Summary

ラットアストロサイトおよびミクログリアの初代培養と筋萎縮性側索硬化症の研究におけるそれらの使用

Published: June 23, 2022
doi:

Summary

ここでは、hSOD1G93Aラットモデルにおける筋萎縮性側索硬化症の病態生理に関する研究のために、細胞内Ca2+のタイムラプスビデオイメージングのために、ラット皮質からグリア細胞、アストロサイト、およびミクログリアの初代培養を調製する方法に関するプロトコルを紹介します。

Abstract

このプロトコルは、Sprague Dawleyラットの皮質からグリア細胞、星状細胞、およびミクログリアの初代培養物を調製する方法と、ラットhSOD1G93A モデルにおける筋萎縮性側索硬化症(ALS)の病態生理学を研究する目的でこれらの細胞を使用する方法を示しています。まず、生後ラット皮質から星状細胞とミクログリアを単離して培養する方法を示し、次に、アストロサイトのグリア線維性酸性タンパク質(GFAP)マーカーとイオン化カルシウム結合アダプター分子1(Iba1)ミクログリアマーカーを使用した免疫細胞化学によって、これらの培養物の純度を特徴付けて試験する方法を示します。次の段階では、培養細胞の色素ローディング(カルシウム感受性Fluo 4-AM)の方法と、生細胞のビデオイメージング実験におけるCa2+ 変化の記録について説明します。

ビデオ録画の例は、(1)ALS患者から単離された免疫グロブリンG(IgG)に急性曝露された培養アストロサイトのCa2+イメージングの症例で構成され、同じ実験で実証されたATPに対する応答と比較して特徴的かつ特異的な応答を示します。実施例はまた、非トランスジェニック対照と比較して、hSOD1G93A星状細胞におけるALS IgGによって誘発される細胞内カルシウム濃度のより顕著な一過性上昇を示しています。(2)小胞体Ca2+ ATPaseの非競合阻害剤であるタプシガルギン(Thg)によるカルシウム貯蔵の枯渇中の培養アストロサイトのCa2+イメージング、続いて記録溶液中のカルシウムの添加によって誘発される貯蔵操作によるカルシウム侵入、これはhSOD1G93Aと非トランスジェニック星状細胞におけるCa2+貯蔵操作の違いを実証する。(3)培養ミクログリアのCa2+イメージングは、主にALS IgGに対する応答の欠如を示し、一方、ATP適用はCa2+変化を誘発した。この論文はまた、重要な細胞密度と培養物の純度、Ca2+色素の正しい濃度の選択、および色素ローディング技術に関して考えられる警告と注意を強調しています。

Introduction

細胞培養技術は、健康と病気における細胞神経生理学の多様な分野で多くの進歩をもたらしました。特に、実験動物の神経組織から新たに単離された初代細胞培養により、実験者はさまざまな生化学的培地や生理学的設定での多様な細胞の挙動を綿密に研究することができます。Ca2+感受性色素などのさまざまな蛍光生理学的指標をタイムラプスビデオ顕微鏡と組み合わせて使用 すると、細胞の生物物理学的および生化学的プロセスをリアルタイムでよりよく理解できます。

ALSは、上位および下部の運動ニューロンに影響を与える壊滅的な神経変性疾患です1。この病気は家族型の複雑な病因を持っていますが、ほとんどが散発的な型です(症例の90%)2。非細胞自律機構がALS病態生理に寄与することはよく知られており、主にグリア細胞の本質的な役割に起因しています3。ALSはまた、炎症の体液性および細胞性因子の関与を伴う神経炎症性疾患としてよく特徴付けられる。

免疫グロブリンGは、ALSやその他の神経変性疾患の分子マーカーとして広く使用されています。このマーカーの血清レベルを研究することは、疾患における神経炎症の存在および病期を示すことができる4,5,6が、脳脊髄液中のその存在は、血液脳関門7の破れを示すことができる。IgGは、ALS患者の脊髄運動ニューロンにおける沈着物としても同定された7。それにもかかわらず、このアプローチは、IgGのレベルと疾患の病期および特徴との相関においていくつかの矛盾を示しています6

ALS患者の血清から単離されたIgG(ALS IgG)は、ナイーブアストロサイト8でカルシウム応答を誘導し、ニューロンでグルタミン酸放出を誘発する可能性があり、ALS病理9の特徴である興奮毒性効果を示しています。しかし、hSOD1G93A ALSラットモデル(ヒトSOD1変異10の複数のコピーを含む)に関する研究は、培養神経膠細胞11、組織12、1314または生きた動物13において酸化ストレスの多くのマーカーを示した。ALSラットモデルから培養されたアストロサイトは、非トランスジェニック同腹仔からのアストログリアよりも過酸化物によって誘発される酸化ストレスを受けやすいことは注目に値します11

培養中のミクログリア細胞は、あまり明白ではない方法でALS IgGの影響を受けます。すなわち、BV-2ミクログリア細胞株は、わずか4/11 ALS IgG患者試料の適用に応答して酸化ストレスの蛍光マーカーからのシグナルの上昇を示した15。ミクログリアは多くの神経炎症病理に関与し、ALS16,17の非細胞自律メカニズムにおける酸化ストレスおよび後期進行期を追加することはよく知られている。それにもかかわらず、ALS IgGのデータは、これらの細胞がALS炎症のこれらの体液性因子に対して星状細胞ほど反応性がない可能性があることを示しました。ALSマウスモデルの初代星状細胞を用いて、仔だけでなく、脳または脊髄上の症候性動物においても、いくつかの研究が行われている18,19,20,21。これはミクログリア初代培養にも当てはまりますが、星状細胞ほどではなく、主に胚期の脳領域からのものです22,23,24

培養中の細胞上のCa2+のタイムラプスビデオイメージングは、主に興奮毒性の生理学的マーカーとしてこのイオンの細胞内過渡性を追跡する手段として使用しています。したがって、これらの過渡現象(振幅、過渡下面積、立ち上がり時間、周波数)の生物物理学的特性評価により、研究者は神経変性の多様な細胞モデルから実験的診断パラメータを得ることができます。したがって、この技術は、疾患バイオマーカーとしてのIgGの定量的生理学的評価の利点を提供します。ALSの誘導におけるIgGとCa2+の役割に関する文献は数多くあります。これらの研究のほとんどは、患者のIgGを実験動物に注射することによってALSを誘導することによって行われ2526、27、2829その後細胞内Ca2+上昇およびIgG沈着を示した。一連の研究では、in vitroでの運動シナプスに対するALS IgGの効果を調査しました30,31,32。上記の文脈において、ここで提示された技術は、ALSの非細胞自律メカニズムにおける重要なプレーヤーとしてのグリア細胞に焦点を当て、神経炎症の体液性因子としてのIgGに対する潜在的な興奮毒性応答を定量化します。このアプローチは、さまざまな細胞培養システムや一般的な炎症の細胞モデルで、血清全体、CSF、サイトカインなどの他の体液性因子の試験に幅広い用途がある可能性があります。

この論文では、Sprague Dawleyラットの皮質からグリア細胞、アストロサイト、ミクログリアの初代培養物を調製する方法と、これらの細胞をさらに使用して、患者の血清由来IgGによるALS病態生理学を研究する方法について説明します。培養細胞の色素ローディング(図1)とタイムラプスビデオイメージング実験におけるCa2+変化の記録に関するプロトコルが詳しく説明されています。ビデオ録画の例は、グリア細胞がATPと比較してALS IgGにどのように反応するかを示し、後者はプリン作動性膜受容体を活性化します。hSOD1G93A ALSラット脳から単離された星状細胞が、非トランスジェニック対照と比較してALS IgGに対するより顕著なCa2+応答とどのように反応するか、およびこのプロセスをCa2+保存操作の違いに関連付ける方法の例が初めて示されています。また、ALS IgGに急性挑戦されたミクログリア細胞におけるカルシウムイメージングの例も示されており、細胞内カルシウムの反応はわずかです。

Protocol

すべての実験は、科学的目的のための動物の保護に関するEU指令に従い、ベオグラード大学生物学部の倫理委員会(承認番号EK-BF-2016/08)の許可を得て実施されました。患者材料(IgGの血清)については、ヒトを対象とした実験については、世界医師会倫理綱領(ヘルシンキ宣言)に従って、患者の同意を得た日常的な臨床検査のために収集されました。プロトコルは、セルビア臨床センターの倫理委?…

Representative Results

培養中の異なるグリア細胞タイプの特性評価実験用の星状細胞を作製するのに通常15〜21日かかりますが、ミクログリア細胞は成長するのに10〜15日かかります。培養物の細胞純度を評価するために免疫染色を行った。 図1 は、それぞれの培養における星状細胞マーカーGFAPおよびミクログリアマーカーIba1の二重標識の発現を示す。 カ?…

Discussion

この論文では、ラットhSOD1G93A モデルにおけるALSなどの細胞(病態)生理学のさまざまな側面を研究するための迅速で「予算内」のツールとして初代細胞培養の方法を紹介します。したがって、この技術は、より高い組織レベル(すなわち、組織スライスまたは生きた動物)で外挿し、さらに調査することができる単一細胞レベルでの研究に適しています。ただし、技術としての細胞培養に…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作業は、セルビア共和国教育科学技術開発省契約番号451-03-9 / 2021-14 / 200178、FENS-NES教育訓練クラスタープロジェクト「神経炎症におけるグリアに関する三国間コース」、およびEC H2020 MSCA RISE助成金#778405によってサポートされました。免疫組織化学画像を提供してくれたMarija AdžićとMina Perić、論文執筆を手伝ってくれたDanijela Bataveljićに感謝します。

Materials

15 mL tube Sarstedt, Germany 62 554 502
2 mL tube Sarstedt, Germany 72.691
21 G needle Nipro, Japan HN-2138-ET
23 G needle Nipro, Japan HN-2338-ET
5 mL syringe Nipro, Japan SY3-5SC-EC
6 mm circular glass coverslip Menzel Glasser, Germany 630-2113
60 mm Petri dish ThermoFisher Sientific, USA 130181
ATP Sigma-Aldrich, Germany A9062
AxioObserver A1 Carl Zeiss, Germany
Bovine serum albumine Sigma-Aldrich, Germany B6917
Calcium chloride Sigma-Aldrich, Germany 2110
Centrifuge Eppendorf, Germany
DAPI Sigma-Aldrich, Germany 10236276001
D-glucose Sigma-Aldrich, Germany 158968
DMEM Sigma-Aldrich, Germany D5648
Donkey-anti goat AlexaFluor 647 IgG antibody Invitrogen, USA A-21447
Donkey-anti mouse AlexaFluor 488 IgG antibody Invitrogen, USA A-21202
EDTA Sigma-Aldrich, Germany EDS-100G
EGTA Sigma-Aldrich, Germany E4378
”evolve”-EM 512 Digital Camera System Photometrics, USA
Fetal bovine serum (FBS) Gibco, ThermoFisher Scientific, USA 10500064
Fiji ImageJ Software Open source under the GNU General Public Licence
FITC filter set Chroma Technology Inc., USA
Fluo-4 AM Molecular Probes, USA F14201
Goat anti-Iba1 Fujifilm Wako Chemicals, USA 011-27991
HEPES Biowest, France P5455
HighSpeed Solution Exchange System ALA Scientific Instruments, USA
Incubator Memmert GmbH + Co. KG, Germany
Magnesium chloride Sigma-Aldrich, Germany M2393
Matlab software Math Works, USA
Mouse anti-GFAP Merck Millipore, USA MAB360
Mowiol 40-88 Sigma-Aldrich, Germany 324590
Normal donkey serum Sigma-Aldrich, Germany D9663
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich, Germany 158127
Penicilin and Streptomycin ThermoFisher Sientific, USA 15140122
Poly-L-lysine Sigma-Aldrich, Germany P5899
Potassium chloride Sigma-Aldrich, Germany P5405
Potassium dihydrogen phosphate Carlo Erba Reagents, Spain 471686
Shaker DELFIA PlateShake PerkinElmer Life Sciencies, USA
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich, Germany S3817
Sodium chloride Sigma-Aldrich, Germany S5886
Sodium phosphate dibasic heptahydrate Carl ROTH GmbH X987.2
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich, Germany P5280
Thapsigargine Tocris Bioscience, UK 1138
Triton X – 100 Sigma-Aldrich, Germany T8787
Trypsin Sigma-Aldrich, Germany T4799
Vapro Vapor Pressure Osmometer 5520 Wescor, ELITechGroup Inc., USA
ViiFluor Imaging System Visitron System Gmbh, Germany
VisiChrome Polychromator System Visitron System Gmbh, Germany
VisiView high performance setup Visitron System Gmbh, Germany
Xenon Short Arc lamp Ushio, Japan

References

  1. Kiernan, M. C., et al. Amyotrophic lateral sclerosis. Lancet. 377 (9769), 942-955 (2011).
  2. Taylor, J. P., Brown, R. H. J., Cleveland, D. W. Decoding ALS: from genes to mechanism. Nature. 539 (7628), 197-206 (2016).
  3. Gleichman, A. J., Carmichael, S. T. Glia in neurodegeneration: Drivers of disease or along for the ride. Neurobiology of Disease. 142, 104957 (2022).
  4. Zhang, R., et al. Evidence for systemic immune system alterations in sporadic amyotrophic lateral sclerosis (sALS). Journal of Neuroimmunology. 159 (1-2), 215-224 (2005).
  5. Saleh, I. A., et al. Evaluation of humoral immune response in adaptive immunity in ALS patients during disease progression. Journal of Neuroimmunology. 215 (1-2), 6 (2009).
  6. Wang, M., et al. Evaluation of Peripheral Immune Activation in Amyotrophic Lateral Sclerosis. Frontiers in Neurology. 12, 628710 (2021).
  7. Li, J. -. Y., et al. Blood-brain barrier dysfunction and myelin basic protein in survival of amyotrophic lateral sclerosis with or without frontotemporal dementia. Neurological Sciences. 43 (5), 3201-3210 (2022).
  8. Milošević, M., et al. Immunoglobulins G from patients with sporadic amyotrophic lateral sclerosis affects cytosolic Ca2+ homeostasis in cultured rat astrocytes. Cell Calcium. 54 (1), 17-25 (2013).
  9. Andjus, P. R., Stevic-Marinkovic, Z., Cherubini, E. Immunoglobulins from motoneurone disease patients enhance glutamate release from rat hippocampal neurones in culture. Journal of Physiology. 504, 103-112 (1997).
  10. Howland, D. S., et al. Focal loss of the glutamate transporter EAAT2 in a transgenic rat model of SOD1 mutant-mediated amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (3), 1604-1609 (2002).
  11. Dučić, T., Stamenković, S., Lai, B., Andjus, P., Lučić, V. Multimodal synchrotron radiation microscopy of intact astrocytes from the hSOD1 G93A rat model of amyotrophic lateral sclerosis. Analytical Chemistry. 91 (2), 1460-1471 (2019).
  12. Popović-Bijelić, A., et al. Iron-sulfur cluster damage by the superoxide radical in neural tissues of the SOD1(G93A) ALS rat model. Free Radical Biology & Medicine. 96, 313-322 (2016).
  13. Stamenković, S., et al. In vivo EPR pharmacokinetic evaluation of the redox status and the blood brain barrier permeability in the SOD1(G93A) ALS rat model. Free Radical Biology & Medicine. 108, 258-269 (2017).
  14. Stamenković, S., Dučić, T., Stamenković, V., Kranz, A., Andjus, P. R. Imaging of glial cell morphology, SOD1 distribution and elemental composition in the brainstem and hippocampus of the ALS hSOD1(G93A) rat. Neuroscience. 357, 37-55 (2017).
  15. Milošević, M., et al. Immunoglobulins G from sera of amyotrophic lateral sclerosis patients induce oxidative stress and upregulation of antioxidative system in BV-2 microglial cell line. Frontiers in Immunology. 8, 1619 (2017).
  16. Boillée, S., Cleveland, D. W. Revisiting oxidative damage in ALS: microglia, Nox, and mutant SOD1. Journal of Clinical Investigation. 118 (2), 474-478 (2008).
  17. Boillée, S., et al. Onset and progression in inherited ALS determined by motor neurons and microglia. Science. 312 (5778), 1389-1392 (2006).
  18. Martínez-Palma, L., et al. Mitochondrial modulation by dichloroacetate reduces toxicity of aberrant glial cells and gliosis in the SOD1G93A rat model of amyotrophic lateral sclerosis. Journal of American Society for Experimental Neurotherapeutics. 16 (1), 203-215 (2019).
  19. Díaz-Amarilla, P., et al. Phenotypically aberrant astrocytes that promote motoneuron damage in a model of inherited amyotrophic lateral sclerosis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (44), 18126-18131 (2011).
  20. Barbosa, M., et al. Recovery of depleted miR-146a in ALS cortical astrocytes reverts cell aberrancies and prevents paracrine pathogenicity on microglia and motor neurons. Frontiers in Cell Developmental Biology. 9, 634355 (2021).
  21. Gomes, C., et al. Astrocyte regional diversity in ALS includes distinct aberrant phenotypes with common and causal pathological processes. Experimental Cell Research. 395 (2), 112209 (2020).
  22. Kovacs, M., et al. CD34 identifies a subset of proliferating microglial cells associated with degenerating motor neurons in ALS. International Journal of Molecular Sciences. 20 (16), 3880 (2019).
  23. Komiya, H., et al. Ablation of interleukin-19 improves motor function in a mouse model of amyotrophic lateral sclerosis. Molecular Brain. 14 (1), 1-13 (2021).
  24. Trias, E., et al. Emergence of microglia bearing senescence markers during paralysis progression in a rat model of inherited ALS. Frontiers in Aging Neuroscience. 10, 1-14 (2019).
  25. Pullen, A. H., Demestre, M., Howard, R. S., Orrell, R. W. Passive transfer of purified IgG from patients with amyotrophic lateral sclerosis to mice results in degeneration of motor neurons accompanied by Ca2+ enhancement. Acta Neuropatholgica. 107 (1), 35-46 (2004).
  26. Obál, I., et al. Intraperitoneally administered IgG from patients with amyotrophic lateral sclerosis or from an immune-mediated goat model increase the levels of TNF-α, IL-10 in the spinal cord and serum of mice. Journal of Neuroinflammation. 13 (1), 121 (2016).
  27. Obál, I., et al. Experimental motor neuron disease induced in mice with long-term repeated intraperitoneal injections of serum from ALS patients. International Journal of Molecular Sciences. 20 (10), 2573 (2019).
  28. Mohamed, H. A., et al. Immunoglobulin Fc gamma receptor promotes immunoglobulin uptake, immunoglobulin-mediated calcium increase, and neurotransmitter release in motor neurons. Journal of Neuroscience Research. 69 (1), 110-116 (2002).
  29. Engelhardt, J. I., Siklos, L., Appel, S. H. Altered calcium homeostasis and ultrastructure in motoneurons of mice caused by passively transferred anti-motoneuronal IgG. Journal of Neuropathology & Experimental Neurology. 56 (1), 21-39 (1997).
  30. Pagani, M. R., Reisin, R. C., Uchitel, O. D. Calcium signaling pathways mediating synaptic potentiation triggered by amyotrophic lateral sclerosis IgG in motor nerve terminals. Journal of Neuroscience. 26 (10), 2661-2672 (2006).
  31. Carter, J. R., Mynlieff, M. Amyotrophic lateral sclerosis patient IgG alters voltage dependence of Ca2+ channels in dissociated rat motoneurons. Neuroscience Letters. 353 (3), 221-225 (2003).
  32. Fratantoni, S. A., Weisz, G., Pardal, A. M., Reisin, R. C., Uchitel, O. D. Amyotrophic lateral sclerosis IgG-treated neuromuscular junctions develop sensitivity to L-type calcium channel blocker. Muscle & Nerve. 23 (4), 543-550 (2000).
  33. McCarthy, K. D., de Vellis, J. Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue. Journal of Cell Biology. 85 (3), 890-902 (1980).
  34. Vay, S. U., et al. The impact of hyperpolarization-activated cyclic nucleotide-gated (HCN) and voltage-gated potassium KCNQ/Kv7 channels on primary microglia function. Journl of Neuroinflammation. 17 (1), 100 (2020).
  35. Bijelić, D. D., et al. Central nervous system-infiltrated immune cells induce calcium increase in astrocytes via astroglial purinergic signaling. Journal of Neuroscience Research. 98 (11), 2317-2332 (2020).
  36. Kawamata, H., et al. Abnormal intracellular calcium signaling and SNARE-dependent exocytosis contributes to SOD1G93A astrocyte-mediated toxicity in amyotrophic lateral sclerosis. Journal of Neuroscience. 34 (6), 2331-2348 (2014).
  37. Nims, R. W., Price, P. J. Best practices for detecting and mitigating the risk of cell culture contaminants. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 53 (10), 872-879 (2017).
  38. Schildge, S., Bohrer, C., Beck, K., Schachtrup, C. Isolation and culture of mouse cortical astrocytes. Journal of Visualized Experiments. (71), e50079 (2013).
  39. Adzic, M., et al. Extracellular ATP induces graded reactive response of astrocytes and strengthens their antioxidative defense in vitro. Journal of Neuroscience Research. 95 (4), 1053-1066 (2017).
  40. Jurga, A. M., Paleczna, M., Kuter, K. Z. Overview of general and discriminating markers of differential microglia phenotypes. Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, 198 (2020).
  41. Butovsky, O., et al. Identification of a unique TGF-β-dependent molecular and functional signature in microglia. Nature Neuroscince. 17 (1), 131-143 (2014).
  42. Vankriekelsvenne, E., et al. Transmembrane protein 119 is neither a specific nor a reliable marker for microglia. Glia. 70 (6), 1170-1190 (2022).
  43. Paredes, R. M., Etzler, J. C., Watts, L. T., Zheng, W., Lechleiter, J. D. Chemical calcium indicators. Methods. 46 (3), 143-151 (2008).

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Cite This Article
Milićević, K., Korenić, A., Milošević, M., Andjus, P. R. Primary Cultures of Rat Astrocytes and Microglia and Their Use in the Study of Amyotrophic Lateral Sclerosis. J. Vis. Exp. (184), e63483, doi:10.3791/63483 (2022).

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