デスメのストリッピングのみは、フックス内皮角膜ジストロフィーに起因する中枢角膜ガッタを有する患者が、末梢細胞が内皮層を再生するためにデスメの膜を剥離する実験手順である。我々は、eFGF1(NM141)によって刺激された治癒の促進を伴うジストロフィー性ヒト角膜 エクスビボ におけるDSOをシミュレートする新規方法論を提示する。
フックス内皮角膜ジストロフィー(FECD)は、機能不全の角膜内皮細胞(CEC)の結果であり、現在、角膜全体またはデスメ膜の移植によって治療されている。眼科手術における最近の発展により、セメのストリッピングのみ(DSO)が確立されており、これは、腸内密集したデスメ膜の中心円を除去して、CECを滑らかな間質に移動し、角膜に機能および視力を回復させる外科的技術である。この潜在的な治療選択肢は眼科研究の分野で高い関心を集めているが、DSOの 成功したエクスビボ モデルは確立されておらず、臨床データは限られている。この研究は、ヒトドナー角膜におけるDSOをシミュレートする新規創傷治癒モデルを提示する。ヒトが操作したFGF1(NM141)の有効性を評価するためにこのアプローチを用いて、我々は、治療がCECの遊走および増殖の刺激 を介して 治癒を促進することを見出した。この知見は、DSO処置の標的集団として、これらの結果がフックスジストロフィー患者において複製され得ることを確認するために、アイバンクによって報告されたジストロフィーの徴候を有する11対のヒト角膜において確認された。
フックス内皮角膜ジストロフィー(FECD)は、角膜内皮細胞(CEC)のポンプ機能が失われ、デスメ膜の表面にコラーゲンおよび他の細胞外マトリックスタンパク質が過剰に蓄積し、角膜腸1を形成することを特徴とする疾患である。FECDの唯一の既知の治療法は、様々な形態の内皮角膜形成術であり、そのすべてに拒絶反応および内皮細胞喪失のリスクが伴う2。眼科手術の進歩により、これらの手順は時間の経過とともに侵襲性が低くなりましたが、移植のいかなる形態にも拒絶のリスクと生涯ステロイド使用の可能性が伴います。さらに、世界的なドナー組織不足により、ドナー角膜は、必要な70人の患者ごとに1つのドナー角膜しか利用できません3。これらの課題を考えると、研究者や臨床医は、ドナー組織の必要性を完全に回避する外科的方法を模索しています。これらの実験技術の1つは、デスメのストリッピングのみ(DSO)または内皮ケラトプラスティ(DWEK)を伴わないデスメトレキシスであり、角膜の中心に局在するガッタを有するFECD患者は、移植片配置なしで剥ぎ取られたデスメ膜の中央4mm円を有する。ガッタエの除去は、健康な末梢細胞が内方に移動し、内皮単層を改革することを奨励し、最終的に間質浮腫を逆転させ、視力を改善する。この概念はもともと、患者がデスメ膜の剥離によって複雑化した手術を受けた一連のケーススタディで説明されていましたが、CECの再増殖は依然として4,5,6,7発生しました。この方法には多くの利点がありますが、手術後の数ヶ月間に治癒が見られない場合、一部の患者は救助移植を必要とするため、治癒プロセスは長く一貫性がありません8。これらの理由から、CECのより速い遊走および増殖を刺激する薬物は、DSOを受けたFECD患者の回復プロセスにおいて有益であり得る。
いくつかの最近の研究では、DSOを受けている患者のための補足的治療としてROCK阻害剤が評価されており、治療を受けた患者はDSOのみのグループ9、10、11の患者よりも早く回復し、中枢内皮細胞密度(ECD)が高いことが見出された。しかし、サンプルサイズが小さく、投薬レジメンの違いがあるため、この設定におけるROCK阻害剤の有効性をよりよく理解するには、より多くのデータが必要です。
線維芽細胞増殖因子はまた、ウシCECsを用いたインビトロ、およびネコ角膜におけるインビボの両方で角膜内皮の再生を刺激することが示されている12,13。eFGF1(NM141)は、半減期がはるかに短い天然FGF-1とは対照的に、分子を安定化させるためにいくつかのアミノ酸置換を含むFGF-1の操作されたバージョンです14,15。我々は以前、四分位ヒト角膜16におけるエクスビボでのCECsの増殖を刺激するeFGF1(NM141)の能力を実証した。この研究は、eFGF1(NM141)などの補助的治療がこのアプリケーションにおける治癒を促進するかどうかを決定するために、正常角膜とジストロフィー角膜の両方でDSOの最初の成功したex vivoモデルを確立することによって、その研究を改善しようとしました。
多くの眼科医は、1)治癒プロセスが長いこと、および2)データの欠如(DSOは眼科手術の分野における新しい概念である)の2つの主な理由により、DSOを患者に推奨することについて懸念を抱いている。私たちが提示した研究は、これらの懸念の両方を和らげるための大きな有用性があります。この研究などのデータに基づいて、FDAは、eFGF1(NM141)をDSO17を受けている患者にさまざまな投与スケジュールで投与する第2相臨床試験を承認しました。
上述の方法は、Sohらによって行われた研究の後にモデル化され、角膜内皮治癒は、傷のある創傷および剥離された創傷の両方においてROCK阻害剤Y−27632の有無にかかわらず評価された18。Y-27632はデスメの膜が無傷のままで内皮再生を加速したが、治療を行っても剥ぎ取られた創傷には実質的な治癒は見られなかった。eFGF1(NM141)の有無にかかわらず処理した後に同様のストリッピング技術を使用して、我々が発見した観察結果は、Sohおよび同僚の観察と一致しなかった。14日目に多くの処理された角膜にトリパンブルー染色がなかったこと、および改質内皮層内にZO-1陽性タイトジャンクションが存在することは、CECの自然な機能の一部である無傷の障壁が正常角膜およびジストロフィー角膜の両方で回復したと主張する。この研究では定量化されていないが、剥離領域内およびその周辺におけるEdU陽性細胞の存在も治癒機構としての増殖を示唆しており、我々が以前に確立したものは、損傷した角膜におけるeFGF1(NM141)によって刺激され得る16。統計解析により、eFGF1(NM141)による治療は、14日間の時点で平均して対照角膜の2倍以上の有意に高いDSOからの治癒をもたらしたことが示されました。治癒率は個人間で適度に異なるが(ドナー角膜の典型的な特徴である)、大きなサンプルサイズに対する結果の再現性も、非常に測定可能な方法の証拠である。我々の知る限り、 エクスビボ ・デスメのストリッピングモデルの例は他に文献にない。
DSOを研究している他の研究者にとって価値のあるプロトコル自体の重要な要素は、裸の間質を検出するためのTrypan Blueの使用と、染色された領域を測定するために使用される画像処理技術です。トリパンブルーは、眼科手術、特にデスメの膜を使用して非生存細胞を検出し、組織の可視性を支援する場合に一般的に使用されます。このプロトコールに含まれる染色タイムポイントは、高濃度のCECsに有毒であることが示されているため、角膜をトリパンブルーに過剰に曝露することなく効果的な反復染色を可能にしました19。アリザリンレッドおよび免疫組織化学によって、移行したCECの結果であることが確認されたすべての角膜における14日間にわたる染色面積の減少は、治癒を測定するための簡単で再現可能な方法を実証する。ImageJのカラーしきい値メニューを使用して、複数のアナリストが標準偏差が一貫して1%未満のデータを収集しました(データは示されていません)。他のプログラムも同様に動作するかもしれませんが、ImageJは治癒を追跡するための正確な面積測定を生成できるオープンソースソフトウェアです。
しかし、ストリッピングプロトコルには、創傷の作成に必要でありながら、治癒プロセス全体を妨げるという側面があります。鋭い30G針を使用して、生検パンチによって残されたマークに沿ってデスメの膜をスコアリングすると、滑らかで円形の創傷が形成され、臨床医はより速い治癒をサポートすると指摘されている10。同時に、このステップは、間質線維に涙を生じさせ、間質細胞死を引き起こし、創傷縁部を横切る内皮細胞の遊走を妨げ、そしてより持続的な術後浮腫をもたらす結節の形成を誘導する可能性があるため、角膜に損傷を与える20。DSOを行う臨床医は、典型的には、創傷を開始するために逆シンスキーフックを使用するが、角膜を緊張させ続ける眼内圧なしでは、このツールは エクスビボ モデルにおいてあまり効果的ではない。下層の間質を損傷することなくデスメの膜を引き裂くことができる代替ツールは、例えば、MacsaiとShiloach10によって推奨された灌漑および吸引ハンドピースのようなプロトコルを改善するであろう。この技術が エクスビボ モデルと互換性があるかどうかを判断するには、さらなる実験が必要になります。
エクスビボモデルに内在しているように見える課題は、創傷の末梢領域、特にジストロフィー性角膜におけるCEC死の頻繁な発生である。これは、染色された領域が角膜の中心を超えて延びるにつれて、その曲率が不均一な配光をもたらすので、色の閾値化ツールの精度がより制限されるため、創傷領域の定量を時折不明瞭にする。しかし、これらの可変測定は、損傷したCECが除去され、隣接する細胞がそれらを置き換えるために伸張、遊走、または増殖するにつれて、末梢染色が徐々に後退する前の以前の時点で主に起こった。最後の14日間の時点までに、染色された領域は角膜の中心に局在し、すべての画像が測定可能であった。Sohらによって同様の観察が同等の頻度で行われ、14の正常な角膜のうち5つが、培養期間18の早い段階で「早期培養不全」(PCF)と呼ばれるものを提示した。損傷は私たちの角膜で時間の経過とともに逆転しましたが、それでも彼らのケースでは永久的でしたが、これは彼らの方法が角膜のより広い領域を傷つけることを必要としたという事実に起因するかもしれません。ジストロフィー性角膜におけるより一般的な末梢トリパン染色の観察は、ジストロフィー性角膜が健康な角膜よりも内皮細胞死に対してより感受性が高いことを示している可能性がある。この細胞死の正確な原因はまだ解明されていませんが、この問題が生体内のヒト角膜に関連する可能性は低いと考えています。末梢内皮への損傷は、我々の知る限りDSOのいずれの臨床症例研究においても報告されておらず、この現象がエクスビボで培養されたドナー角膜に特有のものであることを示唆している6、8、10、11、21。対照角膜のみが染色された2つの例を除いて、末梢染色のすべての観察はペアであったため、原因がeFGF1(NM141)への曝露であった可能性は低い。しかしながら、それらの場合において、治療は、そうでなければ両方の角膜において末梢染色を誘発したであろう損傷に対する保護効果を提供し得る。この仮説については、さらなる調査が必要である。
この方法に対する別の制限は、DSOが意図されるFECD表現型を代表するドナー角膜を調達することである。あらゆる種類のドナー角膜は希少であるため、ドナー組織の使用を避ける手術が必要です。私たちの目的のために、利用可能な唯一の角膜は、様々な理由で移植から拒絶されたものです。アイバンクはさらに、これらの角膜を、ガッタエの存在、低または測定不能なECD、および不規則なCEC形態を含む基準に基づいて、正常またはジストロフィーとして分類する。ほとんどのドナーの病歴には過去の眼歴が含まれておらず、提供される唯一の情報はECD値、技術者のメモ、および場合によっては代表的な鏡面画像であるため、アイバンクから組織を受け入れる前にジストロフィー診断を確認することもほとんど不可能です。本研究で得られたジストロフィー性角膜は、培養期間終了後に実施した共焦点顕微鏡検査ではコンフルエントな中央腸を示さず、FECDの「初期段階」を表している可能性を示唆した。DSOの目的は、腸のコンフルエント領域を除去し、健康な末梢細胞が内側に移動することを可能にすることであるため、これが研究の意味に大きな影響を与えるとは予想していない。
この方法は、CECの増殖および移行に影響を与える可能性のある薬剤を評価するために、非常に適用可能で再現可能な技術を提供する。このモデルは、ヒト角膜組織移植片22、23、24に播種した場合でも、培養CECを含むin vitroモデルよりも生理学的に関連性の高いいくつかの特徴を有する。第一に、刺激されるCECは、患者の眼内に存在するのとまったく同じ単層にあり、臨床DSOの後と同様に角膜間質を横切って移動している。問題の間質はCECと同じ患者からのものであり、したがって潜在的なFECD関連の間質の違いを制御する。培養プロセス中に内皮から間葉への移行(EnMT)に関連する課題と可能性を伴うCECの培養物を外植、解離、および拡大する必要はありません。記載されているプロトコル自体は、臨床DSO手順と非常によく似ています。培養および拡張ステップをバイパスするが、この方法は、上皮層が維持されないため、研究期間が角膜腫脹によって制限されるという制限を有する。これは、剥ぎ取られた領域をカバーするために移動したCECの形態を調査することを妨げ、このモデルで最終的に六角形の配列に再配置するかどうかは不明である。Garcinらは、従来の臓器培養で維持される角膜よりも有意に少ない浮腫で、角膜を最大3ヶ月間培養中に保持することが示された装置であるアクティブストレージマシン(ASM)を用いて、1つの潜在的な解決策を開発した25。このようなデバイスは、この作業を複製して拡張するのに役立ちます。
このモデルは、他の創傷治癒療法(例えば、ROCK阻害剤)の試験、外科的技術への改変の評価、および異なるドナー集団または疾患の段階にわたる治癒の比較において潜在的に有用性を有する。この研究が、臨床試験データが発表されたときに、臨床医がDSOを適格なFECD患者にとって貴重な治療選択肢として考えるよう促すことを願っています。
The authors have nothing to disclose.
この研究のための資金は、トレフォイル・セラピューティクスとNIH NCATS TRND CRADA #2016-04によって支援されました。著者らは、組織病理学のアドバイスとサービスについてTony Wong氏、共焦点顕微鏡の使用についてUCサンディエゴのNikon Imaging Center氏、外科的技術に関するアドバイスをしてくれたNatalie Afsari博士とMarian Macsai博士に感謝したい。さらに、著者らは、角膜を提供してくれた目のドナーとアイバンクに感謝の意を表している。
0.2µm sterile 1000 mL filter units | VWR | 10040-440 | |
0.2µm sterile 250 mL filter units | VWR | 10040-464 | |
0.2µm sterile 500 mL filter units | VWR | 10040-436 | |
10mL syringe Luer-Lok Tip | Becton Dickinson | 302995 | |
12 well tissue culture treated plate | Corning | 3513 | |
15 mL conical Tubes | VWR | 89039-668 | |
16% paraformaldehyde (PFA) | Electron Microscopy Science | 15710 | |
2mL aspirating pipette | VWR | 414004-265 | |
310 direct heat CO2 incubator | Forma Scientific | 13-998-082 | Set to 37°C, 6% CO2 |
50 mL conical tubes | VWR | 89039-660 | |
5-Ethynyl-2'-deoxyuridine (EdU) | Thermo Scientific | C10337 | |
5mL, 10mL, 25mL and 50mL serological pipettes | VWR | 89130-896, -898, -900, -902 | |
6 well tissue culture treated plate | Corning | 3516 | |
70% ethanol | BDH | BDH1164-4LP | |
Alexa Fluor 488 azide | Thermo Scientific | A10266 | |
Alizarin Red S | Sigma | A5533-25G | |
Analytical balance | Sartorious | R200D | |
Antibiotic & Antimycotic 100x (anti-anti) | Thermo Scientific | 15240-062 | |
Anti-magnetic stainless steel forceps | Excelta | 7-SA | |
Bottle top dispenser | Ward's Science | 470134-946 | |
Bovine serum albumin (BSA) | Fisher Scientific | BP9700-100 | |
Calcium chloride (CaCl) | Amresco | 1B1110-500G | |
Chex-all II sterilzation pouches | Propperman | 24008 | |
Cirpofloxacin hydrochloride | Alfa Aesar | J61970 | |
Copper (II) sulfate pentahydrate (CuSO4) | Sigma | 469130-50g | |
Dissecting microscope | Nikon | SMZ1270 | |
Dry vacuum pump | Welch | 2019B-01 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Thermo Scientific | A31606-01 | |
Frosted micro slides | VWR | 48311-703 | |
Galaxy miniStar microcentrifuge | VWR | C1413, VWR | |
Goat anti-mouse IgG (H+L) secondary antibody, Alexa Fluor Plus 555 | Thermo Scientific | A32727 | |
Goat serum | Sigma | G9023 | |
Haemo-Sol detergent | Haemo-Sol International LLC | 026-050 | |
Hoechst 33342, trihydrochloride, trihydrate | Thermo Scientific | H3570 | |
Hot plate/stirrer | Corning | PC-320 | |
Human corneas | Lions Eye Institute for Transplant and Research, Advancing Sight Network, Eversight Eye Bank, Lions Vision Gift, and Georgia Eye Bank | NA | |
Hydrochloric acid (HCl) | BDH | BDH7204 | |
ImageJ | National Institute of Health | Version 1.52a | |
Infinity 3s microscopy camera | Lumenera | 1URCAP2 | |
Infinity analyze software | Lumenera | Version 6.5.5 | |
Insulin transferrin selenium (ITS) | Corning | 41400-045 | |
Iris scissors, 11 cm | World Precision Instruments | 501264-G | |
L- Ascorbic acid | Sigma | A4544-25G | |
Manual single channel pipet | Rainin | 17014-392, -391, -382 | |
Needle PrecisionGlide 30G | Becton Dickinson | 305106 | |
N-Met141 TTHX1114 | Biopharmaceutical Development Program | NA | |
Opti-Mem I + GlutaMAX-1 (Opti-MEM) | Thermo Scientific | 51985-034 | |
Orion Star A211 pH meter | Thermo Scientific | STARA211 | |
Petri dishes | VWR | 89107-632 | |
Potassium chloride (KCl) | BDH | BDH9258-500G | |
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) | VWR | 0781-500G | |
Powerpette plus pipet controller | VWR | 75856-456 | |
Precision water bath 188 | Precision Scientific Incorporated | WB05 | Set to 37°C |
Purifier Class II model biosafety cabinet | Labconco | 36213043726 | |
Safe-Lock tubes, 1.5 mL | Eppendorf | 22363212 | |
Scalpel size 22 stainless steel | Sklar | 446479 | |
Sodium chloride (NaCl) | VWR | 2041-2.5K | |
Sodium hosphate dibasic (Na2HPO4) | VWR | 0404-1KG | |
Standard shaker | VWR | 89032-092 | |
Standard solid refrigerator | VWR | 10820-402 | Set to 4°C |
Sterilmatic autoclave | Market Forge | STM-EL | |
Syringe filters | VWR | 28145-477 | |
Test tube rocker | Thermo Scientific | M48725Q | |
Tru-Punch disposable biopsy punch, 4 mm | Sklar | 96-1146 | |
Trypan Blue | Thermo Scientific | 15250-061 | |
Tween-20 | Sigma | P7949-100mL | |
Vibrance antifade mounting medium with DAPI | Vector Laboratories Inc. | H-1800 | |
VistaVision cover glasses, no. 1 | VWR | 16004-098 | |
Vortex Genie 2 | Fisher Scientific | G-560 | |
ZO-1 monoclonal antibody (ZO1-1A12) | Thermo Scientific | 33-9100 |