluminense (UFF), dall’Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro (UNIRIO), dalla Fundação Carlos Chagas Filho de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio de Janeiro (FAPERJ), e il Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq). La Figura 1 e la Figura 2 sono state create con BioRender.com.
Anesthetic vaporizer | SurgiVet | model 100 | |
Braided slik thread with needle number 5 | Shalon medical | N/A | |
Cabinet vivarium | Insight | Model EB273 | |
Centrifuge | Eppendorf | 5430/5430R | |
Cytofunnel | ThermoFisher | 11-025-48 | |
Drontal puppy | Bayer | N/A | |
Hank's balanced Salts | Sigma-Aldrich | H4981 | |
Heatpad | tkreprodução | TK-500 | |
Hydrocloric Acid | Sigma-Aldrich | 30721 | |
Insulin syringe Ultrafine | BD | 328322 | |
Isoforine 1mL/mL | Cristália | N/A | |
Ketamine | Syntec | N/A | |
May-Grunwald-Giemsa | Sigma-Aldrich | 205435 | |
Micro BCA Protein Assay Kit | ThermoFisher | 23235 | |
Microscope PrimoStar | Carl Zeiss | ||
Mouse IL-1 beta duoSet ELISA | R&D system | DY401 | |
Mouse IL-6 duoSet ELISA | R&D system | DY406 | |
Mouse TNF-alpha duoSet ELISA | R&D system | DY410 | |
Neubauer chamber improved bright-line | Global optics | ||
Oleic Acid (99%) | Sigma-Aldrich | O1008 | |
Osmium tetroxide solution (4%) | Sigma-Aldrich | 75632 | |
Peripheral Intravenous Catherter 20 G | BD Angiocath | 388333 | |
Prism 8 (graphic and statistic software) | Graphpad | N/A | |
Prostaglandin E2 ELISA Kit -Monoclonal | Cayman Chemical | 514010 | |
Shandon Cytospin 3 | ThermoFisher | N/A | |
Sodium hydroxide | Merck | 1,06,49,81,000 | |
Spectrophotometer | Molecular Devices | SpectraMax ABS plus | |
Swiss webster mice | ICTB/FIOCRUZ | N/A | |
Syringe 1 mL | BD | 990189 | |
Tris-base | Bio Rad | 161-0719 | Electrophoresis purity reagent |
Türk's solution | Sigma-Aldrich | 93770 | |
Xilazine | Syntec | N/A |