Il test standard di alimentazione a membrana (SMFA) è considerato il gold standard per la valutazione e l’identificazione di potenziali composti antimalarici. Questo sistema di alimentazione artificiale viene utilizzato per infettare le zanzare per valutare ulteriormente gli effetti di tali composti sull’intensità e la prevalenza del parassita Plasmodium falciparum .
La malaria rimane una delle malattie più devastanti in tutto il mondo e, ad oggi, la regione africana è ancora responsabile del 94% di tutti i casi in tutto il mondo. Questa malattia parassitaria richiede un parassita protozoo, un vettore di zanzara Anopheles e un ospite vertebrato. Il genere Anopheles comprende più di 500 specie, di cui 60 sono conosciute come vettori del parassita. Il genere Plasmodium parasite comprende 250 specie e 48 di queste sono coinvolte nella trasmissione della malattia. Inoltre, il parassita Plasmodium falciparum ha contribuito a circa il 99,7% dei casi di malaria nell’Africa sub-sahariana negli ultimi anni.
I gametociti fanno parte dello stadio sessuale del parassita e vengono ingeriti dalla zanzara femmina dopo essersi nutriti di un ospite umano infetto. L’ulteriore sviluppo del parassita all’interno della zanzara è migliorato da condizioni ambientali favorevoli nel midgut della zanzara. Qui avviene la fusione dei gameti femminili e maschili e hanno origine gli oocineti mobili. Gli oocineti entrano nell’epitelio intestinale medio della zanzara e gli oocinesiti maturi formano oocisti, che a loro volta producono sporozoiti mobili. Questi sporozoiti migrano verso le ghiandole salivari della zanzara e vengono iniettati come una zanzara prende un pasto di sangue.
Ai fini della scoperta di farmaci, le zanzare sono state infettate artificialmente con sangue infetto da gametociti nel test standard di alimentazione a membrana (SMFA). Per rilevare l’infezione all’interno della zanzara e / o per valutare l’efficacia dei composti antimalarici, le viscere intermedie delle zanzare femmine sono state rimosse dopo l’infezione e sono state colorate con mercurocromo. Questo metodo è stato utilizzato per migliorare la rilevazione visiva delle oocisti al microscopio per la determinazione accurata della prevalenza e dell’intensità delle oocisti.
La malaria, conosciuta come una delle malattie più distruttive in tutto il mondo, rappresenta ancora una grande minaccia per diversi paesi, specialmente quelli all’interno della regione africana, e contribuisce a circa il 95% dei casi in tutto il mondo1. Questa malattia è causata da un parassita protozoo e, insieme al suo vettore di zanzara Anopheles, questi colpevoli possono causare gravi danni all’ospite umano2. Più specificamente, la specie falciparum del genere parassita Plasmodium è responsabile di circa il 99% dei casi di malaria nell’Africa sub-sahariana1. Oltre a questo, diversi importanti vettori di zanzare Anopheles (tra cui An. gambiae Giles, An. arabiensis Patton, An. coluzzii Coetzee & Wilkerson sp.n. e An. funestus Giles) potrebbero essere accusati di oltre il 95% della trasmissione dei parassiti a livello globale 3,4,5,6,7,8 . Affinché sia stabilita la compagnia ideale parassita-vettore, il vettore di zanzara dovrebbe essere suscettibile al parassita ed essere in grado di trasmetterlo9. Inoltre, sia il vettore che il parassita dovrebbero superare le barriere fisiche per formare la perfetta combinazione infettiva: il vettore di zanzara dovrebbe essere in grado di sostenere lo sviluppo del parassita e il parassita dovrebbe avere la capacità di superare i meccanismi di difesa dell’ospite10,11.
I gametociti, lo stadio sessuale del parassita P. falciparum, svolgono un ruolo cruciale nel collegare il vettore e i partner del parassita12. Lo sviluppo sessuale avviene in vivo e la gametocitogenesi descrive il processo di differenziazione dei gametociti maturi in microgameti maschili mobili e macrogameti femminili13. Un altro processo che avviene all’interno della zanzara è l’esflagellazione, il processo durante il quale il gametocita maschile si trasforma in gameti ed emerge dai globuli rossi assorbiti durante un pasto di sangue11. Il processo di esflagellazione è ulteriormente suggerito per essere migliorato da un cambiamento favorevole nell’ambiente della zanzara midgut14. Dopo l’esflagellazione, uno zigote è formato dalla fusione dei gameti maschili e femminili13. Dallo zigote, un ookinete mobile sorge e si sposta dal pasto di sangue all’epitelio della zanzara midgut13. Qui matura l’ookinete e si forma una oocisti che, a sua volta, produce sporozoiti mobili13,15. Gli sporozoiti migrano quindi verso le ghiandole salivari della zanzara e, mentre la zanzara prende un pasto di sangue dal suo ospite, questi sporozoiti vengono iniettati nel flusso sanguigno dell’ospite15.
Gli interventi di controllo della malaria, che combinano strategie di controllo dei vettori e l’uso di farmaci antimalarici efficaci, sono diventati cruciali nella lotta contro questa malattia15. Con l’aumento della resistenza ai parassiti e alle zanzare, l’urgenza per l’identificazione di nuovi composti antimalarici sta aumentando16. Pertanto, la valutazione in vivo dei composti che bloccano la trasmissione è importante16. Dopo lo sviluppo di tali efficaci farmaci che bloccano la trasmissione, l’SMFA è stato utilizzato per valutare se questi composti inibiscono lo sviluppo sessuale di P. falciparum nella zanzara Anopheles 17,18,19. Questo test ha ottenuto il riconoscimento dal 1970-1980 come il gold standard per valutare il blocco della trasmissione20,21. Questo test fornisce un’alternativa più economica rispetto ad altri test come RT-qPCR, che richiede attrezzature specializzate. Inoltre, non sono necessari pazienti per eseguire gli esperimenti. Questo test prevede anche la fornitura di sangue indotto da gametociti alle zanzare femmine, che vengono poi sezionate per valutare se lo sviluppo di oocisti è presente21. Ciò consente la quantificazione dei gametociti e l’individuazione di oocisti deformate a causa dei composti22. Affinché un composto sia classificato come efficace, la prevalenza (la proporzione di zanzare che ospitano almeno una oocisti nel midgut) e il numero di oocisti (intensità) nel midgut della zanzara devono essere valutati per valutare l’inibizione dell’infezione 17,21,22.
Affinché questo protocollo venga eseguito correttamente, è necessario prestare attenzione a ogni passaggio, anche se potrebbe essere un processo noioso e laborioso. Uno dei passi più importanti è assicurarsi che la coltura dei gametociti sia di buona qualità e che sia costituita da gametociti maturi, con il corretto rapporto maschio/femmina, prima di iniziare l’SMFA23,24. Durante la SMFA, è anche fondamentale mantenere la coltura dei gametociti alla tempera…
The authors have nothing to disclose.
Gli autori ringraziano il Prof. Lyn-Mari Birkholtz e la dottoressa Janette Reader del Dipartimento di Biochimica, Genetica e Microbiologia, Istituto per il controllo sostenibile della malaria, presso l’Università di Pretoria, per la coltura e la fornitura della coltura dei gametociti. Il ceppo parassita è stato ottenuto da quest’ultimo dipartimento (non parte di questa pubblicazione). Il Dipartimento di Scienza e Innovazione (DSI) e la Fondazione Nazionale della Ricerca (NRF); South African Research Chairs Initiative (UID 64763 a LK e UID 84627 a LMB); le NRF Communities of Practice (UID 110666 a LMB e LK); e il South African Medical Research Council Strategic Health Innovation Partnerships (SHIP) sono anche riconosciuti per i fondi del DSI.
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