Presentiamo qui un protocollo su come preparare colture primarie di cellule gliali, astrociti e microglia da cortecce di ratto per l’imaging video time-lapse di Ca2+ intracellulare per la ricerca sulla fisiopatologia della sclerosi laterale amiotrofica nel modello di ratto hSOD1G93A .
Questo protocollo dimostra come preparare colture primarie di cellule gliali, astrociti e microglia dalle cortecce dei ratti Sprague Dawley e come utilizzare queste cellule allo scopo di studiare la fisiopatologia della sclerosi laterale amiotrofica (SLA) nel modello di ratto hSOD1G93A . In primo luogo, il protocollo mostra come isolare e coltivare astrociti e microglia da cortecce postnatali di ratto, e quindi come caratterizzare e testare queste colture per la purezza mediante immunocitochimica utilizzando il marcatore glial fibrillary acidic protein (GFAP) degli astrociti e il marcatore microgliale ionizzato della molecola adattatore legante il calcio 1 (Iba1). Nella fase successiva, vengono descritti i metodi per il caricamento del colorante (Fluo 4-AM sensibile al calcio) delle cellule coltivate e le registrazioni dei cambiamenti di Ca2+ negli esperimenti di imaging video su cellule vive.
Gli esempi di registrazioni video consistono in: (1) casi di imaging Ca2+ di astrociti in coltura acutamente esposti all’immunoglobulina G (IgG) isolata da pazienti affetti da SLA, che mostrano una risposta caratteristica e specifica rispetto alla risposta all’ATP come dimostrato nello stesso esperimento. Gli esempi mostrano anche un aumento transitorio più pronunciato della concentrazione intracellulare di calcio evocato da ALS IgG negli astrociti hSOD1G93A rispetto ai controlli non transgenici; (2) Imaging Ca 2+ di astrociti in coltura durante un esaurimento delle riserve di calcio da parte di thapsigargin (Thg), un inibitore non competitivo del reticolo endoplasmatico Ca 2+ ATPasi, seguito da ingresso di calcio operato dal magazzino indotto dall’aggiunta di calcio nella soluzione di registrazione, che dimostra la differenza tra il funzionamento del magazzino Ca 2+ in hSOD1G93A e negli astrociti non transgenici; (3) L’imaging Ca 2+ della microglia in coltura mostra prevalentemente una mancanza di risposta alle IgG di SLA, mentre l’applicazione di ATP ha provocato un cambiamento di Ca2+. Questo documento sottolinea anche possibili avvertimenti e precauzioni riguardanti la densità cellulare critica e la purezza delle colture, scegliendo la corretta concentrazione del colorante Ca2+ e le tecniche di caricamento del colorante.
Le tecniche di coltura cellulare hanno dato origine a numerosi progressi in diversi campi della neurofisiologia cellulare in salute e malattia. In particolare, le colture cellulari primarie, appena isolate dal tessuto neuronale di un animale da laboratorio, consentono allo sperimentatore di studiare da vicino il comportamento di diverse cellule in diversi mezzi biochimici e configurazioni fisiologiche. L’utilizzo di diversi indicatori fisiologici fluorescenti come i coloranti sensibili al Ca2+ in combinazione con la microscopia video time-lapse fornisce una migliore comprensione dei processi biofisici e biochimici cellulari in tempo reale.
La SLA è una malattia neurodegenerativa devastante che colpisce i motoneuroni superiori e inferiori1. La malattia presenta una patogenesi complessa di tipo familiare ma soprattutto della forma sporadica (90% dei casi)2. È noto che i meccanismi autonomi non cellulari contribuiscono alla fisiopatologia della SLA, principalmente a causa del ruolo essenziale delle cellule gliali3. La SLA è anche ben caratterizzata come una malattia neuroinfiammatoria con coinvolgimento di fattori umorali e cellulari di infiammazione.
L’immunoglobulina G è ampiamente usata come marcatore molecolare nella SLA e in altre malattie neurodegenerative. Studiare il livello sierico di questo marcatore può indicare la presenza e lo stadio della neuroinfiammazione nella malattia 4,5,6, mentre la sua presenza nel liquido cerebrospinale può indicare una rottura della barriera ematoencefalica7. Le IgG sono state anche identificate come depositi nei motoneuroni del midollo spinale dei pazienti con SLA7. Tuttavia, questo approccio ha mostrato alcune incongruenze nella correlazione del livello di IgG con lo stadio e le caratteristiche della malattia6.
Le IgG isolate dai sieri dei pazienti affetti da SLA (SLA IgG) possono indurre una risposta al calcio negli astrociti naïve8 e il rilascio di glutammato nei neuroni, indicando un effetto eccitotossico, un segno distintivo della patologia della SLA9. Tuttavia, gli studi sul modello di ratto hSOD1G93A ALS (contenente copie multiple della mutazione umana SOD110) hanno mostrato un numero di marcatori di stress ossidativo in cellule neurogliali in coltura11, tessuti 12,13,14 o animali vivi 13. È interessante notare che gli astrociti coltivati dal modello di ratto SLA erano più inclini allo stress ossidativo indotto dal perossido rispetto agli astroglia dei compagni di cucciolata non transgenici11.
Le cellule microgliali in coltura sono influenzate dalla SLA IgG in modo meno evidente. Vale a dire, una linea cellulare microgliale BV-2 ha mostrato un aumento del segnale dai marcatori fluorescenti dello stress ossidativo in risposta all’applicazione di soli 4/11 campioni di pazienti IgG ALS15. È noto che le microglia partecipano a molte patologie neuroinfiammatorie, aggiungendo stress ossidativo e fase di progressione tardiva nel meccanismo autonomo non cellulare della SLA16,17. Tuttavia, i dati con le IgG della SLA hanno indicato che queste cellule potrebbero non essere reattive come gli astrociti a questi fattori umorali dell’infiammazione della SLA. Diversi studi sono stati condotti con astrociti primari da modelli murini di SLA, non solo nei cuccioli ma anche in animali sintomatici, sia sul cervello che sul midollo spinale 18,19,20,21. Questo vale anche per le colture primarie microgliali, anche se in misura minore rispetto agli astrociti e per lo più dalle regioni del cervello allo stadio embrionale22,23,24.
Usiamo l’imaging video time-lapse di Ca2+ su cellule in coltura principalmente come mezzo per seguire i transitori intracellulari di questo ione come marker fisiologico di eccitotossicità. Pertanto, mediante la caratterizzazione biofisica di questi transitori (ampiezza, area sotto transitoria, tempo di salita, frequenza) il ricercatore può ottenere parametri diagnostici sperimentali da diversi modelli cellulari di neurodegenerazione. Questa tecnica offre quindi il vantaggio di una valutazione fisiologica quantitativa delle IgG come biomarcatori della malattia. Esiste un ampio corpus di letteratura sul ruolo delle IgG e del Ca2+ nell’induzione della SLA. La maggior parte di questi studi sono stati condotti inducendo la SLA iniettando IgG del paziente in animali da esperimento 25,26,27,28,29, che hanno poi mostrato elevazione intracellulare di Ca 2+ e deposizioni di IgG. Una linea di studi ha esplorato l’effetto delle IgG di SLA sulla sinapsi motoria in vitro30,31,32. Nel contesto di cui sopra, la tecnica qui presentata pone l’attenzione sulle cellule gliali come attori importanti nel meccanismo autonomo non cellulare della SLA e quantifica la loro potenziale risposta eccitotossica alle IgG come fattori umorali della neuroinfiammazione. Questo approccio può avere un’applicazione più ampia nel testare altri fattori umorali come sieri interi, liquori o citochine in diversi sistemi di coltura cellulare e in modelli cellulari di infiammazione generale.
Questo articolo descrive come preparare colture primarie di cellule gliali, astrociti e microglia dalle cortecce dei ratti Sprague Dawley e come utilizzare ulteriormente queste cellule per studiare la fisiopatologia della SLA con IgG derivate dai sieri dei pazienti. I protocolli sono dettagliati per il caricamento del colorante delle cellule in coltura (Figura 1) e le registrazioni dei cambiamenti di Ca2+ negli esperimenti di imaging video time-lapse. Esempi di registrazioni video mostreranno come le cellule gliali reagiscono alle IgG della SLA rispetto all’ATP, quest’ultimo attivando i recettori purinergici della membrana. Viene mostrato per la prima volta un esempio di come gli astrociti isolati dal cervello del ratto hSOD1G93A ALS reagiscono con una risposta Ca 2+ più pronunciata alle IgG di SLA rispetto ai controlli non transgenici e come correlare questo processo alle differenze nel funzionamento del negozio Ca2+. Viene anche mostrato un esempio di imaging del calcio nelle cellule microgliali acutamente sfidate con SLA IgG, con solo una modesta risposta di calcio intracellulare.
Questo articolo presenta il metodo di coltura cellulare primaria come uno strumento veloce e “economico” per studiare diversi aspetti della fisiologia cellulare (pato) come la SLA nel modello di ratto hSOD1G93A . La tecnica è quindi adatta per studi a livello di singola cellula che possono essere estrapolati e ulteriormente studiati a un livello superiore di organizzazione (cioè in fette di tessuto o in un animale vivo). La coltura cellulare come tecnica, tuttavia, ha alcuni avvertimenti. È fondamentale ese…
The authors have nothing to disclose.
Questo lavoro è stato sostenuto dal Ministero dell’Istruzione, della Scienza e dello Sviluppo Tecnologico Repubblica di Serbia Contratto n. 451-03-9/2021-14/ 200178, dal progetto FENS – NENS Education and Training Cluster “Corso Trilaterale sulla Glia nella Neuroinfiammazione” e dalla sovvenzione EC H2020 MSCA RISE #778405. Ringraziamo Marija Adžić e Mina Perić per aver fornito le immagini di immunoistochimica e Danijela Bataveljić per l’aiuto nella scrittura di articoli.
15 mL tube | Sarstedt, Germany | 62 554 502 | |
2 mL tube | Sarstedt, Germany | 72.691 | |
21 G needle | Nipro, Japan | HN-2138-ET | |
23 G needle | Nipro, Japan | HN-2338-ET | |
5 mL syringe | Nipro, Japan | SY3-5SC-EC | |
6 mm circular glass coverslip | Menzel Glasser, Germany | 630-2113 | |
60 mm Petri dish | ThermoFisher Sientific, USA | 130181 | |
ATP | Sigma-Aldrich, Germany | A9062 | |
AxioObserver A1 | Carl Zeiss, Germany | ||
Bovine serum albumine | Sigma-Aldrich, Germany | B6917 | |
Calcium chloride | Sigma-Aldrich, Germany | 2110 | |
Centrifuge | Eppendorf, Germany | ||
DAPI | Sigma-Aldrich, Germany | 10236276001 | |
D-glucose | Sigma-Aldrich, Germany | 158968 | |
DMEM | Sigma-Aldrich, Germany | D5648 | |
Donkey-anti goat AlexaFluor 647 IgG antibody | Invitrogen, USA | A-21447 | |
Donkey-anti mouse AlexaFluor 488 IgG antibody | Invitrogen, USA | A-21202 | |
EDTA | Sigma-Aldrich, Germany | EDS-100G | |
EGTA | Sigma-Aldrich, Germany | E4378 | |
”evolve”-EM 512 Digital Camera System | Photometrics, USA | ||
Fetal bovine serum (FBS) | Gibco, ThermoFisher Scientific, USA | 10500064 | |
Fiji ImageJ Software | Open source under the GNU General Public Licence | ||
FITC filter set | Chroma Technology Inc., USA | ||
Fluo-4 AM | Molecular Probes, USA | F14201 | |
Goat anti-Iba1 | Fujifilm Wako Chemicals, USA | 011-27991 | |
HEPES | Biowest, France | P5455 | |
HighSpeed Solution Exchange System | ALA Scientific Instruments, USA | ||
Incubator | Memmert GmbH + Co. KG, Germany | ||
Magnesium chloride | Sigma-Aldrich, Germany | M2393 | |
Matlab software | Math Works, USA | ||
Mouse anti-GFAP | Merck Millipore, USA | MAB360 | |
Mowiol 40-88 | Sigma-Aldrich, Germany | 324590 | |
Normal donkey serum | Sigma-Aldrich, Germany | D9663 | |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich, Germany | 158127 | |
Penicilin and Streptomycin | ThermoFisher Sientific, USA | 15140122 | |
Poly-L-lysine | Sigma-Aldrich, Germany | P5899 | |
Potassium chloride | Sigma-Aldrich, Germany | P5405 | |
Potassium dihydrogen phosphate | Carlo Erba Reagents, Spain | 471686 | |
Shaker DELFIA PlateShake | PerkinElmer Life Sciencies, USA | ||
Sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich, Germany | S3817 | |
Sodium chloride | Sigma-Aldrich, Germany | S5886 | |
Sodium phosphate dibasic heptahydrate | Carl ROTH GmbH | X987.2 | |
Sodium pyruvate | Sigma-Aldrich, Germany | P5280 | |
Thapsigargine | Tocris Bioscience, UK | 1138 | |
Triton X – 100 | Sigma-Aldrich, Germany | T8787 | |
Trypsin | Sigma-Aldrich, Germany | T4799 | |
Vapro Vapor Pressure Osmometer 5520 | Wescor, ELITechGroup Inc., USA | ||
ViiFluor Imaging System | Visitron System Gmbh, Germany | ||
VisiChrome Polychromator System | Visitron System Gmbh, Germany | ||
VisiView high performance setup | Visitron System Gmbh, Germany | ||
Xenon Short Arc lamp | Ushio, Japan |